«БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ СПОСОБЫ ИНТЕНСИФИКАЦИИ СВИНОВОДСТВА ...»

Внутренняя среда формирует условия, в которых существуют те или иные органы и их части, даже отдельные клетки организма. Для внутренней среды существуют оптимальные условия в целях сохранения последних, весь организм должен непрерывно менять свою внешнюю среду, если возникает опасность. Координация функций отдельных органов животных осуществляется при помощи двух важнейших систем регуляции - нервной и гормональной.

Нервная система своими тончайшими нервными волокнами проникает почти во все клетки организма и в силу этого она идеально приспособлена для регистрации состояния функциональных изменений всех без исключения органов. Нервные волокна способны очень быстро проводить раздражения, что обеспечивает и быстрое приспособление организма к изменениям внешней и внутренней среды.

Эндокринные железы млекопитающих выполняют главенствующую, жизненно важную функцию в их организме, и служат, прежде всего, для регулирования роста, развития, обмена веществ и размножения животных. В отличие от ускоренно протекающих нервных процессов, гормональная регуляция осуществляется более постепенно.

Главной системой организма животных, которая обеспечивает координацию функций отдельных органов, является гормональная система.

Все железы внутренней секреции иннервируются парасимпатическими нервными волокнами, которые управляют их функциями. Тесная связь гормональной и нервной систем осуществляется через гипофиз, управляемый гипоталамусом. Так как гормоны образуются и могут поступать в кровь разными путями и в различном количестве, то важным фактором данной системы организма является очень точное дозирование их деятельности, что совершенно необходимо для обмена веществ и развития животных.

Нарушения эндокринной регуляции животных могут возникнуть вследствие как чрезмерно усиленной, так и недостаточной продукции гормонов.

Гормонами называют биологически активные вещества, которые, образуясь в определенных тканях эндокринной системы и попадая в кровь в ничтожно малых дозах, влияют на функции других тканей. Собственно гормоны образуются в специфических железах, которые выделяют свои продукты непосредственно в кровь (внутренняя или эндокринная секреция).

Роль гормонов в организме состоит, прежде всего, в регуляции обмена веществ, роста и развития (морфогенеза), регуляции и развития половых желез и их деятельности. Они воздействуют также на поведение животных, на их устойчивость и приспособляемость к негативным влияниям внешней среды.

Образование гормонов, выделение их в кровь контролируется нервной системой животных, которая на изменения внутренней среды отвечает вполне определенными регуляционными сигналами.

Важные регуляционные центры управления функциями эндокринных желез, влияющих на обмен веществ, процессы размножения, а также водный и минеральный баланс, сосредоточены в гипоталамусе. Функционально они тесно связаны с гипофизом и вегетативной нервной системой. Большое значение для функциональной деятельности эндокринных желез имеет и кора больших полушарий головного мозга, от которой исходят тормозящие и стимулирующие импульсы для системы промежуточный мозг-гипофиз.

Между отдельными клетками внутренней секреции в нормальных условиях существует равновесие, для поддержания которого служат различные предохранительные механизмы организма животных.

Избыточный синтез того или иного гормона может компенсироваться образование и выделение гормона. С другой стороны, уже само понижение уровня одного гормона в крови ведет к повышению секреции другого гормона по механизму обратной связи.

Из внешних факторов, оказывающих определенное влияние на рост и белковый обмен животных, следует назвать следующие: условия кормления, физическая и нервная нагрузка, климатические факторы, уровень фоновой радиоактивности внешней среды, концентрация кислорода в воздухе.

Влияние внешних факторов на рост и анаболические процессы в организме животных реализуется через нервную и эндокринную системы.

непосредственно влияют на обменные процессы организма животных, относят и гормон роста, или соматотропин (СТГ), который синтезируется специальными ацидофильными соматрофными клетками гипофиза (малые эозинофилы).

Соматотропный гормон (СТГ) - важнейший стимулятор роста организма и синтеза белка в клетках (анаболические процессы), а также образования глюкозы и распада жиров, он осуществляет, по крайней мере, часть своих эффектов опосредованно, через усиление секреции печенью и, возможно, другими органами соматомединов.

Оказывается ростовая активность соматотропного гормона (СТГ) у эмбриона и на самых ранних этапах постэмбрионального развития животных невелика. Очевидно, в эти периоды онтогенеза СТГ выполняет не сколько ростовые, сколько адаптивные функции. Сущность адаптации к внешним Для реализации этой задачи нами были набраны опытная и контрольная группы новорожденных поросят в возрасте 1 месяц. Поросятам опытной группы внутримышечно вводили синтетический аналог рилизинггормона (сурфагон) в дозе 5 мкг на голову.

Мы надеялись и предполагали, что экзогенное введение сурфагона выступит в роли стимулирующего фактора, именно - запустит и будет стимулировать синтез соматотропного гормона (СТГ) гипофизом поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза. Одной из главных функций этого гипофизарного гормона является стимулирующее влияние на линейный рост, общие размеры и увеличение массы у животных, размеры и массу отдельных паренхиматозных органов.

На первом этапе экспериментальных исследований мы изучили влияние синтетического аналога рилизинг-гормона (сурфагона) на изменение концентрации СТГ в крови подопытных животных. Для этого нами был произведен забор крови у подопытных животных до введения сурфагона и после его инъекции через: 3 и 24 часа для определения концентрации соматотропина.

На втором этапе наших исследований после изучения концентрации СТГ в крови подопытных животных (после экзогенной инъекции сурфагона) мы изучили динамику прироста живой массы поросят. С этой целью мы проводили взвешивание поросят в возрасте 1, 2, 3; 3,5 и 7 месяцев (возраст забоя животных) для определения живой массы и среднесуточного прироста после экзогенного введения синтетического аналога рилизинг-гормона.

Для определения концентрации гормона в крови подопытных животных применяли иммуноферментный метод (ИФА).

Оборудование для ИФА производится в зарубежных странах (HUMANФРГ; BIO-TEK instruments - США и др.) и отечественных фирм. Комплект оборудования ИФА производства ЗАО «Пикон» (г. Москва) включает в себя анализатор иммуноферментных реакций, автоматический промыватель планшетов, вибротермостат на две плашки и комплект механичесикх дозаторов.

ИФА применяется в ветеринарии для диагностики инфекционных болезней животных: оспы овец, чумы крупного рогатого скота и свиней;

инфекционных болезней птиц: инфекционной бурсальной болезни, инфекционного бронхита кур, реовируса птиц, ньюкаслской болезни, синдрома снижения яйценоскости, сальмонеллеза, пастереллеза, микоплазмоза, гриппа птиц и других; для контроля за содержанием вредных веществ в продуктах животного и растительного происхождения, а также для количественного определения гормонов и других биологически активных веществ в биологических жидкостях организма млекопитающих.

В состав набора для определения концентрации гормонов в крови телят методом иммуноферментного анализа входят следующие компоненты:

иммуноферментного анализа цельный (96-луночный) или стриповый ( стрипов по 16 лунок каждый или 12 стрипов по 8 лунок каждый) с адсорбированным конъюгатом.

2. Стандарты гормонов калиброванные, лиофилизированная аморфная масса белого цвета: а) стандарт, содержащий 0 нг/мл лиофилизированная аморфная масса белого цвета.

1. Конъюгат пероксидазы из корня хрена с аффинными антителами к гормонам, жидкость красного, розового или желтого цвета или бесцветная или 1,5 мл.

2. Буфер №1, бесцветная жидкость - 0,3; 0,6 или 1,5 мл. - 1 фл.

3. Буфер №2, жидкость красного, розового или желтого цвета или бесцветная - 0,3; 0,6 или 1,5 мл. - 1 фл.

однозамещенный; натрий хлористый, калий хлористый, рH 7,3±0,1 - 20кратный концентрат с детергентом, бесцветная жидкость - 15; 30 или 75 мл. фл.

5. Тетраметилбензидин (ТМБ) - бесцветная прозрачная жидкость - 2,2;

4,4 или 11 мл.- 1 фл.

6. Субстратный раствор, бесцветная прозрачная жидкость - 8,8; 17, или 44 мл. - 1 фл.

10. Стоп - реагент (4 N серная кислота), бесцветная прозрачная жидкость - 12;24 или 60 мл.

ПОСТАНОВКА ИММУНОФЕРМЕНТНОГО АНАЛИЗА.

КОЛИЧЕСТВЕННЫЙ АНАЛИЗ.

1.Порядок маркировки планшета и внесения образца приведен на схеме. Время внесения образца в лунки одного планшета не должно превышать 15 минут.

2. Упаковку со стрипами (с планшетом) вскрывают, в рамку вставляют необходимое для работы количество стрипов, во все используемые лунки вносят по 300 мкл промывочного буфера и оставляют на 1 минуту.

отсасыванием так, чтобы в лунке не осталось жидкости.

СХЕМА ВНЕСЕНИЯ ОБРАЗЦОВ

4. В лунку 1 стрипа ряда А вносят 50 мкл калибровочной пробы, содержащей 0 нг/мл гормона.

5. В лунку 1 стрипа ряда В вносят 50 мкл калибровочной пробы, содержащей 1,1 нг/мл гормона.

6. В лунку 1 стрипа ряда С вносят 50 мкл калибровочной пробы, содержащей 3,3 нг/мл гормона.

7. В лунку 1 стрипа ряда D вносят 50 мкл калибровочной пробы, содержащей 10,0 нг/мл гормона.

8. В лунку 1 стрипа ряда E вносят 50 мкл калибровочной пробы, содержащей 50,0 нг/мл гормона.

9. В оставшиеся лунки вносят по 50 мкл анализируемых образцов (Х) сыворотки крови.

10. Лунки планшета со стандартами и анализируемыми образцами внося по 150 мкл раствора конъюгата.

11. Планшет инкубируют в течение 30 минут при температуре 37 0С в вибротермостате или термостате.

12. После окончания инкубации жидкость из лунок удаляют переворачиванием планшета или отсасыванием. Во все используемые лунки планшета вносят по 300 мкл промывочного буфера, после чего жидкость из лунок удаляют таким же образом. Процедуру повторяют 4 раза. После последней промывки в лунке не должно содержаться жидкости.

13. Во все используемые лунки планшета вносят по 100 мкл раствора хромогена и инкубируют в течение 7-15 минут при температуре от 18 до 240С в темном месте.

14. В лунку планшета с хромогеном добавляют по 100 мкл стопреагента для остановки ферментативной реакции.

15. Оптическую плотность (ОП) измеряют на фотометре вертикально сканирования при длине волны 450 нм. Окраска должна быть стабильна не менее 30 минут.

КАЧЕСТВЕННЫЙ АНАЛИЗ.

1. Порядок маркировки планшета и внесения образца приведен на схеме. Время внесения образца в лунки одного планшета не должно превышать 15 минут.

2. Упаковку со стрипами (с планшетом) вскрывают, в рамку вставляют необходимое для работы количество стрипов, во все используемые лунки вносят по 300 мкл промывочного буфера и оставляют на 1 минуту.

отсасыванием так, чтобы в лунке не осталось жидкости.

4. В лунку 1 стрипа ряда А вносят 50 мкл образца контрольного, содержащего 7,5 нг/мл прогестерона.

5. В оставшиеся лунки вносят 50 мкл анализируемых образцов (Х) молока или сыворотки (плазмы) крови.

6. В лунки планшета с контрольным и анализируемыми образцами вносят по 150 мкл раствора конъюгата.

7. Планшет инкубируют в течение 30 минут при температуре 37 0С в вибротермостате или термостате.

переворачиванием планшета или отсасыванием. Во все используемые лунки планшета вносят по 300 мкл промывочного буфера, после чего жидкость из лунок удаляют таким же образом. Процедуру повторяют 4 раза. После последней промывки в лунке не должно содержаться жидкости.

9. Во все используемые лунки планшета вносят по 100 мкл раствора хромогена и инкубируют в течение 7-15 минут при температуре от 18 до 240С в темном месте.

10. В лунку планшета с хромогеном добавляют по 100 мкл стопреагента для остановки ферментативной реакции. Окраска должна быть стабильна не менее 30 минут.

СХЕМА ВНЕСЕНИЯ ОБРАЗЦОВ

УЧЕТ РЕЗУЛЬТАТОВ РЕАКЦИИ КОЛИЧЕСТВЕННОГО И

КАЧЕСТВЕННОГО АНАЛИЗОВ.

1. Учт результатов реакции при количественном анализе.

Оптимальная плотность (ОП) растворов в лунках с контрольным и анализируемыми образцами после остановки ферментативной реакции измеряют на спектрофотометре «Униплан» фирмы ЗАО «Пикон» или на приборе аналогичного класса при длине волны 450 нм. Программное обеспечение прибора позволяет получать результаты измерений в виде конечных концентраций гормона в анализируемых образцах.

2. Учт результатов реакции при качественном анализе.

При качественном анализе и визуальном учте реакции сравнивают окраску содержимого лунок с анализируемыми пробами с окраской лунки образца контрольного. Интенсивность цветовой реакции обратно пропорциональна концентрации гормона в исследуемых пробах. Реакцию сравнивают по принципу: «положительная» - интенсивность окраски пробы ниже интенсивности окраски контрольного образца; «отрицательная» интенсивность окраски пробы и интенсивность окраски контрольного образца одинаковы.

При спектрометрическом учте результатов реакции качественного анализа сравнивают значения ОП анализируемых проб со значением ОП образца контрольного.

ГЛАВА 3. РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

3.1. Морфофункциональная реакция яичников свиноматок на экзогенную инъекцию Фоллимага (ГСЖК) При разработке биотехнологического способа повышения плодовитости свиноматок огромное значение имеет разработка методов индуцирования множественной овуляции (суперовуляции). После того, как было установлено, что введение экзогенного фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) не ускоряет рост отдельных фолликулов, а стимулирует развитие одновременно нескольких фолликулов до предовуляторной стадии, гонадотропные препараты, содержащие ФСГ-активность, были использованы для вызывания множественной овуляции у домашних животных.

В связи с тем, что главенствующим органом, определяющим плодовитость животных, является репродуктивная система, мы сочли нужным изучить морфофункциональную реакцию яичников свиноматок на экзогенное введение гонадотропина сыворотки жеребых кобыл (ГСЖК).

Как видно из рис.1 яичники свиноматок - парные органы. В них образуются женские половые клетки - ооциты, и гормоны, необходимые для осуществления процессов воспроизводства. У половозрастных свинок яичники имеют бобовидную форму и гладкую поверхность.

Незадолго до и после наступления половой зрелости в результате выпячивания над поверхностью яичников фолликулов и желтых тел яичники приобретают форму ежевики или тутовой ягоды (бугристость), их размеры и масса в большей степени зависят от стадии полового цикла, возраста и массы животных. Длина яичника колеблется от 2 до 7 см, ширина от 1,5 до 4 см (рис.2).

Яичники свиней имеют эластичную консистенцию. Цвет яичников зависит от состояния половой функции животных. У неполовозрелых свинок они белые (рис.3), перед овуляцией приобретают розово-красный (рис.4), а затем кирпично-красный цвет (рис.5).

Рисунок 3. Яичники неполовозрелых свинок Рисунок 4. Яичник свиноматки перед овуляцией.

Рисунок 5. Яичник свиноматки после овуляции (хорошо видны сформировавшиеся желтые тела).

Во время супоросности у свиней они становятся фиолетовыми (рис.6).

Рисунок 6. Яичники свиноматок в период супоросности.

Существуют различия в цвете обескровленных яичников (после убоя животных) и находящихся в физиологическом состоянии (при лапаротомии).

В последнем случае они имеют более интенсивную светло-красную окраску.

Яичники свиней покрыты зародышевыми клетками кубического соединительнотканная белочная оболочка (рис.7).

Рисунок 7. Соединительнотканная белочная оболочка, Она покрывает основу яичника, состоящую из рыхлой соединительной ткани. В ней различают наружную (корковую) и внутреннюю (мозговую) зоны. Мозговая зона состоит из рыхлой, частично ретикулярной, соединительной ткани, а соединительная ткань корковой зоны содержит тонкие пучки коллагеновых волокон и фиброциты. В соединительной ткани яичника как в корковой, так и в мозговой зоне имеются интерстициальные клетки. Они мезенхимного происхождения и участвуют как в эндокринной функции, вырабатывая эстрогены, так и в трофической. В корковом слое расположено множество фолликулов и желтых тел (рис.8).

В мозговой зоне находится большое количество нервных волокон, крупных кровеносных и лимфатических сосудов. В центре зоны они многократно ветвятся. Сосуды штопорообразно извиваются. Вены образуют венозное сплетение. Отсюда нервы и сосуды направляются в корковый слой яичника (рис.9), где достигают всех функциональных образований (фолликулов, желтых тел и т.д.).

Рисунок 9. Сосудистые и нервные сплетения в корковом слое яичника Вокруг фолликулов, желтых тел, атретических фолликулов и интерстициальных клеток формируются нервные сплетения. Нервы достигают яйцеклетки. В зависимости от стадии развития фолликулы располагаются в различных участках коркового слоя. Они состоят из половой и фолликулярных клеток. Последние выполняют по отношению к половой клетке трофическую (питательную) роль.

У неполовозрелых свинок самые мелкие фолликулы (первичные, примордиальные) располагаются в корковом слое у его поверхности. Их количество у новорожденных свинок достигает сотни тысяч. Каждый их них состоит из половой клетки (ооцита первого порядка), окружающего его одного слоя фолликулярных клеток и соединительнотканной оболочки теки. Периодически часть первичных фолликулов начинает расти. По мере роста и развития они перемещаются в корковом слое ближе к центру яичника. Во время развития эпителий фолликула из плоского становится сначала кубическим, а затем призматическим. Размножаясь, фолликулярные клетки окружают ооцит первого порядка сначала в два, а затем и в несколько слоев. Формируются так называемые вторичные фолликулы, которые еще больше углубляются в корковый слой.

В дальнейшем в центре фолликула появляется наполненная жидкостью полость, образующаяся из слившихся небольших наполненных жидкостью полостей между фолликулярными клетками. Фолликул превращается в пузырек (пузырчатый фолликул), Графов пузырек (рис.10).

В процессе развития фолликула происходит рост и овоцитов. Они покрываются блестящей (прозрачной) оболочкой, которая состоит из мукополисахаридов и является продуктом обмена веществ овоцита. Вокруг овоцита фолликулярный эпителий располагается в виде радиальных лучей (лучистый венчик). Эти клетки выполняют по отношению к овоциту трофическую (питательную) роль. Их длинные отростки проникают через отверстия в прозрачной оболочке к ее цитоплазме. Остальной фолликулярный эпителий фолликула называется зернистым.

Рисунок 10. Пузырчатые фолликулы в корковом слое яичника По мере роста пузырчатый фолликул над поверхностью яичника предстает в виде прозрачного пузырька (рис.11). Диаметр зрелого фолликула 10-12 мкм. Развитый фолликул представляет собой пузырек, центр которого заполнен жидкостью.

Рисунок 11. Пузырчатые фолликулы, выступающие В предовуляционный период на поверхности фолликула выявляется перекрещивающихся волокон соединительной ткани. Остальные участки оболочки фолликула собираются в складки в виде сильного расширения сосудов. Разрыв фолликула и выход из него зрелой яйцеклетки (процесс овуляции) происходит в верхней его части, наиболее сильно выступающей над поверхностью.

В настоящее время важнейшим резервом повышения рентабельности свиноводства и значительного увеличения производства свинины является интенсивное использование маточного стада. При этом важнейшей проблемой отрасли является повышение плодовитости и продуктивности свиноматок и сохранности полученного приплода.

Для реализации этой проблемы мы опирались на достижения современной науки, а именно - на раскрытые разработки приемов регулирования механизмов воспроизводительной функции свиноматок (синхронизация половой охоты, овуляции и опоросов, трансплантация яйцеклеток и т.д.).

Кроме того, достигнутые в последние годы успехи биологической науки в познании регуляции половой функции у животных создали все необходимые предпосылки для разработки эффективных методов управления процессом воспроизводства животных, а достижения современной химии открыли широкие возможности в использовании фармакологических средств для внедрения этих методов в практику животноводства.

В связи с тем, что главенствующим органом, определяющим плодовитость животных, являются яичники, мы сочли нужным изучить морфофункциональную реакцию яичников свиноматок на экзогенное введение препарата Фоллимаг.

С целью установления оптимальной дозы вводимого препарата и для определения эффективности индуцирования суперовуляции в яичниках свиноматок нами был инъецирован препарат «Фоллимаг» в дозах 600; 700 и 800 МЕ за 48 часов до забоя животных. После извлечения половых органов у убитых свиней нами визуально учитывалось морфофункциональное состояние яичников, в частности - рост и развитие фолликулов в яичниках свиноматок, обработанных Фоллимагом.

Рисунок 12. Яичники свиней после введения 600 МЕ Фоллимага Результаты проведенных исследований, представленные на рисунке 12, показывают, что введение Фоллимага свиноматкам в дозе 600 МЕ с целью стимуляции половой охоты является недостаточным, т.к. не происходит фолликулогенеза, т.е. вводимая доза не вызвала активизацию роста и развития фолликулов.

Исследования яичников свиней, обработанных в дозе 700 МЕ на голову, показали, что указанная доза также является недостаточной для индуцирования суперовуляции в яичниках свиней (рис.13).

Рисунок 13. Яичники свиней после введения 700 МЕ Фоллимага Введение Фоллимага в дозе 800 МЕ на голову вызвало положительное действие на яичники свиней, т.е. индуцировало рост и развитие нескольких фолликулов одновременно для последующей их суперовуляции и оплодотворения большего числа яйцеклеток и, соответственно, получения большего количества приплода (рис.14).

Рисунок 14. Морфологическая реакция яичников свиней на экзогенное Таки образом, исходя из полученных результатов морфологического исследования яичников свиней, представленных на рисунках 12,13,14;

установлено, что введение Фоллимага в дозе 600 и 700 МЕ не вызвало желаемого эффекта суперовуляции в яичниках свиней и наиболее оптимальной дозой для суперовуляции и последующего повышения плодовитости свиней является 800 МЕ на животное.

В достижении устойчивого роста производства продуктов питания для населения страны особое внимание в настоящее время уделяют ускоренному развитию свиноводства, как наиболее скороспелой отрасли животноводства.

Успехи в реализации поставленных задач во многом определяются интенсивностью использования маточного поголовья в воспроизводстве.

Физиологические нормативы репродуктивного цикла свиноматок позволяют получать до 2,2-2,3 опоросов и от каждой свиноматки до 22-23 деловых поросят. По состоянию на 2009 г. репродуктивный потенциал маточного поголовья по свиноводческим комплексам страны в среднем реализуется на 80-83%, а в целом по отрасли - еще меньше.

Нарушения воспроизводительной функции у свиноматок связаны, как правило, с несоблюдением в полном объеме требований гигиены кормления и многочисленными технологическими (и климатическими) стрессовыми воздействиями, приводящими к угнетению функциональной деятельности эндокринной системы и расстройству механизмов регуляции функции воспроизведения. Клинически это проявляется нарушением половой цикличности, снижением оплодотворяемости и многоплодия, повышением эмбриональной смертности и абортов, слабостью родовой деятельности и послеродовыми заболеваниями.

Поэтому в системе мероприятий по обеспечению репродуктивного здоровья свиноматок, наряду с естественными факторами регуляции половой функции, вполне оправданным является применение корригирующей гормоноподобных препаратов, обеспечивающих коррекцию функциональной деятельности гипоталамо-гипофизарно-гонадальной системы и смягчающих отрицательное действие на репродуктивную функцию неблагоприятных факторов среды обитания животных.

Для направленной регуляции плодовитости животных используют в основном гонадотропные препараты плацентарного происхождения (гонадотропины, получаемые из сыворотки крови жеребых кобыл), обладающие фолликулостимулирующим, лютенизирующим и тиреотропным действием, гонадолиберины (синтетические аналоги гонадотропин-рилизинггормона), обеспечивающие повышение функциональной активности аденогипофиза, активизирующие процесс созревания фолликулов и синхронизацию овуляции, а также простагландины F2, обладающие лютеолитическим и миотропным действием. Специфичность действия предопределяет и тактику их практического использования.

введения гонадотропных препаратов получают при отсутствии в яичниках активных лютеиновых структур (желтых тел, лютеиновых кист), то есть на фоне депрессии генеративной и гормональной функции гонад, вызываемой лактационной доминантой (подсос) и чрезмерным воздействием различных стресс-факторов. Поэтому наиболее часто гонадотропины используют для активизации функциональной деятельности яичников у свиноматок после отъема поросят для профилактики бесплодия.

В связи с вышеизложенным, на основании полученных результатов исследований яичников свиней нами были набраны опытная и контрольная группы свиноматок по 15 голов в каждой с целью получения максимального количества приплода от них. Животным опытной группы был инъецирован препарат «Фоллимаг» в дозе 800 МЕ на голову, внутримышечно в каудальную область уха.

производился количественный учет приплода, родившихся от свиноматок опытной и контрольной групп. Результаты проведенных исследований представлены в таблице 2.

Таблица 2 - Показатели опороса свиней после стимуляции репродуктивной функции препаратом Фоллимаг, ( X±S X, n=15) Средний выход поросят *- Р 0,95; **- P>0,99 здесь и далее исследований мы считаем, что применение препарата Фоллимаг в дозе МЕ свиноматкам действительно стимулирует репродуктивную функцию свиноматок, повышая их плодовитость и синхронную оплодотворяемость за счет индуцирования суперовуляции в яичниках свиней и оплодотворения большего числа суперовулировавшихся фолликулов, позволяющее получать большее количество полноценного приплода за счет максимального индуцирования проявления генетического и биохимического потенциала самих свиноматок, заложенного в их генотипе. Кроме того, разработанный нами биотехнологический способ стимуляции воспроизводительной функции свиноматок при внедрении его в свиноводство позволит значительно снизить себестоимость производимой продукции, повысить конкурентоспособность отрасли за счет максимального получения приплода, а также усовершенствовать саму технологию ведения свиноводства и повысить производительность труда его работников.

3.3. Индуцирование синтеза соматотропного гормона гипофизом поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза В настоящее время в агропромышленном комплексе (АПК) нашей страны одной из самых крупных, приоритетных и актуальных проблем, согласно национального проекта «Развитие АПК», является интенсификация животноводства, реализация которой должна основываться на использовании инновационных методов технологии ведения животноводства и быстрейшего внедрения их в производство. В этой связи заслуживает серьезного внимания ученых и практиков разработка и внедрение в производство методов биотехнологии и бионанотехнологии, так как данные отрасли науки обеспечивают высокий потенциал экономического роста, от которых зависит качество жизни населения, технологическая, продовольственная и оборонная безопасность, ресурсо- и энергосбережение любой страны.

Кроме того, в связи с переходом АПК на рыночные условия, разработка и использование методов биотехнологии становятся наиболее актуальными и практически значимыми, так как проблема повышения доходности и рентабельности отрасли животноводства встает очень остро в этих жестких рыночных условиях, особенно при глобальном экономическом кризисе и обеспечении продовольственной безопасности страны.

Реализация данной актуальной проблемы, по мнению ведущих ученых, возможна за счет разработки и внедрения в производство современных эффективных биотехнологических методов повышения обмена веществ в организме животных, стимуляции скорости роста и прироста живой массы животных на ранней стадии постнатального онтогенеза, так как именно в этот период постнатального развития ростовые процессы у животных являются доминирующими. Поэтому заслуживает серьезного внимания ученых и, на наш взгляд, разработка методов гормональной регуляции, стимулирующих основные процессы жизнедеятельности животных, а именно генетический и биохимический потенциал роста и развития самих животных, заложенных в их генотипе.

При разработке данного метода к нам пришла оригинальная научная мысль - максимально использовать внутренние резервы организма самих животных, в частности, использовать гормональную регуляцию процессов роста и развития животных на ранней стадии постнатального онтогенеза, так как именно в этот период интенсивность (скорость) роста новорожденных животных наиболее высокая, просто необходимо запустить этот механизм запуска роста и развития животных. Необходимость и своевременность разработки данного метода обоснована и тем, что гормоны обладают высокой биологической активностью и оказывают свое действие в ничтожно малых концентрациях, составляющих в массовом выражении нанограммымикрограммы- 10-6-10-9г на 100мкг (нг%-мкг%) или в молярном выражении моль.

Для иллюстрации биологической активности гормонов можно привести следующие расчеты, сделанные на основе имеющихся экспериментальных данных. Так, по данным ведущего эндокринолога В.Б.

Розена (1980), 1 грамм женского полового гормона - эстрадиола может вызвать течку у 10000000 неполовозрелых мышей, 1 грамм гормоноида адреналина может активизировать работу 100000000 изолированных сердец, 1 грамм гормона насекомых - экдизона - вызвать линьку у 200000000 особей и так далее.

Следовательно, гормоны обладают большой мощностью и широким спектром действия на обмен веществ клеток, тканей и органов, на их физиологию и морфологию и, соответственно, на рост и развитие животных.

При этом гормональная регуляция в организме млекопитающих оказывает порой решающее влияние на фундаментальные жизненные процессы многоклеточного организма и на их воспроизводительную функцию.

Опираясь на эти теоретические данные, к нам пришла оригинальная мысль, а именно - максимально использовать внутренние резервы организма самих животных, в частности, использовать гормональную регуляцию процессов роста и развития животных на ранней стадии постнатального их онтогенеза. Эти доминирующие ростовые процессы, происходящие в организме новорожденных животных, в конечном итоге обеспечивают усиление всех жизненно важных функций организма, необходимых для их полноценного существования.

Ведущими эндокринологами доказано, что в системной регуляции ростовых процессов в организме позвоночных животных главенствующая роль принадлежит соматотропному гормону (СТГ), который синтезируется гипофизом животных. Одной из главных функций этого гипофизарного гормона является стимулирующее влияние на линейный рост, общие размеры и увеличение массы у животных.

Исходя из этих данных, перед нами была поставлена задача разработать эффективный биотехнологический способ стимуляции синтеза соматотропного гормона (СТГ) гипофизом поросят на ранней стадии постнатального их онтогенеза.

«Сурфагон», являющийся синтетическим аналогом гонадотропин - рилизинггормона ЛГ-РГ-люли-берина (нейросекрета гипоталамуса). В начале наших исследований мы решили достоверно убедиться в том, что экзогенное введение Сурфагона действительно будет индуцировать синтез СТГ гипофизом поросят на ранней стадии постнатального их онтогенеза. Для получения достоверных результатов была набрана опытная группа поросят в возрасте 1 месяц, которым был введен рилизинг-гормон «Сурфагон».

Мы надеялись и предполагали, что внутримышечная инъекция синтетического аналога рилизинг-гормона новорожденным поросятам выступит в роли стимулирующего фактора для синтеза СТГ гипофизом поросят на ранней стадии постнатального их онтогенеза. Результаты проведенных исследований представлены на рисунке 15.

Рисунок 15. Концентрация СТГ в крови поросят до и после введения Как видно из рисунка 15, концентрация соматотропного гормона в крови поросят опытной группы уже через 3 часа после введения синтетического аналога рилизинг-гормона имеет незначительную тенденцию к повышению, через 24 часа после введения препарата повышается в 1,6 раза соматотропный гормон окажет свое биологическое действие на рост и развитие животных.

3.4. Эффективность применения синтетического аналога На следующем этапе исследований, убедившись в том, что введение синтетического аналога рилизинг-гормона действительно индуцирует синтез постнатального онтогенеза, мы производили взвешивание поросят до и через 15 дней после введения синтетического аналога рилизинг-гормона с целью получения достоверных результатов прироста живой массы и его связи с индуцированным синтезом соматотропного гормона гипофизом поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза. Результаты проведенных исследований представлены в таблице 3.

Таблица 3 - Показатели живой массы поросят до и после введения синтетического аналога рилизинг-гормона, ( X±S X, n=10) Из таблицы 3 видно, что средняя живая масса поросят до введения синтетического аналога рилизинг-гормона была одинаковой и составила в возрасте 1 месяц - 4,1 кг. Но, как мы видим из таблицы 3, уже через полмесяца после введения данного препарата живая масса поросят опытной группы была выше по сравнению с контролем. Так, в возрасте 1,5 месяца она составила 6,86±0,51 кг, а в контрольной - 6,0±0,62 кг.

Кроме того, с целью изучения взаимосвязи между индуцированным синтезом соматотропного гормона в крови поросят опытной группы и показателями прироста их живой массы, нами была изучена корреляционная связь между данными показателями путем вычисления коэффициента корреляции. Результаты показали, что коэффициент корреляции равен +0,82;

переменными, то есть за изменением уровня концентрации СТГ в крови подопытных животных следует соответствующее изменение показателей живой массы животных.

На следующем этапе проведенных исследований нами производилось взвешивание животных обеих групп через каждые 15 дней с целью получения достоверных результатов показателей прироста живой массы поросят опытной группы. Результаты проведенных исследований представлены в таблице 4.

Таблица 4 - Показатели прироста живой массы поросят опытной группы после введения сурфагона и поросят контрольной группы, Живая масса Как видно из таблицы 4, живая масса поросят опытной группы в течение всего периода наблюдений была достоверно выше по сравнению с показателями контрольной группы. Так, в возрасте 2 месяца она составила у животных опытной группы 9,8±0,76 кг, что на 2,3 кг больше в среднем по группе, чем у поросят контрольной группы (7,5±1,1 кг). В дальнейшие периоды исследований живая масса животных опытной группы также была выше по сравнению с показателями у контрольной группы: так, в возрасте 2,5 месяца - 13,7±1,17 в опытной группе и 10,2±1,29 кг - в контрольной группе; в 3 месячном возрасте - 20,4±1,8 и 15,3±1,77 кг соответственно. В возрасте 3,5 месяца средняя живая масса поросят опытной группы составляла 26,2±1,71 кг, а контрольной группы животных - 19,3±1,93 кг, разница между данными показателями составила 6,9 кг (35,8%).

На следующем этапе исследований нами производилось взвешивание поросят опытной группы в возрасте 7-8 месяцев, перед их забоем. Результаты проведенных исследований представлены в таблице 5.

Таблица 5 - Показатели живой массы поросят опытной группы перед забоем, Возраст 7-8 мес.

Поросят контрольной группы взвешивали в возрасте 10-12 месяцев, также перед их забоем на мясо. Результаты взвешиваний представлены в таблице 6.

Таблица 6 - Показатели живой массы поросят контрольной группы перед Для более глубокого представления об интенсивности роста животных опытной группы, взаимосвязи между величиной растущей массы и скоростью роста нами вычислялась абсолютная скорость роста по возрастным периодам. Полученные результаты представлены в таблице 7.

Таблица 7 - Абсолютный прирост поросят по периодам исследований (кг), Рассматривая и анализируя динамику изменения абсолютного прироста животных опытной и контрольной групп по возрастным периодам, можно отметить, что в период до 1,5 месяцев разница между исследуемыми показателями составила 17,2%; с 1,5 до 3,5 месячного возраста - 42,2%; в периоде 3,5-7,5 месяцев в опытной группе абсолютная скорость роста составила 95,25 кг, тогда как в контрольной группе в периоде 3,5-11 месяцев она оставила 99,9 кг. Исходя из полученных данных, следует, что скорость абсолютного прироста поросят опытной группы была значительно выше, т.к.

в возрасте 7,5 месяцев средняя живая масса составила 115,59±2,68 кг, тогда как живая масса поросят контрольной группы в возрасте 11 месяцев составила всего 114,2±2,81 кг.

Очевидно, скорость роста поросят опытной группы обусловлена мощным биологическим действием соматотропного гормона, который действует на процессы роста и развития животных опосредованно, путем гипертрофии внутренних паренхиматозных органов, а гипертрофия внутренних паренхиматозных органов всегда сопровождается повышением обмена веществ в организма животных, что приводит к усилению процессов роста и развития животных.

3.5. Концентрация гипофизарных гормонов в крови и в мясе животных В современном промышленном птицеводстве и животноводстве для увеличения производства продукции нередко используются различные гормональные стимуляторы роста (прогестерон, тестостерон, эстрадиол 17 и др.), что может приводить к их избыточному накоплению в мясе и мясопродуктах, это представляет серьезную опасность для здоровья человека, поскольку данные соединения нарушают обменные процессы и гормональный статус организма, влияют на сердечную деятельность (Островская А.В., 2004).

В связи с этим, во многих странах мира ужесточаются требования по контролю за содержанием гормональных препаратов в продуктах за содержанием гормональных препаратов в продуктах животного происхождения, что предусмотрено соответствующими Директивами ЕЭС 89/662/ЕЕС, 90/425/ЕЕС, 96/23/ЕС. В нашей стране Департаментом ветеринарии Министерства сельского хозяйства РФ издано соответствующее указание (№10-7-1/900 от 04.10.1999 г.) по организации Государственного ветеринарного надзора за содержанием гормональных стимуляторов роста и тиреостатиков в продуктах животного происхождения, в котором отражены требования по предупреждению попадания гормонов в продовольственное сырье; требования, критерии и мероприятия, касающиеся их применения в ветеринарной практике, а также лабораторный контроль за содержанием этих веществ в продуктах и кормах.

В регуляции многих жизненных функций организма животного принимают участие железы внутренней секреции. Эти железы называются так потому, что не имеют выводных протоков и вырабатываемые в них вещества непосредственно поступают в кровь. Такие вещества носят название гормонов или инкретов. Гормоны отличаются высокой биологической активностью, но в то же время обладают специфичностью, то есть каждый гормон оказывает влияние на определенные функции организма. Одни гормоны влияют на рост, другие - на обмен веществ, третьи - на развитие организма и так далее.

Трудно определить в организме такие физиологические процессы, которые не находились бы под регулирующим влиянием гормонов. Согласно современным представлениям, действие гормонов основано на стимуляции или угнетении каталитической функции определенных ферментов. Этот эффект достигается посредством активации или ингибирования уже имеющихся ферментов в клетках за счет ускорения их синтеза путем активации генов.

Гормоны осуществляют свое биологическое действие, соединяясь с рецепторами информационными молекулами, трансформирующими гормональный сигнал в гормональное действие. Рецептор после опознавания и связывания гормона генерирует химические или физические сигналы, которые вызывают последовательную цепь пострецепторных взаимодействий, заканчивающихся проявлением специфического биологического действия гормона.

происходит непрерывно, всегда в одинаковом количестве. Если организму животных потребуется большее количество гормонов, клетки соответствующей железы (по нервным путям посредством рецепторов, находящихся в самой железе) получают нервный стимул для повышения своей активности и наоборот, то есть избыточный синтез какого-либо гормона приводит к включению регулирующего механизма обратной связи, который ограничивает образование и выделение гормона. С другой стороны, само понижение уровня одного гормона в крови животных ведет к повышению секреции другого гормона по механизму обратной связи или принципу «плюс-минус взаимодействия», впервые сформулированным отечественным ученым М.М. Завадовским.

Гипоталамо-гипофизарная регуляция осуществляется механизмами, функционирующими по принципу обратной связи, в которых четко выделяются различные уровни взаимодействия.

В целях определения аккумуляции гормонов в тканях животных и, соответственно, исключения канцерогенного и тератогенного действия гормонов в крови и в мясе подопытных животных, мы провели исследования по определению концентрации соматотропного гормона в крови животных, взятой во время их забоя, и в пробах мяса подопытных животных, которых по достижению 7-8 месяцев сдавали на забой. В качестве сравнения взяли кровь и пробы мяса от животных контрольной группы, которым на ранней стадии постнатального онтогенеза не вводили синтетический аналог рилизинг-гормона «Сурфагон». Результаты проведенных исследований показали, что исследуемый соматотропный гормон не был обнаружен в крови и в пробах мяса, взятых от животных опытной и контрольной групп.

Таким образом, внутримышечное введение синтетического аналога рилизинг-гормона подопытным животным не вызывает у них аккумуляции гипофизарных гормонов в мясе, следовательно, они не могут оказать канцерогенного и тератогенного действия на организм человека в результате потребления мяса, что отвечает требованиям приложения 12 Санитарных Правил и Нормативов 2.3.2.1078-01 «Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов».

3.6. Экономическая эффективность результатов исследований Многообразие объектов животноводческой деятельности, разные направления животноводческой работы обусловили разработку системы специальных экономических показателей, позволяющих выявить эффективность затрат труда специалистов животноводства, целесообразность использования тех или иных средств (Юров И.И., 2001), в частности внедрения инновационных биотехнологических способов интенсификации свиноводства.

Определение экономической эффективности результатов научных исследований является важным критерием оценки научных работ, так как интенсификация отраслей животноводства возможна только путем повышения рентабельности самих отраслей.

Таблица 8 - Расчет экономической эффективности применения живой массы молодняка свиней, руб.

Стоимость 1 поросенка 10,9112=1220,8 10,9112=1220, при рождении, руб.

дополнительного количества приплода, руб.

результате проведенных исследований Экономическая 57610,8/4650=12, эффективность на руб.затрат В таблице 8 дан расчет экономической эффективности применения биотехнологического способа повышения плодовитости свиноматок за счет максимального индуцирования проявления генетического и биохимического потенциала самих животных, заложенного в их генотипе. Полученные результаты показали, что применение данного биотехнологического способа действительно экономически выгодно, так как экономическая эффективность в результате проведенных исследований составила 57610,8 рублей (расчет только на 15 животных); на рубль затрат - 12,4 рубля.

биотехнологических способов интенсификации свиноводства является разработка биотехнологического способа повышения прироста живой массы поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза. Результаты проведенных исследований показали, что животных опытной группы отправляли на забой в возрасте 7-8 месяцев, средняя живая масса которых составляла 115,59±2,68 кг; животных контрольной группы сдавали на забой в возрасте 10-12 месяцев, средняя живая масса - 114,2±2,81 кг, причем разница между показателями живой массы животных опытной и контрольной групп была незначительной, а разница между показателями возраста забоя животных обеих групп составила в среднем 3,5 месяца (таблица 9).

Таблица 9 - Расчет экономической эффективности применения синтетического аналога рилизинг-гормона «Сурфагон»

перед забоем, кг материальных и трудовых затрат за 3, мес., руб.

результате проведенных исследований эффективность на руб.затрат Результаты проведенных расчетов показывают, что применение синтетического аналога рилизинг-гормона «Сурфагон» с целью стимуляции роста и развития поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза действительно экономически выгодно: так, при забое животных в возрасте 7-8 месяцев хозяйство получит прибыль в размере 12565,1 рублей за счет экономии материальных и трудовых затрат в расчете на 3,5 месяца на голов. Экономическая эффективность при этом на рубль затрат составила 31,6 рублей.

Таким образом, разработанные нами биотехнологические способы повышения плодовитости свиноматок и стимуляции роста и развития поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза обеспечат хозяйствам ресурсо- и энергосбережение, сократят материальные затраты, тем самым способствуя повышению рентабельности производства и снижению себестоимости производимой продукции, что очень важно и актуально в современных рыночных условиях.

ГЛАВА 4. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ

Мир вступил в XXI век с множеством нерешенных проблем, среди которых продовольственная остается наиболее важной, острой и насущной.

Поэтому основная задача животноводов - устранение дефицита продуктов питания путем интенсификации животноводства. Изучение состояния животноводства, играющего решающую роль в продовольственном обеспечении населения, приобретает особую значимость. Во многих странах, особенно в нашей стране, существует продовольственный дефицит.

Важнейший показатель качества рациона людей - потребление животного белка. В развитых странах, с учетом импорта и экспорта, потребляется более 50 г животного белка в сутки на человека, а в развивающихся странах 10-30 г - намного ниже рационной нормы.

Подавляющая часть населения земного шара в ближайшие годы не будет обеспечена нормой питания по калорийности, а достижение нормы потребления животного белка остается проблемой для всего человечества (Мысик А.Т., 2010).

Учитывая существующий разрыв между фактическим уровнем потребления молочных и мясных продуктов и нормами их питания во многих странах мира, особое внимание уделяется развитию животноводства и наращиванию производства животноводческой продукции.

По-прежнему в решении мясной проблемы свиноводство занимает первое место - 37,7%, эта отрасль животноводства выгодно отличается эффективной конверсией корма в продукцию по сравнению со жвачными животными.

Поэтому, в современных рыночных условиях особое значение приобретает рациональное использование генетических ресурсов животноводства и производство животноводческой продукции методами ресурсо- и энергосберегающих «Высоких технологий», именно Биотехнологий и Бионанотехнологий.

Развитие свиноводства в нашей стране обеспечивалось высоким научным потенциалом, были разработаны эффективные технологии производства свинины. Но, к сожалению, в процессе реформирования агропромышленного комплекса, которое проводилось без достаточной научной разработки и без глубокого экономического анализа возможных негативных последствий, наибольшее снижение производства произошло в зернопотребляющих отраслях животноводства. Многие хозяйства, специализирующиеся на производстве свинины, в силу резкого удорожания концентрированных кормов, диспаритета цен, отсутствия инвестиций и задолженностью бюджетам всех уровней, поставщикам энергетических и других ресурсов. В результате численность поголовья и производство свинины уменьшилось более чем в 2 раза. Особенно резко снизилось производство в сельхозпредприятиях, реализация на убой свиней сократилась в 5 раз, весовые кондиции животных, реализованных на мясо, снизились более чем на 20 % и сегодня остаются низкими - 85 кг.

Такая неблагоприятная ситуация в животноводстве вынудила и восстановлению и развитию животноводства в новых экономических условиях.

предусмотрено увеличить производство животноводческой продукции в следующих размерах: в расчете на душу населения производство молока должно возрасти с 220 до 386 кг, мяса - с 30 до 70 кг, яиц с 234 до 324 шт.

В среднем по стране удельный вес продукции скотоводства должен быть в пределах 52 %, свиноводства - 32 %, овцеводства - 5%, птицеводства от общей стоимости животноводческой продукции.

В структуре мясной продукции доля говядины должна составить 44 %, свинины - 32 %, баранины и прочих видов мяса - 6%. Кроме того, Указом продовольственной безопасности РФ, где стратегической целью продовольственной безопасности указано обеспечение населения нашей страны безопасной животноводческой продукцией. Гарантией ее достижения является стабильность и увеличение объемов внутреннего производства, а также наличие и создание необходимых резервов и запасов, имеющих пороговые значения в отношении: зерна - не менее 95%; сахара - не менее 80%; растительного масла - не менее 80%; мяса и мясопродуктов (в пересчете на мясо) - не менее 90%.

Для успешной реализации данной Доктрины продовольственной безопасности РФ, существующие традиционные методы производства продукции животноводства, безусловно, еще не утратили своего значения и животноводческой продукции.

Но, вместе с тем, во многих развитых странах в настоящее время наблюдается бурный рост интереса к производству животноводческой и другой сельскохозяйственной продукции методами инновационных технологий, а именно - «Биотехнологий» и «Бионанотехнологий», т.к.

данные отрасли науки определяют научно-технический прогресс любой страны, обеспечивают ее оборонную и продовольственную безопасность и заметно улучшают качество жизни населения этой страны.

Интенсификация животноводства и переход его на рыночные отношения, на которые нацеливают объективные условия, особенно остро выдвигают перед биологической наукой проблему разработки эффективных методов управления процессом воспроизводительной функции животных.

В связи с вышеизложенным, для реализации интенсификации технологии ведения свиноводства и производства свиноводческой продукции, перед нами была поставлена цель - разработать и внедрить в производство эффективные биотехнологические способы повышения плодовитости свиноматок и повышения прироста живой массы поросят на ранней стадии постнатального их онтогенеза.

Важнейшим резервом повышения рентабельности свиноводства и значительного увеличения производства свинины является интенсивное использование маточного стада. При этом важнейшей проблемой отрасли является повышение плодовитости и продуктивности свиноматок и сохранности полученного приплода. (Б.Д. Кальницкий, 1985; В.Д. Кабанов, 2001 и др.).

Для реализации этой проблемы мы опирались на достижения современной науки, а именно - на раскрытые разработки приемов регулирования механизмов воспроизводительной функции свиноматок (синхронизация половой охоты, овуляции и опоросов, трансплантация яйцеклеток и т.д.).

В связи с вышеуказанным, в целях реализации данной инновационной разработки, мы использовали препарат «Фоллимаг» - высокоочищенный от иммуногенных белков гонадотропный гормон сыворотки жеребых кобыл. С целью установления оптимальной дозы препарата для индуцирования множественной овуляции, мы определяли визуально морфофункциональное состояние яичников свиноматок, обработанных Фоллимагом. Результаты проведенных исследований показали, что наиболее оптимальной дозой для индуцирования суперовуляции в яичниках свиней является доза 800 МЕ на животное.

На следующем этапе экспериментальных исследований нами производился количественный учет приплода, принесенного свиноматками из опытной и контрольной групп. Полученные результаты показали, что среднее количество поросят, полученных в опоросах от свиноматок опытной группы, было достоверно больше по сравнению с приплодом от свиноматок контрольной группы. Так, при биометрической обработке полученных данных было установлено, что применение препарата Фоллимаг повысило плодовитость свиноматок опытной группы по сравнению со свиноматками контрольной группы на 39,5%.

Таким образом, мы считаем, что применение препарата Фоллимаг свиноматкам действительно стимулирует репродуктивную функцию свиноматок, повышая их плодовитость и оплодотворяемость за счет активизации множественной овуляции и оплодотворения большего числа яйцеклеток, позволяющее получить большее количество полноценного приплода за счет максимального использования генетического и биохимического потенциала самих свиноматок, заложенного в их генотипе.

Кроме того, разработанный нами бионанотехнологический способ стимуляции воспроизводительной функции свиноматок при внедрении его в сельскохозяйственное производство позволит значительно снизить себестоимость производимой продукции за счет максимального получения приплода, а также усовершенствовать саму технологию ведения свиноводства.

биотехнологических способов интенсификации свиноводства, на наш взгляд, является разработка биотехнологического способа повышения прироста живой массы поросят на ранней стадии постнатального их развития. При этом мы исходили из теоретических данных ученых, в частности, ведущими эндокринологами доказано, что в системной регуляции ростовых процессов в организме позвоночных животных и человека главенствующая роль принадлежит СТГ, который синтезируется гипофизом животных. Одной из главных функций этого гипофизарного гормона является стимулирующее влияние на линейный рост, общие размеры тела, его массу, размеры и массу отдельных органов.

При разработке данного способа мы опирались на данные ведущих эндокринологов о том, что гормоны обладают высокой биологической активностью, большой мощностью и широким спектром действия на обмен веществ клеток, тканей и органов, на их физиологию и морфологию, и, соответственно, на рост и развитие животных, а также и на то, что этот способ, по нашему мнению, должен полностью относиться к инновационной технологии ведения животноводства и производства животноводческой продукции, так как в корне будет отличаться от традиционной технологии ведения животноводства, и обладать неоспоримыми преимуществами, которые будут отражены в выводах.

Для выполнения данной работы мы использовали синтетический аналог рилизинг-гормона (нейросекрета гипоталамуса). В начале наших исследований мы решили достоверно убедиться в том, что экзогенное введение синтетического аналога рилизинг-гормона действительно будет индуцировать синтез СТГ гипофизом поросят на ранней стадии постнатального их онтогенеза. Для получения достоверных результатов и определения концентрации СТГ у поросят была набрана опытная группа поросят в возрасте 1 месяц, которым был введен синтетический аналог рилизинг-гормона в дозе 5 мкг на животное.

Мы надеялись и предполагали, что внутримышечная инъекция синтетического аналога рилизинг-гормона новорожденным поросятам выступит в роли стимулирующего фактора для синтеза СТГ гипофизом поросят на ранней стадии постнатального их онтогенеза. Результаты проведенных исследований показали, что концентрация исследуемого соматотропного гормона имела тенденцию к повышению после введения синтетического аналога рилизинг-гормона в крови животных опытной группы (от 0,710 до 1,151 нг/мл).

Параллельно с гормональными исследованиями мы производили взвешивание поросят до и через 15 дней после инъекции синтетического аналога рилизинг-гормона. Полученные результаты показали, что средняя живая масса поросят до введения синтетического аналога рилизинг-гормона была одинаковой и составила в возрасте 1 месяц - 4,1 кг., но уже через полмесяца после введения данного препарата живая масса поросят опытной группы была выше по сравнению с контролем. Так, в возрасте 1,5 месяца она составила 6,86±0,51 кг, а в контрольной - 6,0±0,62 кг. Кроме того, коэффициент корреляции составил +0,82, что указывает на прямо пропорциональную зависимость между показателями концентрации соматотропного гормона в крови животных опытной группы и показателями прироста их живой массы.

На следующем этапе проведенных исследований нами производилось взвешивание животных обеих групп через каждые 15 дней с целью получения достоверных результатов показателей прироста живой массы поросят опытной группы. Результаты проведенных исследований показали, что живая масса поросят опытной группы в течение всего периода наблюдений была достоверно выше по сравнению с контрольной группой.

Так, в возрасте 2 мес. она составила у животных опытной группы 9,8±0,76 кг, а у поросят контрольной группы - 7,5±1,1 кг, что на целых 2,3 кг больше в среднем по группе. В дальнейшие периоды исследований живая масса животных опытной группы также была выше по сравнению с показателями у контрольной группы так, в возрасте 2,5 мес. - 13,7±1,17 и 10,2±1,29 кг; в мес. - 20,4±1,8 и 15,3±1,77 кг; в 3,5 мес. - 26,2±1,71 и 19,3±1,93 кг соответственно. Таким образом, разница между показателями живой массы животных опытной и контрольной групп в 3,5-месячном возрасте составила 35,8%. Разница между этими данными была статистически достоверна с вероятностью p>0,95.

Для более глубокого представления об интенсивности роста животных опытной группы, взаимосвязи между величиной растущей массы и скоростью роста мы проанализировали динамику изменения абсолютного прироста живой массы животных опытной и контрольной групп по возрастным периодам, вплоть до самого забоя животных. Результаты проведенных исследований показали, что в период до 1,5 месяцев разница между исследуемыми показателями составила 17,2%; с 1,5 до 3,5 месячного возраста - 42,2%; в периоде 3,5-7,5 месяцев в опытной группе абсолютная скорость роста составила 95,25 кг, тогда как в контрольной группе в периоде 3,5-11 месяцев она оставила 99,9 кг. Исходя из полученных данных, следует, что скорость абсолютного прироста поросят опытной группы была значительно выше, т.к. в возрасте 7,5 месяцев средняя живая масса составила 115,59±2,68 кг, тогда как живая масса поросят контрольной группы в возрасте 11 месяцев составила всего 114,2±2,81 кг.

Очевидно, после введения синтетического аналога рилизинг-гормона у подопытных животных происходит ускоренное наращивание живой массы по сравнению с поросятами контрольной группы за счет биологического действия СТГ, в частности - за счет стимуляции гипертрофии внутренних паренхиматозных органов, которая всегда сопровождается повышением обмена веществ в организме животных.

Таким образом, мы считаем, что нами разработаны эффективные биотехнологические способы интенсификации свиноводства и производства свиноводческой продукции, которые полностью соответствуют инновационной технологии ведения свиноводства, экономически эффективны, обеспечивают ресурсо- и энергосбережение данной отрасли.

ВЫВОДЫ

Экзогенное введение препарата Фоллимаг в дозе 800 МЕ на голову обеспечивает оптимальную суперовуляторную реакцию яичников свиней для повышения их воспроизводительной способности;

Фоллимаг позволяет повысить уровень их плодовитости на 39,5%;

Внутримышечная инъекция синтетического аналога нейросекрета гипоталамуса (рилизинг-гормона) поросятам стимулирует синтез постнатального их онтогенеза в 1,6 раза (38,3%);

Искусственно индуцированный синтез соматотропного гормона стимулирует повышение живой массы поросят в возрасте 3,5 мес. на 35,8% по сравнению с показателями поросят контрольной группы;

гипофизом поросят сопровождается эффективной трансформацией потребляемого корма в мясную продукцию и, следовательно, снижает себестоимость производства свинины.

Соматотропный гормон (гормон роста) в крови, взятой во время забоя свиней, и в пробах мяса, отобранных от свиней опытной и контрольной групп после забоя не выявлялся, что отвечает требованиям приложения Санитарных Правил и Нормативов 2.3.2.1078-01 «Гигиенические требования безопасности и пищевой ценности пищевых продуктов»;

Разработанный биотехнологический способ стимуляции прироста живой массы поросят повышает производительность труда работников свиноводства и приводит к интенсификации технологии ведения свиноводства.

Экономическая эффективность на 1 рубль затрат составила при применении Фоллимага - 12,4 рубля, при применении Сурфагона - 31,6 руб.

плодовитости свиней и стимуляции прироста живой массы поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза позволяют снизить себестоимость производимой продукции и повысить ее конкурентоспособность.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

Разработанные биотехнологические способы стимуляции воспроизводства свиней и прироста живой массы поросят на ранней стадии постнатального онтогенеза предлагаются для внедрения их в технологию ведения свиноводства хозяйств с разной формой собственности.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ:

Абрамова, И. М. Влияние питания на морфофункциональное развитие репродуктивных органов животных / И.М. Абрамова, Ф.Г. Каюмов // Вестник РАСХН. - 2004. - №5. - С.55-56.

Айдагулова, C. B. Роль патологии фолликулярной ткани яичников в развитии овариальной дисфункции / С. В. Айдагулова, Г. И.

Непомнящих, Ю. В. Галкина, И. О. Маринкин, В. М. Кулешов// Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 2007. - Т.144. С.452-456.

Акатов, В. А. Ветеринарное акушерство и гинекология / В. А. Акатов, Г. А. Кононов. - Л.: Колос, 1977.

Актуальные вопросы интенсификации воспроизводства стада и повышения сохранности приплода: Сб. науч. тр. - Донской с.-х.

институт / Ред.кол.: Степанов В. И. (гл.ред.) и др. - ст. Персиановка (Рост.обл.): Дон.СХИ, 1999.

Амерханов, Х. А. Приоритетно повышение продуктивности, а не рост поголовья / Х. А. Амерханов // Животноводство России. - 2004. С. 2-4.

Амстиславский, С. Я. Методы биотехнологии в практике разведения животных / С. Я. Амстиславский, Л. Ф. Максимовский, М. Т.

Воротников. – Новосибирск: Институт цитологии и генетики, 1991. – Бабайлова, Г. Совершенствование технологии кормления свиней / Г.

Бабайлова // Свиноводство. - 1986. - №3. - С. 19-21.

Баймишев, Х. Б. Морфоадаптационные изменения структур матки телок в зависимости от дозы движения / Х. Б. Баймишев // Современные проблемы животноводства. - Казань, 2000. - С. 197-198.

Базонов, В. Эффективность промышленного производства свинины в России / В. Базонов, И. Базонов // Свиноводство, 2005. - №1. - С.24-25.

Биотехнология сельскохозяйственных животных / Эрнст Л. К., 10.

Прокофьев М. И. - М.: Колос, 1995.

Бутенко, Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и 11.

биотехнологии на их основе / Р. Г. Бутенко. - М.: ФБК-ПРЕСС, 1999.

Бэйрд, Д. Т. Гормональная регуляция размножения у млекопитающих 12.

/ Д. Т. Бэйрд. - М., 1987.- С. 118-144.

13.

размножения животных / К. Д. Валюшкин, Г. Ф. Медведев. - 2-е изд., перераб. и доп. - Мн.: Урожай, 2001. - С. 48-95.

14.

микробиологических процессов / С. Д. Варфоломеев, С. В.

Калюжный. - М.: Высшая школа, 1990.

15.

зоотехнических вузов и факультетов. / Б. П. Волкопялов. - 3-е изд., перераб. – М., 1963 г. - С. 72-179.

Воронцов, Н. Н. Развитие эволюционных идей в биологии. / Н. Н.

16.

Воронцов - М.: Отдел УНЦ ДО МГУ, 1999.

Воспроизводство сельскохозяйственных животных / Ред.кол.: Ю. М.

17.

Бирдин (зам.отв.ред. и др.) // ВАСХНИЛ, Сиб.отд-е, Сиб.н.-и. и проектно-технол. ин-т жив-ва. - Новосибирск, 1990. - Вып.4.

Гегамян, Н. Развитие отрасли свиноводства на промышленной основе 18.

/ Н. Гегамян, А. Стариков, Н. Пономарв // Свиноводство - 2003.- №2.С.9-11.

Гегамян, Н. С. Комплексное решение проблем в отрасли свиноводства 19.

России / Н. С. Гегамян, Л. К. Эрнст // Свиноводство. - №5. - 2003. - С.

Голиков, А. Н. Физиология сельскохозяйственных животных. / А. Н.

20.

Голиков, Г. В. Паршутин - М: Колос, 1980. - 480 с.

Грудев, Д. И. Многоплодие свиней. / Д. И. Грудев - М. :

21.

Россельхозиздат, 1976. - 225 с.

Гудилин, И. Содержание гормонов в крови свиней разных генотипов / 22.

И. Гудилин, Л. Лазарева // Свиноводство.-2008.- №2.- С.27-28.

Гудилин, И. Параметры метаболизма белков в крови свиней разного 23.

генотипа / И. Гудилин, Л. Лазарева // Сибирский вестник сельскохозяйственной науки.- 2008.- №1.- С.81-83.

Дарвин, Ч. Д. Изменение животных и растений в домашнем 24.

состоянии. / Ч. Д. Дарвин - М., 1941.

Десятов, В. Г. Интенсификация мясного скотоводства. / В. Г. Десятов, 25.

Н. И. Мамонтов, В. Н. Алинкин - М.: Росагропромиздат, 1991.

Доброхотов, Г. Н. Свиноводство. / Г. Н. Доброхотов - М.: «Колос», 26.

1974. - С.84-115.

Долматова, А. В. Морфофункциональные особенности яичников 27.

свиноматок с различными генотипами по гену FSHB / А. В.

Долматова, Е. Н. Сковородин // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии, 2009. - №4. - С. 19-20.

28.

свиноматок / А. В. Долматова, Е. Н. Сковородин / Вестник Башкирского ГАУ, 2010. - №1.- С. 29-35.

Дуник, И. М. Проблемы развития животноводства и его научного 29.

обеспечения / И. М. Дуник // Зоотехния. - 1995. - №10. - С. 28-30.

Егорова, В. Н. Новые достижения биотехнологии на службе у 30.

медицины и ветеринарии / В. Н. Егорова // Практик, 2002. - №2. С.48-50.

Завадовский, М. М. Избранные труды / под ред. И. К. Журек;

31.

коммент. Ю. Д.Клинского. - М.: Агропромиздат, 1990.

Завадовский, М. М. Теория и практика гормонального метода 32.

стимуляции многоплодия сельскохозяйственных животных. / М. М.

Завадовский - М.: Сельхозиздат, 1963.- 671 с.

Завертяев, Б. П. Биотехнология в воспроизводстве и селекции 33.

Зиновьева, H. A. Животноводство в XXI веке / Н. А. Зиновьева, Е. А.

34.

Гладырь, Д. А. Фролкин // Сборник научных трудов ВИЖ. - 2001.С.218-224.

Игнатьев Р. Р. Возрастная иммунология сельскохозяйственных 35.

животных / Р. Р. Игнатьевич // Вестник Бурятской государственной сельскохозяйственной академии им. В.Р.Филиппова. - Улан-Удэ, 2002.

Использование физических и биологических факторов в ветеринарии 36.

и животноводстве: Материалы всесоюз. науч. конф. (г.Витебск) / отв.ред. В. П. Шишков. - М.: МВА, 1992.

Кабанов, В. Д. Повышение продуктивности свиней./ В. Д. Кабанов М.: Колос, 1983. - 256 с.

Кабанов, В. Д. Рост и мясные качества свиней. / В. Д. Кабанов - М.:

38.

Колос, 1972. - 192с.

Кабанов, В. Д. Свиноводство. / В. Д. Кабанов - М.: Колос, 2001.

39.

Квасницкий, A. B. Новый метод прогнозирования многоплодия и 40.

крупноплодности свиней. / A. B. Квасницкий, Л. А. Конюхова // Вестник Полтавского государственного СХИ, 2000.- №1. - С. 25-30.

«Концепция - прогноз развития животноводства в России до 41.

года». - МСХ РФ 2002 г. (п.1 и 11).

Красота, В. Ф. Биотехнология в животноводстве. / В. Ф. Красота, Б. П.

42.

Завертяев - М.: Колос, 1994.

Кукушкин, С. А. Нарушение функции воспроизводства у свиней / С.

43.

А. Кукушкин, А. М. Рахманов // Ветеринарный консультант.- 2003.С.3-4.

Кукушкин, С. А. Болезни репродуктивной сферы свиней / С. А.

44.

Кукушкин, В. М. Ковалишин // Животновод.- 2003.- №3. - С.22-23.

Кюбар, Х. В. Морфометрическая характеристика гистоструктуры 45.

состояниях: автореф. дис. …д-ра. вет. наук / Х.В. Кюбар. – М., 1983. с.

Ладан, П. Е., Мысик А.Т. Породы свиней / П. Е. Ладан, А. Т. Мысик. ВАСХНИЛ. - М., 1981.

Лазарева, Л. В. Система гормонального мониторинга у животных / Л.

47.

В. Лазарева // Фундаментальные исследования, 2006. - №8. - С.32.

Левин, К. Л. Физиология и патология воспроизводства свиней. / К. Л.

48.

Левин - М.: Росагропромиздат, 1990. - 225 с.

Лумбунов, С. Г. Продуктивность и резистентность молочного скота 49.

Бурятии. / С. Г. Лумбунов - Улан-Удэ: БГСХА,2001. - 147 с.

Лысов, В. Ф. Гормональный статус сельскохозяйственных животных.

50.

/ В. Ф. Лысов - Казань: КВИ, 1982.

51.

сельскохозяйственных животных: учеб. пособие для с.-х. вузов в 2 ч. / П. В. Макрушин, В. М. Лазарев. - Сарат. с.-х. ин-т им. Н.И.Вавилова. Саратов: ССХИ, 1990.

Мамонтов, Н. Динамика живой массы и напряженности роста 52.

подсвинков / Н. Мамонтов // Свиноводство, 2004. - №4. - С. 10-11.

Муруев, А. В. Перспективы использования биотехнологического 53.

инфекционных заболеваний / А. В. Муруев // Сб. науч. трудов Оренбургского отделения Всероссийского научного общества анатомов, гистологов и эмбриологов. Академия ветеринарной медицины. Морфология и хирургия в практической ветеринарии и медицине. - Оренбург, 1999 - С. 20-26.

Муруев, А. В. Биотехнология в животноводстве и ветеринарии / А. В.

54.

Муруев, Ю. К. Хоженоев // Тезисы докл. к конф. «По вопросам зооинженерного факультета». - Казань, 2000 - С. 56-59.

Муруев, А. В. «Стимуляция гипоталамо-гипофизарной системы телят 55.

на ранней стадии их постнатального онтогенеза» / А. В. Муруев, Ж. Н.

Жапов // Сб. науч. трудов Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы инфекционной патологии и иммунологии», ГНУ «ВИЭВ им. Я.Р. Коваленко». - М., 2006.

Мустафин, Р. Х. Морфология яичников при их дисфункциях / Р. Х.

56.

Мустафин, E. H. Сковородин // Морфология, 2008. - № 4. - С. 84.

Мягкова, М. А. Выявление естественных антител против вазопрессина 57.

при системной красной волчанке иммуноферментным методом / М. А.

Мягкова, С. О. Багурин, А. А. Савицкий // Клиническая лабораторная диагностика. - 1999. - №4. - С. 3-6.

Мысик, А. Т. Развитие отрасли свиноводства в странах мира / А. Т.

58.

Мысик // Свиноферма. - 2006. - №5. - С.34-37.

Мысик, А. Т. Современные тенденции развития животноводства в 59.

странах мира / А. Т. Мысик // Зоотехния. - 2010. - №2. - С.2-8.

Негреева, А. Н. Развитие половых органов у свинок / А. Н. Негреева, 60.

Ш. С. Бабушкин, В. А Аскеров // Зоотехния. - 2009. - №9. - С.29.

Нежданов, А. Г. Ветеринарный контроль за воспроизводством 61.

крупного рогатого скота и свиней / А. Г. Нежданов, В. Д. Михайлов, A. M. Вислогузов // Ветеринария. - 2003. - №12. - С. 3-8.

Нежданов, А. Г. Гормональный контроль воспроизводительной 62.

функции свиней / А.Г. Нежданов, В.Н. Коцарев // Ветеринария. - 2009.

Нежданов, А. Г.Современное представление о половом цикле самок 63.

животных // Ветеринария. -2003. - №11. - С.32-36.

Никитин, В. Я. Функциональная связь между яичникам и слизистой 64.

оболочкой матки коров / В.Я. Никитин, Э.Н. Григ // Диагностика, лечение и профилактика заболеваний с.-х. животных. - Ставрополь:

Ставропольский СХИ, 1975. - С.25-34.

Никульников, В. С. Биотехнология продукции животноводства / В. С.

65.

Никульников, В. К. Кретинин. - М.: Колос, 2007. - 544 с.

Овсянников, А. И. Породы свиней в СССР / А. И. Овсянников ВАСХНИЛ. - М., 1970.

67.

биотехнологии» / И. В.Тихонов, Е. С.Воронин, С. В.Ковалев и др. М.: МГАВМиБ им. К.И.Скрябина, 2000.

Особенности гипофизарно-гонадных взаимоотношений у крупного 68.

рогатого скота в онтогенезе / Степанов Г. С., Дмитриев В. Б., Дяконов Е. Ф. и др. // Гормоны в животноводстве. - М.: Колос, 1997. - С. 58-66.

Павлов, В. А. Физиология воспроизводства крупного рогатого скота. / 69.

В. А. Павлов - М.: Россельхозиздат, 1984. - 208с.

Плохинский, H.A. Алгоритмы биометрии. / Н. А. Плохинский - М.:

70.

Понкратов, В. Биотехнологический метод контроля наступления 71.

опоросов / В. Понкратов // Ветеринария с.-х.животных. - 2009. - №3. С. 36-37.

Пономарв, Н. П. Влияние подсосного периода на свиноматок / Н. П.

72.

Пономарев // Свиноводство.-2001. -№1. - С.24-25.

Почерняев, Ф.К. Селекция и продуктивность свиней. / Ф. К.

73.

Почерняев - М.: Колос, 1979. - 223с.

Развитие биотехнологии на современном этапе жизнеобеспечения 74.

общества / И. Л. Беро // Ветеринарный врач, 2010. - №3. - С.3-5.

Регуляция физиологических функций продуктивных животных:

75.

межвуз.сб.науч.тр. / под ред. А. Д. Белова. – М.: МВА им.

К.И.Скрябина, 1993.

Рыбчин, В. Н. Основы генетической инженерии. / В. Н. Рыбчин. СПб.: СпбГТУ, 1999.

Савченко, О. Н. Гормональная регуляция функции половых желез / О.

77.

Н. Савченко, Г. С. Степанов // Гормоны в животноводстве. - М., 1997.

Самуйленко, А. Я. Задачи биотехнологии в реализации Доктрины 78.

Ветеринария и кормление. - 2011. - №2. - С.22-24.

Сахарова, Е. Д. Биотехнология. Вопросы, проблемы, перспективы / Е.

79.

Д. Сахарова // Практик, 2002. - №2. - С.44-47.

Сеин, О. Б. Половая цикличность, морфолого-биохимические 80.

особенности становления половой функции у свиней / О. Б. Сеин, В.

Е. Косарев // Сельскохозяйственная биология. - 1988. - №1. - С.88-92.

Сеин, О. Б. Становление генеративной функции у свиней / О. Б. Сеин 81.

// Зоотехния. - 1994. - №5. - С.27-29.

Сельскохозяйственная биотехнология: сб. работ / под ред. В. С.

82.

Шевелухи. - М.: Воскресенье, 2000. - Т.1.

Сельскохозяйственная биотехнология: сб. работ / под ред. В. С.

83.

Шевелухи. - М.: Воскресенье, 2000. - Т.2.

Сиразиев, Р. З. Морфофункциональные изменения в матке свиней при 84.

...докт.биол.наук / Сиразиев Рамазан Закарьянович - Улан-Удэ, 1999. с.

Спирин, С. Биотехнология - фундамент ветеринарной медицины 85.

третьего тысячелетия / С. Спирин // Ветеринарная клиника. - 2008. С.20.

Стрекозов, Н. И. Пути интенсификации производства говядины / Н. И.

86.

Стрекозов // Зоотехния. - 2003. - №1. - С.2-6.

Стрекозов, Н. И. Молочное скотоводство России: настоящее и 87.

будущее / Н. И. Стрекозов // Зоотехния. - 2008. - №1. - С.18-21.

Студенцов, А. П. Ветеринарное акушерство и гинекология. / А. П.

88.

Студенцов - М.: Сельхозиздат, 2000.

Тельцов, Л. П. Механизмы и закономерности индивидуального 89.

развития / Л. П. Тельцов, В. А. Здоровинин, И. Р. Шашанов, В. Н.

Родин / Достижения зоотехнической науки и практики - основа развития производства продукции животноводства. - Волгоград, 2005.

Тельцов, Л. П. Периодизация развития крупного рогатого скота в 90.

онтогенезе / Л. П. Тельцов // Сельскохозяйственная биология. - М., 91.

пищеварительной системы в онтогенезе / Л. П. Тельцов // 3-я междунар. конф. Актуальные проблемы биологии в животноводстве.

Докл. ВНИИФБ и П с/х ж-х. - Боровск, 2000. - С. 220-222.

Тельцов, Л. П. Этапность развития органов человека и животных и 92.

наследственность в онтогенезе / Л. П. Тельцов // Матер. междунар.

конф. «Естествознание на рубеже столетий». - М.: Дагомыс, 2001. Т.2. - С. 135-140.

Тельцов, Л. П. Выращивание животных в онтогенезе для получения 93.

наивысшей генетической продуктивности / Л. П. Тельцов // Соврем.

пробл. и достижения аграрной науки в животн. и растениеводстве: сб.

статей. - Барнаул, 2003. - № 4. - С. 206-211.

Тельцов, Л. П. Концепция выращивания животных и увеличения 94.

продукции животноводства в 2-3 раза / Л. П. Тельцов // Современные наукоемкие технологии. - М., 2004. - № 2. - С. 27-32.

Тельцов, Л. П. Механизмы и закономерности индивидуального 95.

развития крупного рогатого скота / Л. П. Тельцов // Животновьдни науки. Болгария - София, 2004. - Т.41. - № 6. - С. 56-59.

Тельцов, Л. П. О выращивании высокопродуктивного крупного 96.

рогатого скота / Л. П. Тельцов // Вестник Российской академии сельскохоз. наук. - М., 2005. - С. 82-84.

Тельцов, Л. П. Выращивание животных в онтогенезе для получения 97.

наивысшей генетической продуктивности / Л. П. Тельцов, Т. А.

Романова, Н. А. Кудаков // Естественно-науч. исслед.: теория, методы, практика. - Саранск, 2003. - Вып.3. - С. 212-217.

Турков, В. Г. Динамика лютропина под влиянием сурфагона / В. Г.

98.

Турков // Матер.Всерос.науч. и учеб.-метод.конф. по акушерству, гинекологии и биотехнологии размножения животных. - Воронеж, 99.

воспроизводства крупного рогатого скота с использованием гонадолиберина и простагландина F2 : автореф. дис. … док.вет.наук. / Турков Владимир Георгиевич - Воронеж, 1996. - 36с.

100. Тутов, И. К. Основы биотехнологии ветеринарных препаратов. / И. К.

Тутов, В. И. Ситьков - Ставрополь, 1997.

101. Хватов, Б. П. О строении и функциональных изменениях яичников домашних млекопитающих и человека / Б. П. Хватов // Тр. 1-го Крымского мед. ин-та. - Симферополь, 1970. - Т. 44. - Вып. 3. - С. 55Хонина, Г. В. Морфология и гистохимия яичников крупного рогатого скота в онтогенезе: автореф.дис. … канд. вет. наук. / Хонина Галина Васильевна - Омск, 1984. - 18 с.

103. Хоженоев, Ю. К. Экзогенная гормональная стимуляция коровреципиентов для повышения приживляемости эмбрионов / Ю. К.

Хоженоев, А. В. Муруев // Проблемы нейрогуморальной регуляции физиологических функций висцеральных систем. - Омск: ИВМ ОмГАУ, 2000. - С. 97-98.

104. Черемисинов, А. Г. Структурно-функциональные особенности яичников животных в норме и патологии / А. Г. Черемисинов // Диагностика, патогенез, патоморфология и профилактика болезней с.х. животных. - Воронеж, 1993. - С.96.

105. Черемисинов, А. Г. Морфофункциональные изменения в яичниках животных под влиянием отечественных простагландинов / А. Г.

профилактика болезней с.-х. животных. - Воронеж, 1993. - С. 120-121.

106. Черемисинов, Т. А. Совершенствование биотехнологии интенсивного воспроизводства животных / Т. А. Черемисинов. - Институт орган.

химии. - Уфа, 1992. - 275с.

107. Шейко, И. П. Свиноводство. / И. П. Шейко, В. С. Смирнов - Минск:

Новое Знание, 2005.

108. Шипилов, В. С. Ветеринарное акушерство и гинекология. / В. С.

Шипилов - М.: Агропромиздат, 1986. - 480с.

109. Шипилов, В. С. Основы повышения плодовитости животных. / В. С.

Шипилов - Смоленск: "Веlо", 1994. - 159с.

110. Щелкунов, С. Н. Генетическая инженерия. / С. Н. Щелкунов. Новосибирск: Новосибирский университет, 1994. - ч.1.

111. Эрнст, JI. K. Биологические проблемы животноводства в XXI веке. / Л. К. Эрнст, Н. А. Зиновьева - М.: РАСХН, 2008. - 508 с.

112. Юров, И. И. Биотехнический контроль за воспроизводством крупного рогатого скота с использованием магэстрофана, супергестрана и ГСЖК: автореф. дис. … канд. вет. наук / Юров Иван Иванович. Воронеж.гос.аграр.ун-т. им. К.Д.Глинки, 2001. - 22с.

113. Adeyemo, O. Control of in bos indicus and bos Taurus heifers with prostaglandin F2L / O. Adeyemo, U. U. Akpokodje P. I. Odili // Theriogenology. - 1997. - 12. -№ 5. - P.255-260.

114. Baird, D. T. Prostaglandin F2 on Luteai regression in the ewe a comparison with 6 ryloxyprostaglandin / D. T. Baird, R. J. Scaramuzzi // Ann.boil.anim.Biochem.biophys. -1975. - 15, № 2. - P.161-174.

115. Blake, C. A. A medical basal hypothalamis site of syhezgistic action of estzogen and progesterone on inhibition of pituitary luteinising hormone release / C. A. Blake // Endocrinology. - 1977. - 101. - P. 1130-1134.

116. Cheminean, P. Neuroensocrinologie de la reprodaction chez les caprins / P.

Cheminean,J. A. Delgadillo // Prod.anim. - 1994. - № 5. - P.315-326.

117. Crighton, D. B. Localization of LH-releasing factor in the hypothalamus and neurohypohysis as determined by an vitro method / D. B. Crighton, H.

Scheider, S. M. McCann // Endocrinology. - 1970. - 87. - P.323-324.

118. Downey, B. Regulation of the oestrus cycle in domestic animals: a review.

/ B. Downey // Canad.Veter.J. - 1980. - 21, JVal 1. - P.301-305.

119. Ellendorff, F. Neural control of cyclic reproductive function in the mammal: a review / F. Ellendorff, D. Smidt // J. of interdis cinlinary cycle research (Amsterdam). - 1970. - 1, JfeS. - P.201-208.

120. Everett, J. W. The quantitative relationship between electrochemical preoptic stimulation and LH release in proestrus versus latediestrous rats / J. W. Everett, J. C. Krey, L. Tyrey // Endocrinology. - 1973. - 93. - P.947Ford, S. Bovine ovarian and pituitary responses to PMS and Gn RH administered during metestrus / S. Ford, F. Stosmshak // K. Anim. Sci. P.1701-1706.

122. Fox, D. I. The crossbreeding of beef cattle / D. I. Fox // Canad, Cattleman.

123. Gallo, R. V. The effect of blockade of dopamine receptors on the inhibition of episodic luteinizing hormone release during electrical stimulation of the arcuate nuclease in ovariestomized rats / R. V. Gallo // Endocrinology. P.1026-1035.

124. Gumming, J. A. Prostaglandins a world spelling revolution animal breeding / J. A. Gumming, R. A. S. Lawsoh // J.Agr. (Victoria). - 1973. - 71 JSfelO.

- P.348-352.

125. Guthrie, H. D. Progesterone secretion and prostaglandin F release in vitro by endometrial and luteal tissue of cyclic pigs / H. D. Guthrie, Jr. C. E Rexoad // J.Reprod. Fert. - 1980. - 60. - № l. - P.157-163.

126. Hobson, W. C. Plasms LH bevels after ovariectomy corpus luteum removal and estradiol administration in cattle / W. C. Hobson, W. Hansel // Endocrinology. - 1972. - 91. - P.185-190.

127. Hoffman, B. Luteotrophic factors in the cow: evidence for LH rather that prolactin / B. Hoffman, D. Schams D., R.Bopp // J.Reprod.Fert. - 1974. JVbl. - P.77-85.

128. Hofliger, H. Das ovar des Rindes in den verschiedenen lebensperioden unter besonderer Berucksichtigung seiner funktionellen Feinstruktur / H.

Hofliger // Verl.S.Karder. - Basel, 1988. - P. 129. Holler, W. Die ovulafion beim Rind - klinische and laboratorium sdiagnesen Maglich-Keiten der Einflussnahme / W. Holler // Wein. Tierarzte.

Mschr. - 1982. - 69, № 9. - P.245-250.

130. Immunological methods in steroid determinationans / B. V. Caldwel, R. J.

Scaramuzzi, J. H. Fhorneycroff, S. A. Tillson. - New York: AppletonCentury-Crofts, 1996. - P.331.

131. Janina, H. Extraction and partial Purification of tuteolytic Activity from Bovine Endometrical Tissue /H. Janina, J. Lukaszewska, W Hansell // Endocrinology. - 1970 - 86, № l. - P.261-270.

132. Kaltenbach, C. C. Release of FSH and KH in beef heifers by synthetic gonadotropin releasing hormane / C. C. Kaltenbach, T. G. Dunn, I. E. Kiser // J.Anim. Sci. - 1974. - 38, № 2. - P.357-362.

133. Khurana, N. Note on the use of prostaglandin F21 for mduction of oestrus in buffalo heifers / N. Khurana, R. Gupta // Indian J.Anim. Sci. - 1982. -52, № 9. - P.806-808.

134. Lindell, J. O. Post-partum release of prostaglandin F2 alpha and uterine involution in the cow / J. O. Lindell // Theriogenology. - 1982. - 17, JVb3. P.337-245.

135. Lovis, T. M. Intrauterine administration of prostaglandin F2 alpha in cow:

progesterone, estrogen, LH, estrous and ovulation / T. M. Lovis, H. D.

Hafs, D. A. Morrow // J.Anim.Sci. - 1974. - 38, № 2. - P.347-353.

136. Lzzymowski, T. Luteal Function in cows after inlateral infusion of PGF alpha in to the arterior uterine cycle / T. Lzzymowski, J. O. Kotwica, S.

Krasa // J.Reprod. Fert. - 1980. - 54. - P.21-27.

137. Martini, L. Gonadotropin releasing factors: recent physiological findings. / L. Martini, Ed. P. G. Crosingnani, V. N. T. James // Recent progress in reproductive endocrinology - London, New York, 1974. - P.295-321.

138. Menget, H. Die Anwendung biotechnischer Ver-fahren in der Schafzucht der DDR. / H. Die Menget // Tierzucht. - 1986. - 40, № 3. - P.136-138.

139. Milval, R. A. Concurrent atesine venous and ovarian arterial prostaglandin F2 alpha concentrations in heifers treated with oxytocin. / R. A. Milval, W.

Hansell // J.Retrod. Pert. - 1980. - 60. - P.7-15.

140. Nett, T. M. Luteal blood flood flow and Receptors for LH during PG F alpha - induced luteolysis: production of PGE 2 and alpha during Early Pregnancy / T. M. Nett, G. D. Niswerider // Ata ver. Scand. - 1981. - 77. P.117-130.

141. Pichova, M. D. Endokrinni profil po aplikaci prostaglandinu a jeho anabogu / M. D. Pichova, J. Picha, B. Sevcik // Biol.chem.Ver. - 1981. - (23), № 2. - P.157-169.

142. Reimers, N. F. Nature management Glossary. / N. F. Reimers - M “Mysl”, 143. Sevcik, B. Terapeuticke vynziti pripravku ostrophan inj. (cloprostenoe) pri anestru a endometritive krav / B. Sevcik, J. Krae, J. Strakova // Biol.Chem.Livocisne vyroby Veter. - 1982. - 18, JST4. - P.349-355.

144. Scott, F., Gilbert F. Developmetal biology / F. Scott, F. Gilbert. - Sinauer Associates Inc. Publishers. - Sunderland, Massachusetts, 2000.

145. Shemesh, M. Levels of prostaglandin F in bovine endometrium, uterine, veous, ovarian and jngular plasma during the estrous cycle / M. Shemesh, W. Hansel // Proc. Soc. Exp.Biol. Med. - 1975. -148, JVb 1 - P. 123-126.

146. Singh, G. B. Treatment of suboestrous buffaloes with prostaglandin F alpha / G. B. Singh, V. G. Dugwekar, R. D. Sharma // Veter. Res. - 1979. P.412-413.

147. Singh, R. A. Hormonal induction of ovulation in prepubertal ewe lamds / R. A. Singh, M. N. Razdan, M. L. Madan // Indian Vet. J. - 1987. - 64, № 4. - P.350-352.

148. Swanson, L. V. LH and prolactin in blood serum from estrum to ovulation in Holstein heifers / L. V. Swanson, H. D. Hafs // J.Anim.Sci. - 1971. -33. P.1038-1041.

149. Terday, J. S., Jefcost C.R., First N.L. Effect of prostaglandin F2 alpha on steroidogonesis by porcine corpora lutea / J. S. Terday, C. R. Jefcost, N. L.

First // J.Reprod.Fert. - 1980. - 58. - P.301-310.

150. Terdlanche, H. M. Plasma progesterone in cattle. II. Levels during the oestrous cycle, pregnancy and parturition / H. M. Terdlanche, J. M.

Labuschagne // J. South African Veterinary Association. - 1981. - 52, JVb3. - P.187-189.

151. Weir, B. J. Ovulation and atresia / B.J. Weir, W. Rowlands // The ovary. N.-Y., 1977. - P.265-284.

ПРИЛОЖЕНИЯ

к диссертационной работе по теме «Биотехнологические способы интенсификации свиноводства»