WWW.DISS.SELUK.RU

БЕСПЛАТНАЯ ЭЛЕКТРОННАЯ БИБЛИОТЕКА
(Авторефераты, диссертации, методички, учебные программы, монографии)

 

Pages:     || 2 |

«ИММУНОТОКСИКОЛОГИЯ КСЕНОБИОТИКОВ Монография Саратов 2007 УДК 612.014.46:616–092:612.017.1]–008.64–008.9–085.246.9.(024) ББК 52.84+52.54+52.8 я 43 З–127 Забродский П.Ф., Мандыч В.Г. Иммунотоксикология ксенобиотиков: ...»

-- [ Страница 1 ] --

П. Ф. ЗАБРОДСКИЙ, В. Г. МАНДЫЧ

ИММУНОТОКСИКОЛОГИЯ

КСЕНОБИОТИКОВ

Монография

Саратов

2007

УДК 612.014.46:616–092:612.017.1]–008.64–008.9–085.246.9.(024)

ББК 52.84+52.54+52.8 я 43

З–127

Забродский П.Ф., Мандыч В.Г.

Иммунотоксикология ксенобиотиков: Монография. – СВИБХБ,

2007.- 420 с.

ISBN 978–5 –91272-254-7

Монография посвящена рассмотрению токсических и иммунотоксических свойств ксенобиотиков, в частности токсичных химикатов (боевых отравляющих веществ), ядовитых технических жидкостей, фосфорорганических соединений, атропиноподобных препаратов, нитрилов, диоксинов и металлов. В монографии представлены данные литературы и собственных исследований о механизмах действия токсикантов и фармакологических препаратов на систему иммунитета, а также способах коррекции постинтоксикационных нарушений иммунного гомеостаза.

Монография адресована токсикологам, биологам, экологам, химикам, фармакологам, иммунологам, физиологам и терапевтам.

Табл. 110. Ил. 40. Библиогр. 935 названий.

Рецензенты:

доктор медицинских наук, профессор Бородавко В.К.;

доктор медицинских наук, профессор Сидорин Г.И.

© П.Ф. Забродский, В.Г. Мандыч, © СВИБХБ, ISBN 978–5 –91272-254-

ОГЛАВЛЕНИЕ

Список сокращений ………………………………………………. Предисловие ………………………………………………………. Глава 1. Основные положения иммунологии и иммуно токсикологии …………………………………………... 1.1. Доиммунные биологические механизмы резистентности... 1.1.1. Рецепторы распознавания «чужого» …………………... 1.1.2. Система комплемента …………………………………... 1.1.3. Белки острой фазы ……………………………………….. 1.1.4. Лизоцим ………………………………………………….. 1.1.5. Тромбоцитарный катионный белок ……………………. 1.1.6. Фагоцитоз ………………………………………………... 1.2. Иммунитет …………………………………………………... 1.2.1. Индукция иммунного ответа …………………………… 1.2.2. Т-клеточные иммунные реакции ………………………. 1.2.3. Гуморальный иммунный ответ ………………………… 1.2.4. Естественные клетки-киллеры …………………………. 1.2.5. Цитокины ………………………………………………...

Глава 2. Экспериментальные методы оценки доиммунных механизмов резистентности организма и иммунного статуса ……………………………………………. 2.1. Методы оценки доиммунных механизмов резистентности организма ………………………………………………... 2.2. Оценка функции стволовых кроветворных клеток ……….. 2.3. Определение лимфоидного индекса тимуса и селезенки … 2.4. Оценка содержания лимфоцитов в органах системы иммунитета ………………………………………………….. 2.5. Исследование индукции макрофагами гуморального иммунного ответа …………………………………………… 2.6. Изучение кооперации Т- и В- лимфоцитов ………………. 2.7. Оценка гуморальных иммунных реакций …………………. 2.8. Оценка клеточных иммунных реакций ……………………. 2.9. Оценка активности ацетилхолинэстеразы в Т-клетках …... 2.10. Определение показателей ПОЛ, концентрации кортикостерона и катехоламинов в крови ……………………… Глава 3. Общая характеристика иммунотоксических эффектов ксенобиотиков …………………………….. 3.1. Основные механизмы иммунотоксичности ……………….. 3.2. Общая характеристика нарушения иммунного гомеостаза под влиянием токсикантов ………………………………. 3.3. Иммуносупрессивные свойства фармакологических препаратов …………………………………………………… Глава 4. Иммунотоксичность фосфорорганических пестицидов и антихолинэстеразных токсичных химиикатов …………………………………………………….. 4.1. Общая характеристика фосфорорганических соединений... 4.2. Основные токсикометрические характеристики антихолинэстеразных токсикантов и холиномиметиков ………… 4.3. Влияние ФОС и антихолинэстеразных токсичных химикатов на доиммунные механизмы защиты от инфекции и систему иммунитета ……………………………………… 4.4. Роль симпатико-адреналовой системы в супрессии иммунных реакций при отравлении ФОС ……………………. 4.5. Специфические и неспецифические механизмы редукции иммунных реакций при интоксикации ФОС ……………… 4.6. Нарушение иммунного статуса у людей после отравления ФОИ ………………………………………………………….. 4.7. Медикаментозная коррекция нарушений иммунного ответа при острой интоксикации токсичными химикатами …... Глава 5. Иммунотропная активность атропиноподобных препаратов ……………………………………………... 5.1. Общая характеристика атропиноподобных препаратов 5.2. Влияние атропиноподобных препаратов на систему иммунитета ………………………………………………….. 5.3. Медикаментозная коррекция нарушений иммунного ответа при острой интоксикации атропиноподобными препаратами …………………………………………………. Глава 6. Влияние на иммунную систему токсичных химиикатов кожно-нарывного действия ………………….. 6.1. Токсикологическая характеристика и иммунотоксические свойства люизита и продуктов его деструкции …………… 6.2. Токсикологическая характеристика и иммунотоксические свойства сернистого иприта ………………………………... 6.3. Фармакологическая коррекция нарушений иммунного ответа при острой интоксикации сернистым ипритом и люизитом …………………………………………………….. Глава 7. Иммунотоксикология ядовитых технических жидкостей ………………………………………………. 7.1. Общая характеристика отравлений ядовитыми техническими жидкостями …………………………………. 7.2. Метанол ……………………………………………………… 7.2.1. Токсикология метанола. Иммунотоксикологическая характеристика ………………………………………….. 7.2.2. Медикаментозная коррекция нарушений иммунного ответа при острой интоксикации метанолом …………. 7.3. Этиленгликоль ………………………………………………. 7.3.1. Токсикологическия и иммунотоксикологическая характеристика этиленгликоля ………………………… 7.3.2. Фармакологическая коррекция нарушений иммунного ответа при острой интоксикации этиленгликолем …… 7.4. Этанол ………………………………………………………... 7.4.1. Токсикология этанола. Иммунотоксические свойства … 7.4.2. Фармакологическая коррекция нарушений иммунного ответа при острой интоксикации этанолом …………… 7.5. 1,2- дихлорэтан ……………………………………………… 7.5.1. Токсикологическая и иммунотоксикологическая характеристика 1,2-дихлорэтана ………………………….. 7.5.2. Влияние на иммунные реакции сочетанного действия 1,2- дихлорэтана с механической травмой ……………. 7.5.3. Фармакологическая коррекция нарушений иммунного ответа при острой интоксикации 1,2-дихлорэтаном в сочетании с механической травмой ……………..…… 7.6. Тетрахлорметан ……………………………………………... 7.6.1. Токсикологическая характеристика и иммунотоксические свойства тетрахлорметана ……………………… 7.6.2. Фармакологическая коррекция нарушений иммунного гомеостаза при острой интоксикации тетрахлорметаном ……………………………………………………….. 7.7. Трихлорэтилен ………………………………………………. 7.7.1. Токсикологические и иммунотоксические свойства трихлорэтилена ………………………………………….. 7.7.2. Коррекция нарушений иммунного гомеостаза при острой интоксикации трихлорэтиленом ………………. Глава 8. Токсикологическая и иммунотоксикологическая характеристика нитрилов …………………………… 8.1. Общая характеристика химических веществ общеядовитого действия ………………………………………………... 8.2. Токсикология нитрилов. Иммунотоксичность ……………. 8.2.1. Влияние на иммунные реакции сочетанного действия нитрилов с механической травмой …………………….. Глава 9. Токсикологические и иммунотропные свойства металлов ……………………………………………….. 9.1. Алюминий …………………………………………………… 9.2. Бериллий …………………………………………………….. 9.3. Ванадий ……………………………………………………… 9.4. Вольфрам …………………………………………………….. 9.5. Железо ……………………………………………………….. 9.6. Золото ………………………………………………………... 9.7. Кадмий ……………………………………………………….. 9.8. Кобальт ………………………………………………………. 9.9. Магний ……………………………………………………….. 9.10. Марганец …………………………………………………… 9.11. Медь ………………………………………………………… 9.12. Мышьяк …………………………………………………….. 9.13. Никель ……………………………………………………… 9.14. Олово ……………………………………………………….. 9.15. Ртуть ………………………………………………………... 9.16. Свинец ……………………………………………………… 9.17. Селен ………………………………………………………... 9.18. Хром ………………………………………………………… 9.19. Цинк ………………………………………………………… Глава 10. Иммунотропные свойства токсикантов, действующих на Р-450-зависимые монооксигеназы …... 10.1. Связь иммунотропных эффектов токсикантов с функцией Р-450-зависимых монооксигеназ …………………………. 10.2. Иммунотропные свойства диоксинов ……………………. Глава 11. Особенности нарушения функции Th1- и Th2лимфоцитов при остром отравлении различными токсичными веществами …………………………… Глава 12. Характеристика иммуностимуляторов. Коррекция нарушений иммунного гомеостаза при остром отравлении ксенобиотиками ……………………….. 12.1. Классификация иммуностимуляторов. Общая характеристика ………………………………………………………… 12.2. Гормоны тимуса и их синтетические аналоги …………… 12.3. Миелопид …………………………………………………... 12.4. Имунофан …………………………………………………... 12.5. Полиоксидоний …………………………………………….. Заключение ………………………………………………………... Литература ……………………………………………………........

СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ



АКТГ – адрено-кортикотропный гормон АЗКЦ – антителозависимая клеточная цитотоксичность АОК – антителообразующие клетки АОС – антиоксидантная система БОВ – боевые отравляющие вещества БОФ – белки острой фазы ГГНС – гипоталамо-гипофизарно-надпочечниковая система ГЗТ – гиперчувствительность замедленного типа ДДВФ – диметилдихлорвинилфосфат ДНК – дезоксирибонуклеиновая кислота ДХЭ – 1,2-дихлорэтан ЕКК – естественные клетки-киллеры ЕЦ – естественная цитотоксичность ИАН – индекс активности нейтрофилов ИКК – иммунокомпетентные клетки ИЛ-1 (2 и т.д.) – интерлейкин-1 (2 и т.д.) К-клетки – клетки-киллеры (лимфоциты, определяющие АЗКЦ) КОЕс – колониеобразующая единица селезенки КонА – конканавалин А КС – кортикостерон (кортикостероиды) ЛД50 – средняя смертельная доза, вызывающая смертельный исход у 50% отравленных ММС – моноцитарно-макрофагальная система НА – норадреналин НАК – нитрил акриловой кислоты НРО – неспецифическая резистентность организма ПОЛ – перекисное окисление липидов П-СКК – примитивная стволовая кроветворная клетка ПЯЛ – полиморфноядерные лейкоциты РНК – рибонуклеиновая кислота СКК – стволовая кроветворная клетка СМ – соединения мышьяка СМО – система цитохром Р-450-зависимых монооксигеназ ТХ – токсичные химикаты ТХВ – токсичные химические вещества ТХМ – тетрахлорметан ТХЭ – трихлорэтилен Тh1 (2,3) – Т-лимфоциты- хелперы типа 1(2,3) ФГА – фитогемагглютинин ФМАН – фагоцитарно-метаболическая активность нейтрофилов ФОВ – фосфорорганические вещества ФОИ – фосфорорганические инсектициды ФОС – фосфорорганические соединения ЦНС – центральная нервная система ЭГ – этиленгликоль ЭБ – эритроциты барана Ig – иммуноглобулин LD50 – средняя смертельная доза, вызывающая смертельный исход у 50% отравленных Vi – антиген (Vi-Ag) – тимуснезависимый брюшнотифозной Vi-антиген VX – антихолинэстеразный токсичный химикат типа Vx (российский VX)

ПРЕДИСЛОВИЕ

В результате бурного развития иммунологии в течение последней четверти прошлого столетия возникла и получила свое развитие определенная система взглядов на механизмы взаимодействия многоклеточного организма с живыми телами и веществами, несущими на себе признаки генетической чужеродности, основанная на представлении об иммунной системе как о многокомпонентной системе, ответственной за поддержание генетической однородности организма. Однако в настоящее время понятие «иммунитет»

претерпело принципиальные изменения. Под иммунитетом понимают особое биологическое свойство многоклеточных организмов, предназначенное для защиты от инфекций и других внешних патогенов, способных при попадании в организм вступать в прочные связи с клетками и/или межклеточным веществом. При этом происходит распознание множества разнообразных молекул (антигенов) с последующей деструкцией поврежденных тканей и их элиминацией из организма [Хаитов Р.М. и соавт., 2002]. В настоящее время идет процесс проникновения иммунологических идей и методов исследования в смежные области науки, что приводит к пересмотру и уточнению существующих представлений о механизмах многих процессов в организме человека и животных в норме и патологии.

Этот процесс можно рассматривать как один из прикладных аспектов современной иммунологии.

В последние 40 лет сформировалось новое научное направление, занимающееся изучением влияния ксенобиотиков на неспецифическую резистентность организма и систему иммунитета – иммунотоксикология. В рамках этого перспективного направления выделяют такие разделы, как общая, специальная, промышленная и экологическая иммунотоксикология. В целом дифференциация данного направления соответствует основным разделам токсикологии.

Предметом иммунотоксикологии является изучение влияния на иммунный гомеостаз ксенобиотиков: токсичных химических веществ (ТХВ), фармакологических средств и биологических агентов [Descotes J., 1986]. При этом повреждение системы иммунитета может быть как результатом прямого, так и непрямого действия ксенобиотиков и/или их метаболитов. Кроме того, на ксенобиотики (или их метаболиты) может развиваться иммунная реакция с образованием антител.

Следует отметить и возможность модификации токсичных соединений, в результате чего они приобретают свойства антигена.

Возможно также образование антител к комплексу токсикант – антиген.

Изучение влияния ксенобиотиков на иммунный гомеостаз является одной из наиболее актуальных проблем токсикологии. Это обусловлено, во-первых, колоссальным загрязнением окружающей среды различными соединениями, извращающими иммунные реакции и вызывающими связанные с нарушением иммунного статуса различные заболевания; во-вторых, с необходимостью коррекции нарушений иммунного гомеостаза как в случае хронических интоксикаций, так и при отравлениях, авариях на химических предприятиях, несчастных случаях на производстве, в быту, при уничтожении, хранении и транспортировке запасов токсичных химикатов – ТХ (боевых отравляющих веществ); в-третьих, до сих пор может возникать необходимость иммунокоррекции пораженных при применении отравляющих веществ с террористическими и военными целями.

В настоящее время в Российской Федерации токсичные химикаты иприт, люизит, российский VX, зарин и зоман подлежат уничтожению промышленных объектах. Не исключена возможность аварий на данных объектах, а также массовые поражения людей при транспортировке и хранении ТХ. Позитивные шаги международного сообщества, в том числе и России, в области ликвидации и полного запрета химического оружия (ХО) не уменьшили реальность его использования в террористических и криминальных целях [Петров А.П., Софронов Г.А., 2004]. В настоящее время за рубежом активно высокоэффективных антидотных средств при поражении ими, исследуются биомаркеры для дифференциальной диагностики между поражением кожи ипритом или люизитом, изучаются особенности поражения структур головного мозга фосфорорганическими отравляющими веществами (ФОВ) и их отдаленные эффекты [Забродский П.Ф., Мандыч В.Г., 2006; Arroyo C.M. et al., 2004, Bide R.W. et al.,, 2005; Amitai G. et al., 2006].

Зарин и вещество VX являются отравляющими веществам (ОВ) антихолинэстеразным эффектом. Иприт и люизит – ТХ кожнонарывного действия (везиканты), их запасы, подлежащие уничтожению, значительно превышали запасы других ОВ. Из ТХ кожно-нарывного действия иприт широко принялся в период первой мировой войны и 10 локальных вооруженных конфликтов XX столетия [McManus J. et al., 2005; Saladi R.N., et al., 2006], в частности в Ирано-Иракском конфликте [Balali-Moode M. et al., 2005].

Токсичные вещества оказывают разнонаправленное воздействие неодинаковой интенсивности на разные звенья иммунной системы.

Поэтому выделение группы токсикантов по их преимущественному действию на доиммунные биологические механизмы резистентности к инфекциям Т-, В-систему иммунитета, различные субпопуляции иммунокомпетентных клеток и иммунные реакции весьма относительно. Следует принимать во внимание и то обстоятельство, что данные ряда авторов в отношении иммунотропных свойств ТХВ противоречивы.

Острые отравления токсикантами, в частности, токсичными химикатами, могут сопровождаться инфекционными осложнениями, связанными с нарушением доиммунных биологических механизмов резистентности к инфекциям, снижением неспецифической резистентности организма и показателей иммунного статуса.

Разработка наряду с антидотными средствами способов снижения поражения системы иммунитета различными ТХВ предполагает дальнейшее изучение их иммунотропных эффектов.

Получение новых и уточнение уже известных данных в отношении иммунотоксичности ТХВ позволит обосновать адекватную характеру нарушений иммунного гомеостаза возможность использования из большого арсенала иммуностимуляторов наиболее перспективных и обоснованных результами проведенных исследований лекарственных средств для профилактики и лечения постинтоксикационных инфекционных осложнений и заболеваний.

ГЛАВА 1. ОСНОВНЫЕ ПОЛОЖЕНИЯ ИММУНОЛОГИИ И

ИММУНОТОКСИКОЛОГИИ

Механизмы сохранения иммунного гомеостаза, иначе говоря, освобождение организма от повреждения собственных клеток и от инфекций включают неспецифические (неспецифическая резистентность организма - НРО) и специфические (иммунные) реакции. В англоязычной литературе термин «врожденный иммунитет» (innate immunity) соответствует используемому в русскоязычной литературе термину «доиммунные механизмы резистентности» [Хаитов Р.М. и соавт., 2002], или «неспецифическая резистентность организма - НРО» [Петров Р.В., 1987, 1991]. В связи с продолжающейся интенсивно развиваться иммунологией меняются подходы к определению некоторых понятий и определений. В настоящее время иммунитетом называются только те защитные процессы, которые реализуются с участием лимфоцитов [Хаитов Р.М.

и соавт., 2002]. Новое определение понятия иммунного ответа характеризует его как «процесс взаимодействия антигена и организма, распознавания поврежденных патогеном клеток и тканей лимфоцитами с целью деструкции и выведения их из организма»

[Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Ряд авторов считают понятие «иммунный гомеостаз»

неприемлемым в связи с тем обстоятельством, что система иммунитета постоянно находится в изменении, обусловленном влиянием антигенных, физических и других факторов. Это, безусловно, так, но существуют такие состояния иммунной системы, которые вполне можно охарактеризовать, как патологические. Не вызывает сомнения, что патология иммунной системы – первичные и вторичные иммунодефицитные состояния – это состояния дисфункции системы иммунитета, которое можно определить, как нарушение иммунного гомеостаза. Иммунный ответ тесно связан с доиммунными механизмы резистентности. Это обусловлено участием системы фагоцитоза (моноцитарно-макрофагальной системы - ММС), системы комплемента, лизоцима, эозинофильной цитотоксичности и других факторов в иммунном ответе, первой стадией которого является доиммунное воспаление. Доиммунные механизмы резистентности определяется несколькими факторами защиты организма, к которым относятся биологические барьеры (кожные и слизистые оболочки), микробицидные экзосекреты (соляная кислота желудка, ферменты кишечника, бактерицидные компоненты слюны, гидролитические ферменты, лактопероксидаза, лактоферрин), сосудистые реакции (локальный отек), белки острой фазы (Среактивный белок, маннансвязывающий лектин), доиммунный фагоцитоз. Факторами НРО являются также бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК), лизоцим, комплемент, тробоцитарный катионный белок (-лизин), cистема пропердина, интерфероны, а также эндогенные пептиды-антибиотики. Ментальная поведенческая защита (правила асептика и антисептики, защита от переохлаждения организма, исключение контактов с инфицированными лицами т.п.).

Важную роль в обеспечении НРО играют нервная и эндокринная системы, а также пассивные механизмы защиты, определяемые генетическим контролем синтеза клеточных структур и т.п. [Петров Р.В., 1987; Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Система иммунитета – это в первую очередь лимфоцитарный иммунитет, который обеспечивает иммунологическую защиту и определяет реализацию таких форм специфических реакций, как синтез иммуноглобулинов, формирование различных видов гиперчувствительности, иммунологической памяти, иммунологической толерантности, идиотип-антиидиотипических взаимодействий [Ройт А. и соавт., 2000; Хаитов Р.М и соавт., 2002].

1.1. Доиммунные биологические механизмы резистентности 1.1.1. Рецепторы распознавания «чужого»

Рецепторы распознавания «чужого» – это первичные рецепторы для патогенов PRR (pattern recognition receptors – рецепторы, распознающие «картинку» (узор) на поверхности патогена) и Toll (в переводе с английского – звон колокольчика у входных дверей). При попадании патогена (в частности, микроорганизмов) в организм они могут быть инактивированы доиммунными биологическими механизмами резистентности. Если данная система не справляется с патогеном, включаются механизмы лимфоцитарного иммунитета. Для реакции организма на патоген должна поступить информация для реализации процессов доиммунного воспаления. Эту информацию распознавания клетки доиммунной резистентности получают при помощи двух типов рецепторов реакциями [Хаитов Р.М. и соавт., 2002; Diamond G., 2000, Holgate S.T., 2000, Medzhitov R., 2000, Bals R., 2004].

Первый тип – растворимые рецепторы для патогенов PRR. Эти жизнедеятельности. Соединясь с патогеном одним концом рецептор PRR другим «хвостом» связывается со специальными рецепторами фагоцитов, что обеспечивает передачу информации о патогене из раствора в клетки доиммунного воспаления (доиммунных механизмов защиты). На поверхности микроорганизмов присутствуют повторяющиеся карбогидратные и липидные структуры, которых нет на клетках организма хозяина. По ним и распознается микробная клетка. Для распознавания микробных структур на клетках млекопитающих имеются 4 растворимые молекулы, являющиеся рецепторами для микробных структур (MBL –маннансвязывающий липолисахаридсвязывающий липид; C1g – компонент системы комплемента [Хаитов Р.М. и соавт., 2002; Medzhitov R., 2000, Bals R., 2004].

Второго типа Toll-рецепторы встроены во внешнюю мембрану дендритных клеток и макрофагов и обеспечивают либо проведение сигналов о патогенах в клетку, либо сами непосредственно связывают продукты патогенов. Рецепторы Toll открыты в процессе работ с дрозофилами в 1985-1988 годах C. Nusselein-Vollhardt и K.V.

Anderson и соавторами и не имели отношения к иммунитету. В последующем в 1991-1995 годах гомологичные сигнальные последовательности в цитоплазматических участках Toll-рецепторов были обнаружены у млекопитающих в цитоплазматическом участке рецептора для ИЛ-1 и получили название TIR (Toll/interleukin- receptor) [Хаитов Р.М. и соавт., 2002; Diamond G., 2000,, Bals R., 2004].

Рецепторы PRR и Toll являются носителями эволюционной памяти многоклеточных о том, что «не свое является чужим». У человека по завершении программы «Геном человека» нашли гомологичных (аналогичных) кодирующих последовательностей нуклеотидов и соответствующих Toll-подобных белков, которые получили название TLR (Toll-like receptors). Эти рецепторы выявлены на дендритных клетках и макрофагах и имеют в зависимости от клетки хозяина и особенностей их реакции на различные микроорганизмы следующие варианты: TLR-2, TLR-4, TLR-7, TLRХаитов Р.М. и соавт., 2002; Holgate S.T., 2000, Bals R., 2004].

Активация TLR приводит к инициации в клетке фактора транскрипции NFkB с последующей экспрессией продуктов генов противовоспалительных цитокинов (фактор некроза опухоли- – TNF. или ФНО), ИЛ-1, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-12 и костимуляторых молекул для выполнения дендритными клетками и макрофагами антигенпредставляющей функции для Т-лимфоцитов (начало развития лимфоцитарного иммунного ответа) [Fleisher T.A., 2004, Reljic R., 2005].

Активация «доиммунных» рецепторов для патогенов приводит к развитию локальных сосудистых реакций, управляемых медиаторами дегранулирующих тучных клеток (гистамином, ФНО) и ферментными каскадами, запускаемыми активированным травмой и инфекцией эндотелием (кининовая система и система коагуляции), в результате которых наступает эксудация в ткани белков сыворотки крови, в том числе опсонинов; фагоцитоз патогена и его переваривание; хемотаксис в очаг нейтрофилов, моноцитов и других лейкоцитов; индукция биосинтеза в нейтрофилах антибактериальных пептидов (- и -дифензинов); биосинтез цитокинов доиммунного воспаления, обеспечивающих развитие лимфоцитарого иммунного ответа) [Хаитов Р.М. и соавт., 2002; Robert C., Kupper T.S., 1999, Delves P.J., Roitt I.M., 2000, Moore B.B. et al., 2001, Reljic R. et al., 2005].

Комплемент был открыт в начале века Jules Bordet вскоре после открытия антител. Комплемент представлял собой феномен присутствия в сыворотке крови «чего-то», что инактивируется прогреванием сыворотки крови при 56 0С, опсонирует бактерии для фагоцитоза, содействует лизису бактерий в присутствии антибактериальных антител. Этот фактор дополнял антитела для реализации лизиса бактерий и активации фагоцитоза бактерий (to complement – дополнить).

В дальнейшем установили, что комплемент представляет собой сложную биологическую систему из 20 компонентов, активация которой может иметь два основных последствия: необратимое повреждение мембран чужеродных специфических функций иммуноцитов. Компоненты комплемента С1, С2, С3, С4, С5, С6, С7, С8, С9 существуют в плазме в неактивной форме и активируются в строгой последовательности (каскадный механизм). Известны два пути активации комплемента - классический, запускаемый реакцией антиген-антитело, и альтернативный (неспецифический). Система комплемента играет важную роль в защите организма от инфекции, принимая участие в неспецифической и иммунологической резистентности организма [Кульберг А.Я., 1986;

Осипов С.Г., Титов В.Н., 1984; Kondo M. et al., 1986, Ройт и соавт., 2000, Хаитов В.М. и соавт., 2000]. Разносторонняя биологическая активность комплемента обеспечивает высвобождение гистамина и других вазоактивных аминов, стимуляцию окислительного метаболизма, активацию внутриклеточных процессов, инициацию направленной миграции лейкоцитов, антителозависимую клеточную цитотоксичность, потенцирование фагоцитоза, модуляцию иммунных реакций, лизис бактерий и вирусов. Бактерии уничтожаются либо в результате прямого литического действия, либо путем фиксации на их поверхности фрагментов комплемента, которые распознаются рецепторами фагоцитов. Опухолевые клетки лизируются комплементом при активации классического пути антителами, а в ряде случаев – по альтернативному механизму. Существует еще и лектиновый путь активации комплемента.

Различные фрагменты 3-го компонента комплемента (СЗ) оказывают селективное действие на разные субпопуляции лимфоцитов и могут моделировать иммунный ответ на многих уровнях, включая рециркуляцию, переработку антигена, пролиферацию и дифференцировку клеток [Петров Р.В., 1987; Ройт А., 1991; Kondo M. et al., 1986].

Компонент комплемента C1g осуществляет связывание с комплексом антиген-антитело, C4b и C3b – связывание с мембраной бактерий и опсонизацию к фагоцитозу; C1r, C1s, C2b, Bd, D – являются протеазами, активирующими другие компоненты системы путем расщепления, медиаторы воспаления – C5a, C3a; C5b, C6, C7, C8, C9 - протеины, перфорирующие мембрану клетки-мишени; CR1, CR2, CR3; CR4, C1gR – рецепторы для белков комплемента на клетках организма; Clinh, C4bp, CR1, MCP, DAF, H, I, P, CD59 – ингибиторы активации и блокаторы активности. Клеточные рецепторы для компонентов комплемента экспрессированы на моноцитах, макрофагах, ПЯЛ, В-лимфоцитах, фолликулярных дендритных клетках, эритроцитах, тромбоцитах, тучных клетках и эндотелии сосудов. Соединение компонентов комплемента с рецепторами клеток вызывает реализацию различных реакций: опсонированный фагоцитоз, активацию В-лимфоцитов, транспорт иммунных комплексов на эритроцитах, активация макрофагов, дегрануляция и активация тучных клеток [Кульберг А.Я., 1986; Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Данные литературы свидетельствуют, что ряд компонентов системы комплемента обладают эстеразной активностью [Кульберг А.Я., 1986; Becker E.Z. еt al., 1956, 1964, 1966, 1967, 1971, 1976].

Антихолинэстеразные токсиканты, в частности ФОВ, а также хлорированные углеводороды способны ее существенно снижать [Тиунов Л.А., 1990; Забродский П.Ф. и соавт., 1997; 2003, 2004б], вызывая таким образом редукцию системы комплемента. Можно предположить, что слабо выраженным влиянием на ферменты системы комплемента могут обладать метаболиты спиртов и другие соединения.

Белки острой фазы (БОФ) – С-реактивный протеин (CRP), маннансвязывающий лектин, фибриноген, сурфактанты SP-A, SP-D – являются растворимыми рецепторами для патогенов. Концентрация этих белков существенно возрастает при патологических процессах, затрагивающих весь организм в целом. Название С-реактивный протеин (CRP) происходит из наблюдения, что этот белок связывает стафилококков группы С. Однако этот белок способен связывать и другие бактерии и отправлять их на фагоцитам для поглощения и переваривания (связывание с белком для поглощения клеткой – фагоцитом называется опсонизацией ( от лат. оpsonen – делающий вкусным). Растворимые белки, связывающие одним концом (рецептором) микроб, а другим – фагоцит, называют опсонинами.

CRP – петраксин – белок, сформированный из 5 субъединиц. CRP имеет химическое сродство к фосфорилхолину, входящему в состав клеточных мембран бактерий и грибов. С фосфорилхолином, входящим в состав фосфолипидов, мембран клеток млекопитающих C-реактивный протеин не связывается. СRP способен, кроме опсонизации микроорганизмов, активировать систему комплемента по классическому пути (связывание с C1g). При этом C-реактивный протеин, будучи иммуноглобулином лишенным вариабельности, действует на иной рецептор молекулы C1g в отличие от специфических иммуноглобулинов.

Маннансвязывающий лектин (МСЛ) относится к семейству коллектинов – кальцийзависимых сахарсвязывающих протеинов (лектины – белки, связывающие с высокой аффинностью углеводы).

МСЛ опсонизируют микробы для фагоцитоза моноцитами, которые от отличие от более зрелых макрофагов еще не экспрессируют собственный рецептор для маннозы. Поверхностные углеводы млекопитающих «экранированы» углеводородно-белковыми соединениями и не способны взаимодействовать с МСЛ.

Маннансвязывающий лектин по вторичной структуре и по функции похож на молекулу C1g и способен активировать протеазы, инициируя каскад комплемента (расщепляет С4 и С2). Этот путь активации системы комплемента называется лектиновым.

Сурфактантные протеины легких SP-A, SP-D (surfactant protein A, D) имеют, вероятно, существенное значение в опсонизации легочного патогена одноклеточного гриба Pneumocystis carinii.

Действие токсикантов на белки острой фазы практически не описано. Можно полагать, что ряд токсикантов способны взаимодействовать с БОФ. Однако вряд ли следует ожидать существенного изменения при этом влияния при доиммунных механизмов резистентности. Можно предположить возможность повреждения собственных тканей организма в результате взаимодействия ядов с «экранированными» поверхностными углеводами млекопитающих вследствие повреждения углеводороднобелковых соединений «экрана». Существуют основания считать возможным взаимодействие антихолинэстеразных токсичных химикатов с маннансвязывающим лектином по вторичной структуре и по функции похожим на C1g.

Лизоцим (мурамидаза) - один из важных факторов неспецифической защиты организма. Он был открыт в 1909 г. П.К.

Лащенковым и изучен в 1922 г. А.Флемингом. Это термостабильный кристаллический белок типа муколитического энзима с молекулярной массой от 10000 до 25000 Д. Содержится во многих секретах, жидкостях и тканях [Диксон М., Уэбб Э., 1982]. Ферментативная специфичность лизоцима заключается в разрушении связи между Nацетилмураминовой кислотой и N-ацетилглюкозамином в мукополисахариде, образующем оболочку многочисленных микроорганизмов, особенно грамположительных. Образующиеся гликопептиды обладают адъювантной активностью, стимулируют продукцию антител, повышают митотическую активность иммуноцитов, индуцируют гиперчувствительность замедленного типа.

Источником лизоцима являются нейтрофильные гранулоциты и моноциты [О.В.Бухарин и Васильев Н.В., 1974; Гембицкий Е.В. и соавт., 1987]. Некоторые иммунологические реакции связаны с активностью лизоцима. Так, комплекс "IgA-антиген" проявляет антибактериальную и нейтрализующую aктивность после активации комплементом только в присутствии мурамидазы [Nouragargh S., Holt J.R.S., 1986].

Использование показателя лизоцимной активности для оценки действия ксенобиотиков на организм свидетельствует о высокой чувствительности данного теста [Денисенко П.П., 1980; Забродский П. Ф., 1998, 2000; Германчук В.Г., 2000].

1.1.5. Тромбоцитарный катионный белок Одним из факторов сохранения и поддержания неспецифической резистентности организма является тромбоцитарный катионный белок (ТКБ) сыворотки крови, ранее известный как -лизин [Бухарин О. В и соавт.,1977; 1985; 1998]. -лизин – бактерицидное вещество сыворотки крови, избирательно активное в отношении грамположительных микроорганизмов и спорообразующих бацилл.

Открыт в 1886 г. G. Nuttal и изучен в 1926 г. A. Pettersson, назван лизином в отличие от -лизина (комплемента). -лизин обнаружен в сыворотке крови, слюне, секрете слезных желез и других жидкостях организма. Источником ТБК являются тромбоциты. Механизм действия ТБК обусловлен изменением проницаемости мембран микроорганизмов и блокадой их окислительного метаболизма. Метод определения активности ТВК основан на избирательной чувствительности к его бактерицидному действию индикаторной культуры - B. subticis.

Фагоцитоз был открыт И.И. Мечниковым в 1882 году. Процесс фагоцитоза осуществляется микрофагами (гранулоцитами) и макрофагами (моноцитами крови, клетками пульпы селезенки, эндотелия кровеносных сосудов, полибластами, гистиоцитами и др.) [Хаитов Р.М., 2002; Solberg C. O., 1984]. В настоящее время фагоцитоз рассматривается как сложный многоступенчатый процесс, начинающийся с захвата фагоцитом чужеродной субстанции и кончающийся ее перевариванием (хемотаксис; адгезия; пиноцитоз;

формирование фагосомы; слияние фагосомы с гранулами цитоплазмы, приводящее к активированию гидролаз, пироксидаз, протеиназ; гибель и переваривание объекта фагоцитоза, выброс продуктов деградации) [Хаитов Р.Я., Пинегин Б.В., 1995; Hong R., 1984].

Фагоцитоз подразделяется на неиммунный и иммунный (в случае наличия информации - антител к антигенам клетки мишени).

Фагоцитоз может быть завершенным и незавершенным.

Помимо действия ферментов уничтожение чужеродной клетки может осуществляться путем "дыхательного" (кислородного) взрыва [Nogueira N., 1984]. В настоящее время получены данные, свидетельствующие о том, что в фагоцитарной реакции активное участие принимает радикал оксида азота (NO), НАДФ-Н-оксидазы, супероксиддисмутаза, перекись водорода, супероксид анион, синглетный кислород, радикал гидроксила, гипохлорид. Агрессивные окислители работают внутри клетки, а на определенных этапах воспалительной реакции секретируются во внеклеточную среду.

Макрофаги продуцируют ИЛ-1, ИЛ-6, ИЛ-8, ИЛ-12 и ТNF- (фактор некроза опухоли), простагландины, лейкотриен В4 (LTB4), фактор, активирующий тромбоциты. Нейтрофилы синтезируют и выделяют в кровь ТNF- и ИЛ-12, а также хемокин ИЛ-8 [Хаитов Р.

М. и соавт., 2000]. Функция макрофагов включает не только фагоцитоз, но и представление переработанного (модифицированного) в лизосомах антигена Т-лимфоцитам. Взаимодействие макрофагов, реэкспрессирующих в модифицированном виде антиген на клеточной мембране, Т- и В-клеток обеспечивает синтез антител на тимусзависимые антигены. Макрофаги секретируют лизоцим, компоненты комплемента (С1, С2, С3, С4, С5, С6, фактор В), интерферон, эстеразы и пр.

Действие токсикантов на фагоцитоз изучено недостаточно [Забродский П.Ф., 1998; Luster M.J. et al., 1987]. При этом, как правило, отмечается снижение функции макрофагов и нейтрофилов.

Однако в ряде случаев отмечается кратковременная активация фагоцитарной активности [Шубик В. М., 1976; Забродский П.Ф., 1998]. Кислородзависимые антиинфекционные системы фагоцита оценивают чаще всего в НСТ-тесте (тест восстановления нитросинего тетразолия – НСТ, основанный на способности поглощенного фагоцитом растворимого красителя НСТ в нерасворимый диформазан под влиянием супероксиданиона, образующегося в НАДФ-Нокидазной реакции.) [Nouragargh S., Holt J.R.S., 1986], а кислороднезависимые микробоцидные системы фагоцита - в лизосомально-катионном тесте [Elsbach P., Weise J., 1985].

Фагоцитарную активность можно определять, используя культуры различных микроорганизмов (определяют активность фагоцитоза – процент активно фагоцитирующих клеток, интенсивность фагоцитоза – среднее число микроорганизмов, приходящиеся на один фагоцит, завершенность фагоцитоза, эффективность фагоцитоза) [Новиков Л.В.

и соавт., 1981]. Существует способ оценка фагоцитарной активности нейтрофилов и макрофагов, основанный на восстановлении поглощенного фагоцитом растворимого красителя нитросинего тетразолия (НСТ) в нерастворимый диформазан под влиянием супероксиданиона, образующегося в НАДФ-Н-окидазной реакции.

НСТ-тест интегрально характеризует антиинфекционные системы фагоцита [Маянский Д. Н., 1986; Segal A.

W., 1974; Elsbach P., Weise J., 1985].

Иммунитет определяют как процесс взаимодействия антигена и организма, распознавания поврежденных патогеном клеток и тканей лимфоцитами с целью деструкции и выведения их из организма [Хаитов Р.М. и соавт., 2000].

Иммунная система – это совокупность всех лимфоидных органов и скоплений лимфоидных клеток тела. Лимфоидная система организма представляет собой морфологический синоним иммунной системы и осуществляет иммунный ответ. В лимфоидной системе различают центральные (тимус, костный мозг) и периферические (лимфатические узлы, селезенка, кровь) органы. Клетки, осуществляющие иммунные реакции, называют иммуноцитами, или иммунокомпетентными клетками (ИКК).

Формирование специфического иммунного ответа происходит при соблюдении следующих условий:

1. Наличие чужеродного агента с достаточно сложной структурой, способного индуцировать начало процесса (антигена).

2. Наличие ИКК организма, способных к взаимодействию именно с данным антигеном, и, следовательно, отличающих его от всех других.

Каждая ИКК способна к взаимодействию с одним антигеном.

3. Способность клеток после контакта с антигеном размножаться, дифференцироваться в организме и дать начало более многочисленной и зрелой популяции клеток, обусловливающих иммунный ответ.

4. Неспособность организма вырабатывать иммунный ответ на собственные антигенные вещества (аутотолерантность), т.к. в противном случае постоянно происходили бы аутоиммунные процессы, несовместимые с жизнью.

5. Наличие иммунологической памяти, обеспечивающей количественно и качественно более выраженный ответ на повторное действие антигена (вторичный ответ) или ареактивность, если к данному антигену организм обладает иммунологической толерантностью.

Выделяют три стадии иммуногенеза. Первый этап – дифференцировка клеток лимфоидного и миелоидного ряда до попадания в тимус или костный мозг. На этой стадии количество митозов составляет примерно 6–7. Второй этап начинается после выхода иммунокомпетентных клеток из тимуса и костного мозга и их взаимодействия. Классический пример кооперации иммуноцитов – взаимодействие Т-, В- клеток и макрофагов. На данном этапе происходит 2–3 митоза клеток. Третий этап – образование эффекторных клеток: памяти, киллеров, антителообразующих и других. При этом отмечается такое же количество митозов, как и на первом этапе [Хаитов Р.М. и соавт., 2000].

В основе иммунного ответа лежит функция лимфоцитов.

Лимфоцитарный иммунитет впервые был открыт у высших позвоночных. Осуществляют его Т-, В-лимфоциты и вспомогательные клетки.

В ответ на попадание чужеродных или собственных антигенов, микроорганизмов, злокачественно трансформированных клеток, появляющихся при опухолях или внесенных при трансплантации чужеродных тканей, в организме возникают гуморальные и клеточные иммунные реакции. Гуморальные реакции требуют присутствия антител, комплемента, полиморфноядерных лейкоцитов и макрофагов.

Поскольку антитела вырабатываются В-лимфоцитами (символы Т и В введены в иммунологическую литературу И. Ройтом в 1969 г. от определений на английском языке "тимусзависимая" и "бурсозависимая" система) гуморальные иммунные реакции определяют как В-клеточный иммунитет (В-система иммунитета).

Синтез антител - белков, относящихся к тому или иному классу иммуноглобулинов (М, G, А, Е, D), продукция которых стимулируется после парентерального поступления антигена, отражает функцию Всистемы иммунитета. Сравнительная характеристика Т- и Влимфоцитов человека представлена в табл. 1. Сравнительная характеристика Т- и В-лимфоцитов человека гистосовместимо Рецепторы для эритроцитов:

Участие в гуморальном ответе:

Участие в клеточном иммунитете + Барра В ответ на антигены патогена (микроорганизмы, поврежденные ткани) рецепторы В- и Т-клеток начинают генерироваться «вслепую».

И только лимфоциты, специфичные для данного патогена, подвергаются отбору (селекции) и последующей клональной экспансии. Таким образом, важнейшим требованием для индукции иммунного ответа является транспорт антигена от места его проникновения в организм до соответствующей области лимфоузла.

Хотя некоторые микроорганизмы могут «напрямую» поступать в эти зоны, транспортировка антигенов - это специализированная функция так называемых антигенпредставляющих клеток – важнейшего звена в интеграции доиммунных механизмов резистентности и иммунитета [Robert C., 1999: Delves P.J., 2000: Moore B.B., 2001; Fleisher T.A., 2004: Reljic R., 2005].

К антигенпредставляющим клеткам относят дендритные клетки, макрофаги и В-клетки (рис. 1.1).

Рис. 1.1. Представление антигена Т-клетке Антигенпредставляющие клетки поглощают экстрацеллюлярные антигены, но активизируются только в том случае, если рецепторы на их поверхности распознают определенную патоген-ассоциированную молекулярную модель (ПАММ), то есть антиген, соединеный с молекулой главного комплекса гистосовместимости.

Патоген-ассоциированные молекулярные модели (ПАММ) позволяют рецепторам на дендритных клетках и макрофагах распознавать и различать как патогены. Активизированные дендритные клетки и макрофаги, становясь антигенпрезентирующей клеткой, образуют на своей поверхности соединение молекулы комплекса гистосовместимости (МНС) и пептидов, полученных в результате внутриклеточной обработки чужеродного антигена. Это специализированной CD28-T-клетки – активного участника иммунного ответа. Активация также заставляет дендритные клетки увеличивать экспрессию B7-костимулируюших молекул (по Delves P.J., Roitt I.M., 2000).

Антигенпредставляющие клетки распознают, поглощают антиген.

Затем происходит трансформация чужеродного антигена в иммуногенные пептиды для последующего их объединения с молекулами главного комплекса гистосовместимости (МНС – major histocompatibility complex). Одним из крупнейших открытий в области иммунологии явилось доказательство того, что рецепторы Tлимфоциты могут распознавать антиген исключительно в составе главного комплекса гистосовместимости (класса I или II), сопряженным (соединенным) с антигеном (иммуногенным пептидом) [Masten B.J., 1999: Rissoan M.C., Banchereau J., 2000; Lambrecht B.N., 2001; Santiago-Schwarz F., 2004].

Стволовые клетки непрерывно мигрируют из костного мозга в тимус, где они трансформируются в T-клетки, подвергаясь при этом ряду процедур селекции (рис. 1.2.).

T-клетки обнаруживают чужеродные антигены, представленные собственными MHC-молекулами (главным комплексом гистосовместимости). В результате случайного характера генерации рецепторов Т-клеток только малая (1–5%) их часть оказывается способной к выполнению этой задачи. Большинство незрелых CD4 и CD8 T-клеток, не способных распознавать собственные (макроорганизма) MHC-молекулы, подвергаются апоптозу (негативная селекция). Т-клетки, рецепторы которых имеют определенную (среднюю и высокую аффинность) к собственным MHC-молекулам, отбираются корковыми эпителиоцитами (позитивная селекция). Однако многие из этих лимфоцитов потенциально опасны, так как их рецепторы имеют слишком высокое сродство к собственной MHC-молекуле.

Рис. 1.2. Положительная и отрицательная селекция в тимусе Эти аутоагрессивные T-клетки, взаимодействуя с дендритными клетками и макрофагами в мозговом веществе тимуса, отбираются и затем удаляются путем индукции апоптоза (негативная селекция). В результате «остаются» («позитивно» отбираются) T-клетки с относительно невысокой (средней по силе) аффинностью к собственной MHC-молекуле. Эти лимфоциты и формируют пул Тклеток, покидающих тимус в форме CD4 или CD8. На периферии они имеют достаточный потенциал для того, чтобы распознавать комплекс из чужеродного пептида плюс собственной MHC-молекулы и становятся активированными, если аффинность взаимодействия превышает некоторый порог [Delves P.J., Roitt I.M., 2000].

Таким образом, при отборе (селекции) Т-клеток происходит последовательно: «негативная селекция» (удаление клеток с низкой аффинностью к антигену), «позитивная селекция» (отбор клеток со средней и высокой аффинностью), «негативная селекция» (удаление клеток с высокой аффинностью к антигену).

При созревании (в пределах тимуса) на поверхности Т-клеток происходит экспрессия большого количества иммунологически значимых молекул. Многие из них были первоначально охарактеризованы на основе их реактивности к определенным (линейным) моноклональным антителам. Антитела, произведенные различными лабораториями, формировали набор (кластер) и могут быть сгруппированы вместе, если они распознают идентичную молекулу. Это привело к классификации, в которой данная молекула определялась как «антигены кластера дифференцировки клеток» или «кластер дифиниции» («кластер определения»), или CD (cell differentiation antigens или cluster difinition) и номер, например CD1, CD2 и CD3 [Ellmeier W., 1999; Goldrath A.W., 1999; Klein J., 1999;

Andrian U.H., 2000; Maekawa Y., 2005].

1.2.2. Т-клеточные иммунные реакции Рецепторы Т-лимфоцитов CD4- и CD8-молекулы формируют существенную часть рецепторного комплекса T-клетки. CD4 T-клетки обычно являются хелперными Т-клетками и распознают антигены, представленные MHC-молекулами II класса, в то время как CD8 Tклетки - обычно цитотоксичны и распознают антиген, представляемый экспрессируется во всех ядросодержащих клетках. При этом существует возможность передавать информацию о повреждении клетки CD8 T-киллерам (Т-эффекторам) путем близких межклеточных контактов, представляя комплекс из чужеродного пептида и MHCмолекулы на рецептор T-эффектора. В то же время активированный в результате контакта с MHC-молекулой II класса CD4 Т-хелпер соответствующие цитокины. Таким образом, эффекторная функция Тклетки-хелпера не всегда зависит от близкого контакта с В-клеткой, которая должна отвечать на определенный цитокин [Abbas A.K., 1996;

Ellmeier W., 1999; Klein J., 2000; Benito J.M.; 2004, Parham P., 2005].

Клеточный иммунитет проявляется в реакциях клеток иммунной системы на чужеродные для данного организма клеточные формы.

Клетками-мишенями в этом случае могут быть клетки трансплантата, опухолевые клетки, клетки, зараженные вирусом. Основными эффекторами в реакциях клеточного иммунитета являются Т-киллеры.

Цитотоксическое разрушение клеток-мишеней способны осуществлять и другие типы клеток – естественные киллеры, Т-клетки реакции гиперчувствительности замедленного типа, макрофаги, полиморфноядерные лейкоциты. В реакции антителозависимой клеточной цитотоксичности (АЗКЦ) эффекторные клетки (ЕКК) разрушают клетки-мишени в присутствии специфических антител, направленных против их антигенных детерминант. Т-система контролирует работу В-системы. Для изучения влияния ксенобиотиков на Т-систему иммунитета исследуют содержание различных субпополяций Т-лимфоцитов в органах системы иммунитета и крови, оценивают реакции бласттрансформации лимфоцитов, гиперчувствительности замедленного типа, отторжения аллотрансплантата, торможения миграции лейкоцитов, продукцию лимфокинов Т-клетками, естественную и антителозависимую клеточную цитотоксичность и др. [Ройт А. и соавт., 2000].

Гуморальный иммунитет относится к антителоопосредованным антителопродуцирующие (синтезирующие иммуноглобулины) клетки иммунной системы. Их активировация может происходить в иммуноглобулинов (Ig) В-клетки с эпитопами патогена (Tнезависимая активация). T-независимые антигены являются, главным образом, компонентами стенок бактериальных клеток (например, липополисахарид - ЛПС). Однако главным защитным ответом в борьбе с патогенными микроорганизмами следует считать Tзависимые иммунные реакции [Ales-Martinez J.E., 1991; Soro P.G., 1999; Xiao W., 2000; Jeurissen A., 2004; Baudler S., 2005].

Иными словами, гуморальный иммунный ответ на наиболее сложные антигены происходит с участием T-клеток. Активация Tзависимой иммунной реакции реализуется в результате сложного взаимодействия между антигенпредставляющей клеткой (АПК), антигеном, а также B- и T-клетками. Типичный сценарий активации Антигенпредставляющая клетка затем перерабатывает белковые компоненты антигена в пептидные фрагменты пептидов и экспрессирует их на своей поверхности (в связанной с MHC – молекулой форме). Этот комплекс распознается затем рецептором Тклетки на ее поверхности [Parker DC., 1993; Tumang J.R., 1996; Garside P., 1998; Tsuji R.F., 2002; Tangye S.G., 2004].

При гуморальным иммунном ответе на тимуснезависимые антигены определенную роль играет ИЛ-1, продуцируемый макрофагами. Как уже упоминалось, при тимусзависимой иммунной реакции необходима переработка и представление антигена макрофагами В-лимфоцитам при участии Т-клеток. Т-хелперы включают совместно с макрофагами В-лимфоциты в антителогенез, а различные клетки-супрессоры и супрессорные факторы тормозят этот процесс. При этом их миссия состоит в блокировании аутоиммунных реакций и торможении гиперактивности В-антителопродукции. Роль Т-супрессоров могут выполнять - CD4+ или Тh3- лимфоциты (хелперы 3-го типа) и, кроме того, – Th2-клетки (хелперы 2-го типа); CD4CD8+ лимфоциты, продуцирующие интерлейкины, ингибирующие рецепторы Т-лимфоцитов (CTLA-4); особые Т-лимфоциты-киллеры.

В настоящее время исходя из функциональной принадлежности, выделяют Т-хелперы 1 типа - Th1-лимфоциты, участвующие в реализации реакций клеточного иммунитета, а также синтезе Ig M, G2а (и формировании ГЗТ), Т-хелперы 2 типа - Th2-лимфоциты, способствующие синтезу IgG1, A, E, D и Th3-лимфоциты, выполняющие регуляторные функции, основной из которых может являться супрессия иммунных реакций [Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Гуморальными факторами супрессии иммунного ответа являются кортикостероиды, интерлейкины и различные лимфокины.

Осуществлять роль клеток-супрессоров могут и В-лимфоциты [Хаитова Р. М. и соавт.., 2002]. В англоязычной литературе, рассматривая ИКК, участвующие в антителопродукции (синтезе иммуноглобулинов), используют термин «клеточная версия (составляющая)» иммунного ответа.

1.2.4. Естественные клетки-киллеры К ЕКК, открытым в 1976 году, относятся клетки, не имеющие антигенных маркеров Т- и В-лимфоцитов (так называемые О-клетки).

Предполагают, что ЕКК происходят из предшественников Тлимфоцитов [Ройт А., 1991]. Поверхность ЕКК имеет маркерные молекулы СD16, CD56, CD57 и CD94 (ЕКК представлены в основном клетками с маркерами СD16 и CD56) [Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Кроме данных маркеров, на ЕКК обнаружены следующие рецепторы (СD-маркеры): СD2, СD11b, СD16, СD27, СD30, СD39, CD56, CD57, СD62L, СD87, CD94, СD119 и СD132. При этом рецепторы СD2, СD27, СD30, СD62L, СD87, CD132 являются общими для ЕКК и Тлимфоцитов [Хаитов Р.М. и соавт., 2002]. Ингибируют цитотоксическую активность ЕКК субпопуляции нормальных (естественных) киллеров СD158а, СD158b [Хаитов Р.М. и соавт., 2000]. При контакте с клетками опухоли и клетками, пораженными вирусами или паразитами, ксеногенными клетками, ЕКК способны уничтожать их. ЕКК не обладают способностью к фагоцитозу [Петров Р.В., 1983; Ройт А., 1991].

Цитолиз клетки-мишени осуществляется проникновением ферментов из гранул ЕКК в цитоплазму клетки-мишени (порообразование перфорином) [Хаитов Р. М. и соавт., 2002; Nogueira N., 1984; Li Q., Kawada T., 2006]. Кроме того, ЕКК способны обеспечивать уничтожение чужеродной клетки путем реализации "дыхательного взрыва" (поражение активными радикалами кислорода, гидроксильного радикала и т.п.), а также индукцией апоптоза.

Активность ЕКК повышается интерферонами, интерлейкинами (ИЛ-2, ИЛ-4, ИЛ-10, ИЛ-12, ИЛ-13) [Хаитов Р. М. и соавт., 2000; Kimber I., More M., 1985; Marx J.L., 1986; Li Q., Kawada T., 2006].

При контакте с клетками опухоли, клетками, пораженными вирусами или паразитами, ксеногенными клетками, ЕКК способны уничтожать их без предварительного контакта с антигенами, находящимися на их поверхности. Они узнают определенные структуры высокомолекулярных гликопротеидов, которые экспрессируются на мембране инфицированных вирусом клеток. В литературе 80–90-х годов прошлого столетия ЕКК относили к факторам неспецифической резистентности организма (НРО) [Descotes J., 1986], врожденному иммунитету, наряду с системой комплемента и фагоцитозом [Ройт А., 1991]. В настоящее время ЕКК характеризуют как популяцию лимфоцитов, определяющих лимфоцитарный иммунитет [Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Последние достижения в иммунологии, свидетельствующие о том, что ЕКК и К-клетки, обусловливающие антителозависимую клеточную цитотоксичность (АЗКЦ) – это одни и те же клетки, отличающиеся лишь механизмами реализации поражения (киллинга, убийства) клеток-мишеней [Ройт А. и соавт, 2000; Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Функция ЕКК регулируется, наряду с интерферонами, также эндогенными нейромедиаторами (ацетилхолином, гормонами гипоталамо-гипофизарно-адреналовой и симпатико-адреналовой систем) [Забродский П.Ф., 1993; 1995;2001; Ройт А. и соавт., 2000].

Цитокины – это множество разнообразных биологически активных молекул, секретируемых клетками с целью воздействия через специфические рецепторы для каждого из цитокинов на рядом расположенную клетку (или на себя же) [Хаитов М.Р. и соавт., 2002].

При попадании антигена в организм выделяют следующие процессы:

распознавание антигена, активация клеток, пролиферация и дифференцировка лимфоцитов. Указанные процессы подвергаются регуляции цитокинами (интерлейкинами – ИЛ и различными биологически активными молекулами). Все интерлейкины представляют собой пептидные структуры, состоящие из аминокислотных остатков. Большинство из них получено в виде генно-инженерных рекомбинантных препаратов, что позволяет широко использовать их не только в экспериментах, но и для создания тест-систем обнаружения интерлейкинов, а также в качестве лечебных средств [Georgiev V.St., Albright J.E.,1993]. Цитокины не депонируются в клетках, а синтезируются импульсно «по запросу», начиная с транскрипции мРНК цитокина с соответствующего гена.

Исключение составляет фактор некроза опухоли- (ФНО, TNF), который депонируется в гранулах тучных клеток и ИЛ-1, депонирующийся в некоторых количествах в кератиноцитах [Хаитов М.Р. и соавт., 2002].

гемопоэтические, доиммунного воспаления, организаторы лимфоцитарного воспаления, противовоспалительные (иммуносупрессорные) цитокины.

Гемопоэтические цитокины регулируют пролиферацию и дифференцировку всех клеток кроветворной системы – GM-CSF (гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий факторКСФ), M-CSF (макрофанальный КСФ), G-CSF (гранулоцитарный КСФ), эритропоэтин, тромбопоэтин, IL-3 – мульти-CSF, IL-5 - CSF для эозинофилов, IL-7 – CSF для лимфоцитов, SCF – стволово-клеточный фактор, или фактор роста предшественников тучных клеток. К гемопоэтическим цитокинам относят и ИЛ-1 – гемопоэтин- (поддерживает рост предшественников кроветворения). К негативным регуляторам гемопоэза относится TNF и TNF. Хемокин MIPингибирует ранние клетки предшественников гемопоэза.

Цитокины доиммунного воспаления делятся на две подгруппы.

Первично провоспалительные цитокины – IL-1, TNF, IL- (продуцируют макрофаги и лимфоидные дендритные клетки покровных тканей в очаге внедрения патогена). IL-1, TNF действуют преимущественно локально, IL-6 индуцирует синтез белков острой фазы в печени. Вторично провоспалительные цитокины – хемокины обеспечивают локомоторное передвижение лейкоцитов в тканях, поддерживают ангиогенез и продукцию коллагенов соединительной тканью (регенерацию).

Цитокины организаторы лимфоцитарного иммунного ответа (IL-2, IL-4, IL-12, IL-15, IFN-) регулируют пролиферацию и дифференцировку Т- и В-лимфоцитов и ЕКК в периферических лимфоидных органах и тканях. Их продуцируют дендритные клетки и макрофаги, а затем и сами лимфоциты.

Цитокины медиаторы иммунного воспаления: IFN- – активатор макрофагов и ЕКК; IL-5 – индуктор и активатор эозинофилов; LT – активатор нейтрофилов; LT – обеспечивает образование воспалительных гранулем in vivo.

Противовоспалительные (иммуносупрессорные) цитокины: IL-10 – продуцируется макрофагами и ингибирует макрофаги, TGF- – продуцируется иммунными CD4+ -Т-лимфоцитами (Th3лимфоцитами) и ингибирует дальнейшую пролиферацию лимфоцитов;

IL-4 и IL-13 ингибируют макрофаги, и в определенных реакциях проявляют себя как противовоспалительные цитокины.

На клетках продуцентах цитокинов и их биологических эффектах в моделях на мышах следует остановиться подробнее.

Интерлейкин-1 (ИЛ-1) продуцируется активированными макрофагами, оказывая при этом воздействие на многие клетки структуры. Он активирует гипоталамический центр терморегуляции, являясь эндогенным пирогеном. Весьма существенно, что ИЛ- активирует Т-лимфоциты: способствует созреванию тимоцитов, стимулирует продукцию Т-клетками интерлейкина-2, гаммаинтерферона и других медиаторов. ИЛ-1 снижает супрессорную активность Т-лимфоцитов повышает их цитотоксичность, активирует созревание В-лимфоцитов и продукцию ими антител. ИЛ- способствует продукции простагландинов, активирует моноциты, нейтрофилы, эндотелиальные и другие клетки, способствует воспалительной реакции. Многие эффекты ИЛ-1 осуществляет в комплексе с другими медиаторами.

Интерлейкин-2 (ИЛ-2) продуцируется Т-лимфоцитами как CD4+ (лимфоцитами Th0- типа), так и некоторыми CD8+; стимулируют пролиферацию В-клеток и синтез J-цепи молекулы иммуноглобулина, пролиферацию Т-лимфоцитов, ЕКК.

ИЛ-2 невидоспецифичен, поэтому содержащие его препараты, в том числе и рекомбинантный ИЛ-2, активны для клеток человека. ИЛуспешно применяется для лечения злокачественных опухолей.

Поскольку введенный ИЛ-2 сохраняется в организме менее 30 минут, препарат вводят многократно или используют для активации лимфоцитов больного in vitro с последующим возвратом активированных клеток хозяину.

Интерлейкин-3 (ИЛ-3) продуцируется Т-лимфоцитами (Th1- и Th2типа), некоторыми CD8+. Стимулирует пролиферацию стволовых клеток и ранних предшественников гемопоэтических клеток (фактор роста ранних предшественников всех ростков миелопоэза).

Интерлейкин-4 (ИЛ-4) также продуцируется активированными Тлимфоцитами (Th2-типа, ТCR+/CD4+/CD8-). Ранее он именовался «фактор роста В-клеток», что определяет его свойство стимулировать дифференцировку В-лимфоцитов и синтез иммуноглобулинов, в частности, IgG1 и IgЕ (переключает синтез иммуноглобулинов на классы Е и. G1. Способствует выживанию Th2-лимфоцитоа, стимулирует их дифференцировку, ингибирует активацию макрофагов, активирует дифференцировку тучных клеток.

Интерлейкин-5 (ИЛ-5) вырабатывается активированными Тлимфоцитами (Th2-типа), способствует активации В-клеток, активирует синтез IgA (осуществляет это действие независимо от Тклеток, за что получил название «Т-замещающий фактор»). ИЛ- полифункционален, действует также на эозинофильные и базофильные лейкоциты.

Интерлейкин-6 (ИЛ-6) продуцируется Т-лимфоцитами (Th0- и Th2типа), моноцитами и фибробластами. ИЛ-6 продуцируют макрофаги и лимфоидные дендритные клетки покровных тканей в очаге внедрения патогена. Активирует В-клетки, является фактором роста гибридом, стимулирует гепатоциты, способствует дифференцировке Т-клеток в цитотоксические.

Интерлейкин-7 (ИЛ-7) продуцируется клетками стромы костного мозга, тимуса, является ростовым фактором В-клеток; воздействует на ранние предшественники В-клеток, а также на ранние и поздние предшественники Т-лимфоцитов [Хаитов Р.М. и соавт., 2002; Georgiev V.St., Albright J.E.,1993].

Интерлейкин-8 (ИЛ-8) имеет моноцитарное происхождение, является индуктором воспалительной реакции — активирует хемотаксис и активность гранулоцитов.

Среди других лимфокинов достаточно изучены TNF (фактор некроза опухоли (ФНО) или кахексин, который продуцируется Th1и Th2-типа и CD8+, а также TNF – и фактор некроза опухоли- ФНО (лимфотоксин), синтезируемый Th1-лимфоцитами, макрофагами и лимфоидные дендритные клетки покровных тканей в очаге внедрения патогена. ФНО был вначале обнаружен как компонент сыворотки животных, стимулированных бактериальным токсином, вызывающим некротические процессы в опухоли.

ФНО активирует макрофаги, индуцирует продукцию ими NOсинтетазы. TNF и TNF относится к негативным регуляторам гемопоэза активирует моноциты, нейтрофилы, эозинофилы, повышая их миграционную и адгезивную активность. Введение или выброс больших количеств ФНО и ИЛ-1 обусловливает картину септического шока с геморрагическими повреждениями, распадом тромбоцитов, освобождением медиаторов.

Действие ФНО и ФНО (TNF и TNF) на опухоль обусловлено их токсическими свойствами в отношении клеток опухоли (лимфотоксин), нарушениями липидного обмена, обусловливающими кахексию (-лимфотоксин), активацией моноцитов, нейтрофилов, эозинофилов, местным провоспалительным эффектом [Georgiev V.St., Albright J.E.,1993].

Получение рекомбинантных TNF и TNF открывает возможности прямого воздействия их на опухоль, в частности, при местном применении.

Интерфероны (ИФН) занимают особое место среди цитокинов. К первому типу ИФН относится -ИФ и -ИФ, индуцируемых вирусами а также двухспиральной РНК. Эти ИФ обладают противовирусными (в отношении клеток, пораженных вирусами) действием. -ИФ продуцируется лейкоцитами, а -ИФ - фибробластами. ИФ подавляют размножение вирусов в индуцированных ими клетках.

Ко второму типу ИФН относится -ИФН (иммунный ИФН), который продуцируется Т-лимфоцитами и лимфобластами.

Стимулами к образованию -ИФН служат антигены и митогены. ИФН обладает противовирусным и выраженным иммуномодулирующим свойством (подавляет пролиферацию клеток и рост опухолей, усиливает функцию макрофагов, ЕКК, способствует экспрессии на клетках антигенов главного комплекса гистосовместимости и Fc-рецепторов, влияет на образование антител и реализацию клеточного иммунного ответа. Все соматические клетки имеют рецепторы для ИФН.

Следует отметить, что данные в отношении цитокинов находятся в процессе интенсивного изучения и уточнения. Процесс цитокиновой регуляции иммуногенеза далеко не так прост и однозначен. В настоящее время достаточно хорошо исследовано более 12 типов интерлейкинов, выполняющих различные иммунорегуляторные функции. Общее число известных интерлейкинов дошло до 23 [Ройт А. и соавт., 2000; Хаитов Р.М. и соавт., 2002]. Существуют способы изучения функции цитокинов, основанные на их способности активировать определенную иммунную реакцию. При этом цитокины получают методом молекулярного клонирования с применением технологии рекомбинантной ДНК (генная инженерия). Интерлейкины получают из супернатантов лимфоцитов, стимулированных ФГА или другими митогенами [Georgiev V.St., Albright J.E.,1993; Kimber I., 1996; Dawson M.M., Moore M., 1998].

ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЕ МЕТОДЫ ОЦЕНКИ

ДОИММУННЫХ МЕХАНИЗМОВ РЕЗИСТЕНТНОСТИ

ОРГАНИЗМА И ИММУННОГО СТАТУСА

2.1. Методы оценки доиммунных механизмов резистентности Интегральное состояние неспецифической резистентности Интегральное состояние неспецифической резистентности организма характеризуется устойчивостью организма к инфекции. Ее можно вызвать внутрибрюшинным или внутриплевральным введением крысам или мышам (только данные животные используются в экспериментальной иммунотоксикологии) суспензии суточной культуры Р. vulgaris, E. coli или других условно-патогенных или патогенных микроорганизмов в различных дозах.

резистентность организма (НРО) летальности крыс или мышей в течение 36 ч от экспериментальной инфекции по среднелетальной дозе (LD50) P.vulgaris или E. coli и среднеэффективному времени жизни животных (Et50) в опытной и контрольной группах, рассчитанных методом пробит-анализа [Беленький М.Л., 1961]. Введение микроорганизмов производят внутрибрюшинно или внутрилегочно одновременно с применением ТХВ или через 6 - 48 ч после них трем группам животных в дозах, составляющих соответственно 1,5; 2,0; 2,5 млрд микробных тел (для P.vulgaris или E. coli). Могут быть использованы и другие микроорганизмы, при этом может осуществляться их введение в легкие интратрахеально или ингаляционно. Описанный метод являтся первичной скрининговой моделью для оценки влияния химических веществ на доиимунные механизмы резистентности организма [Забродский П. Ф., 1987, 1994; Mc Grath J., Wong S., 1987].

НРО определяется несколькими факторами защиты организма, к основным из которых относятся белки острой фазы (С-реактивный протеин, маннансвязывающий лектин, фибриноген, сурфактанты SPA, SP-D) бактерицидная активность сыворотки крови (БАСК), системы комплемента и пропердина, сывороточная активность тромбоцитарного катионного белка - ТКБ (-лизина), лизоцима, интерфероны и фагоцитоз. [Цыбиков Н. Н., 1989; Шмидт Р., Тевс Г., 1996; Хаитов Р.М. и соавт., 2002].

Интегральное состояние неспецифической и иммунологической Интегральное состояние иммунологической резистентности организма определяют по показателям течения экспериментальной инфекции, вызванной внутрибрюшинным или внутриперитонеальным введением мышам или крысам суспензии суточной культуры условно патогенных или патогенных микроорганизмов. Для Е. сoli эта доза составляет 4,0; 6,0; 9,0 млрд микробных тел через 4 сут после иммунизации данными микроорганизмами в дозе 106 микробных тел.

В настоящее время в возникновении различных инфекционных осложнений играеи именно условно-патогенная флора [Забродский П.Ф., 1998].

Антиинфекционную интегральную иммунологическую резистентность организма определяли по летальности крыс в течение 48 ч от экспериментальной инфекции по среднелетальной дозе микробных тел (LD50) и среднеэффективному времени жизни животных (Et50) в опытной и контрольной группах, рассчитанных методом пробит-анализа [Беленький М.Л., 1961]. Введение Е. сoli и Р.vulgaris проводят через различное время (как правило, через 24 ч) после введения ТХВ. Аналогичные инфекционные защитные тесты предлагаются в качестве первичной скрининговой модели для оценки иммунотоксичности химических веществ [Забродский П. Ф., 1987, 1994; Mc Grath J., Wong S., 1987].

Бактерицидная активность сыворотки крови Бактерицидная активность сыворотки крови является интегральным показателем естественной способности крови к самоочищению от микроорганизмов. Бактерицидное действие сыворотки крови распространяется как на грамположительные, так и на грамотрицательные бактерии. БАСК зависит от многих неспецифических факторов защиты организма и является одним из параметров, используемых для изучения влияния химических соединений на организм. Данный показатель служит чувствительным тестом для выявления ранних изменений в организме под влиянием химических веществ [Бухарин О. В. и соавт., 1985]. Это доказано и более поздними исследованиями [Забродский П. Ф., 1998].

В основе существующих методов определения БАСК лежит оценка индекса ее бактерицидности, подсчет и изучение морфологии микробных клеток, а также изменение оптической плотности микробной взвеси до и после контакта с сывороткой [Ремезов А. И., Башмаков Г. А., 1976]. Данный показатель является чувствительным тестом для выявления ранних изменений в организме под влиянием токсических веществ [Бухарин О. В. и соавт., 1985]. Это доказано и более поздними исследованиями [Забродский П. Ф., 1998].

Существуют основания предполагать, что БАСК может определяться пептидными антибиотиками, синтезируемыми организмом животных и человека. Эти антибиотики, действующие на Е.соli, Salmonella typhimurium, Streptococcus pyogenes и другие микроорганизмы, открыты и изучены в начале 90-х годов последнего столетия [Boman H.G., 1995]. Вероятно, ТХВ могут изменять их активность путем прямого или косвенного воздействия.

Бактерицидный эффект сыворотки крови определяют по степени нарастания или угнетения оптической плотности микробносывороточной взвеси в опыте и контроле. В качестве микроорганизмов используется суточная культура E. сoli.

В ускоренном фотонефелометрическом методе определения БАСК по О. В. Бухарину и А. П. Луда (1972) бактерицидный эффект сыворотки крови определяют, используя в качестве микроорганизмов суточную культуру E. сoli. В опытную пробирку с 2,5 мл стерильного бульона Кульбака добавляот 0,5 мл исследуемой нативной сыворотки и 0,1 мл суточной культуры кишечной палочки. В контрольной пробирке вместо сыворотки крови использовался изотонический раствор (0,85%) натрия хлорида (0,5 мл). Расчет БАСК проводили по формуле [Ремезов А.И., Башмаков, 1976].

фотоэлектроколориметре и спектрофотометре. Следует отметить, что данный метод в экспериметальной иммунотоксикологии используется довольно редко в связи с нестабильностью результатов, обязательная строгая синхронизированность проведения манипуляций в опытных и контрольной пробах).

Сывороточная активность лизоцима Содержание сывороточного лизоцима определяют методом О.В.

Бухарина (1971), основанным на способности лизоцима растворять индикаторный микрококк (Micrococcus lysodeicticus), измеряя при этом оптическую плотность опытной и контрольной суспензии микроорганизмов. Взвесь суточной агаровой культуры микрококка на 1/15 М фосфатном буфере (рН 6,2) стандартизировали по левому барабану фотоэлектрокалориметра до оптической плотности 0,66. В опытную пробирку вносили 0,4 мл фосфатного буфера, 0,1 мл исследуемой сыворотки и 2 мл стандартной взвеси микрококка, Смесь выдерживали при 370 С 30 мин, после чего измеряли ее оптическую плотность на ФЭК по правому барабану в кювете №2 с зеленым светофильтром. Для количественной характеристики лизоцима в исследуемой сыворотке с использованием кристаллического лизоцима строили калибровочную кривую, исходя из активности фермента 2, 4, 6, 8, 10, 20, 40, 50 мкг в пробе. Во все пробирки с различным содержанием лизоцима вносили с интервалом 30 с по 2 мл стандартизованной суспензии микрококка. Смесь инкубировали при 37 0С 30 мин, и в каждой пробирке, начиная с первой, измеряли оптическую плотность. Каждое последующее измерение выполняли через 30 с после предыдущего. С помощью калибровочной кривой находили количества лизоцима в исследуемой сыворотке, выраженное в абсолютных единицах. Для удобства расчетов зависимость между оптической плотностью микробной взвеси в опыте и контроле, а также содержанием лизоцима в исследуемой сыворотке использовали таблицу [Ремезов П. И., Башмаков Г. А., 1976].

Определение активности лизоцима проводят в различные сроки после интоксикации химическими веществами.

Тромбоцитарный катионный белок сыворотки крови Метод определения содержания тромбоцитарного катионного белка (ТБК) в сыворотке крови (активности -лизина) основан на избирательной чувствительности к его бактерицидному действию индикаторной культуры - B. subticis. ТБК определяют фотонефелометрическим ускоренным методом по О.В. Бухарину, Б.А.

Фролову и А.П. Луда (1972), учитывая изменение оптической плотности раствора сахарозы при росте в ней индикаторной культуры.

Определение ТКБ проводят в различные сроки после интоксикации ТХВ.

Комлементарная активность сыворотки крови Определение активности комплемента проводят гемолитическим методом по Л.С.Резниковой (1967) путем титрования комплемента по 50% гемолизу. Гемолитическую систему готовили из 3% суспензии эритроцитов барана (ЭБ) с добавлением антител к ЭБ путем смешивания раствора ЭБ с сывороткой кролика, иммунизированного эритроцитами барана. Суспензию ЭБ смешивают с сывороткой в равном объеме. Сыворотку берут в разведении 1:500 от титра, вызывающего гемолиз ЭБ. Гемолитическую систему выдерживают при 37 0С 30 мин для сенсибилизации эритроцитов. Исследуемую нативную сыворотку разводят в 10 раз изототоническим 0,85% раствором натрия хлорида и разливают в 10 пробирок в количестве от 0,05 до 0,5 мл с разницей между объемами 0,05 мл. Сыворотку доводят 1,5 мл изототонического раствора NaCl и во все пробирки добавляют по 1,5 мл сенсибилизированной гемолитической системы.

Пробирки инкубируют при 37 0С 45 мин, охлаждали в холодильнике 10 мин, центрифугировали при 1500 об/мин в течение 10 мин и колориметрируют в фотоэлектрокалориметре в кюветах (3 мм) с зеленым светофильтром против дистиллированной воды. Процент гемолиза вычисляют по формуле [Новикова Л.В. и соавт., 1981].

Определение фагоцитарной активности Один из методов оценки фагоцитарной активности нейтрофилов основан на восстановлении поглощенного фагоцитом растворимого красителя нитросинего тетразолия (НСТ) в нерасворимый диформазан под влиянием супероксиданиона, образующегося в НАДФ-Нокидазной реакции. НСТ-тест, интегрально характеризует кислородзависимые антиинфекционные системы фагоцита Применяется цитохимический вариант этого метода [Измайлова Ф.А., 1985; Park B.H., 1971]. Учет результатов проводится путем подсчета в каждом мазке 100 нейтрофилов, среди которых определяется процент клеток, содержащих отложения диформазана (НСТ - позитивные нейтрофилы).

Кроме того, оценку фагоцитарно-метаболической активности полиморфноядерных лейкоцитов проводят общепринятыми методами [Хаитов Р.М. и соавт., 1995; Сакаева Д.Д., Лазарева, 1998; Белокрылов Г.А., Попова О.Я., 2002].

2.2. Оценка функции стволовых кроветворных клеток Долгое время в качестве стволовых кроветворных клеток (СКК) рассматривали клетки, дающие колонии в селезенке облученных мышей – КОЕс. Однако в последние годы такое предположение было экспериментально опровергнуто. Примитивные СКК (П-СКК) в культуре созревают до стадии КОЕс за 4-6 нед. Несмотря на то что ни КОЕс и ни одна из категорий клеток, способных к колониеобразованию в культуре, не относятся к классу П-СКК [Чертков И.Л. и соавт.,1990], тем не менее, согласно теории клональной саксессии (последовательная смена кроветворных клонов в результате последовательного созревания одной за другой СКК) число КОЕс, мигрировавших из костного мозга (КМ) в селезенку, отражает функциональное состояние клона кроветворных клеток и, следовательно, функции СКК, продуцирующей этот клон. Кроме того, по числу КОЕс можно судить и о функции лимфоидных стволовых клеток, обеспечивающих иммунопоэз [Петров Р.В., Хаитов Р.М., 1981].

До последнего времени в литературе [Забродский П.Ф., 1998] описывают содержание КОЕ в селезенке после летального облучения мышей с экранированием голени, как отражение функции стволовых кроветворных клеток (хотя с учетом вышеизложенного такое изложение требует определенных пояснений). Это, на наш взгляд, допустимо, исходя из гносеологических причин, не позволяющим исследователям в прикладных областях токсикологии, физиологии и т.п. достаточно быстро вникнуть в суть сложных концепций (гипотез) гемопоэза.

Влияние ксенобиотиков на функцию СКК [в более строгой формулировке по И.Л.Черткову (1990) – на функцию КОЕс] проводят путем определения миграции КОЕс из КМ в селезенку методом эндогенного колониеобразования после летального облучения мышей в дозе 8 Гр при экранировании костного мозга задней конечности до уровня 1/2 голени или методом экзогенного клонирования. Возможна оценка числа КОЕс после тотального облучения мышей в дозе 6 Гр.

Через 8 сут селезенку извлекают, фиксируют ее в растворе Боуэна и макроскопически подсчитывают число колониеобразующих единиц (КОЕс) [Петров Р.В., Хаитов Р.М., 1972; Till J. E., Mc Culloch E. A., 1961], используя лупу с увеличением в 2 или 4 раза. ТХВ вводят до облучения, практически одновременно с облучением или после него через 1-2 сут.

2.3. Определение лимфоидного индекса тимуса и селезенки Лимфоидный индекс (ЛИ) тимуса и селезенки характеризует функциональное состояние данных органов системы иммунитета. В тимус из костного мозга мигрируют протимоциты. Клетки, мигрирующие из костного мозга в тимус, называют также стволовыми кроветворными клетками, клетками предшественниками лимфопоэза, лимфоцитами-прекурсорами [Кемилева З., 1984; Галактионов В.Г., 1986; Ройт А., 1991; Хаитов Р.М. и соавт., 2000]. Только один процент тимоцитов мигрирует в периферические лимфоидные органы и принимает участие в иммуногенезе, остальные Т-лимфоциты погибают в тимусе по механизму апоптоза, либо уходят из тимуса живыми и разрушаются в печени, селезенке и кишечнике [Хаитов Р.М. и соавт., 2000]. Более 95% тимоцитов являются Т-лимфоцитами, остальные клетки относятся к лимфобластам, макрофагам, эпителиальным клеткам, тельцам Гассаля, интердигитатным клеткам [Гольдберг Д.И., Гольдберг Е.Д., 1980; Петров Р.В., 1983; Ройт А. и соавт., 2000]. Протимоциты (претимоциты) заселяют кортикальную часть долек вилочковой железы, где пролиферируют, после чего переходят в медуллярную часть, из которой происходит их выход в лимфатические сосуды, путем экстравазации в посткапиллярные венулы или транскапсуллярные артерии [Хаитов Р.М. и соавт., 2000].

Селезенка удаляет из кровотока утратившие функциональную активность эритроциты и лейкоциты, а также образует новые лимфоциты в ответ на попавшие из кровотока чужеродные антигены.

Лимфоциты заселяют селезенку путем миграции из тимуса и костного мозга Т- и В-клеток [Петров Р.В и соавт., 1981а; Петров Р.В., Хаитов Р.М., 1981б; Ройт А., 1991]. Лимфоидный индекс тимуса и селезенки является косвенным показателем содержания ядросодержаших клеток в этом органе, в частности лимфоцитов, в определенной степени он характеризует процессы апоптоза тимоцитов и миграцию их в циркулирующую кровь [Гольдберг Е.Д. и соавт., 1972; Тихонов В.Н., 1981; Александров В.Н., 1983; Беликов В.Г., 2001; Сидельникова Н.М., 2004]. Кроме того, величина лимфоидного индекса тимуса и селезенки прямо коррелирует с антителопродукцией [Забродский П.Ф., 1998, 2002].

общетоксического действия на лимфоидный индекс тимуса и селезенки белых крыс или мышей проводят через 1–8 cут после введения ксенобиотиков. В период от 1 до 2 сут при острых воздействиях ксенобиотиков и экстремальных физических факторов на животных, как правило, происходит максимальное снижение ЛИ тимуса и селезенки [Александров В.Н., 1983; Забродский П.Ф., 1998;

2002; Германчук В.Г., 2000; Descotes J., 1986].

С целью оценки лимфоидного индекса тимуса и селезенки определяют их массу гравиметрическим методом. ЛИ вычисляют общепринятым способом [Гольдберг Е. Д. и соавт., 1972; Тихонов В.

Н., 1981, Германчук В.Г., 2000; Беликов В.Г., 2001], путем деления массы органа (в мг) на массу тела (в г) через 1–7 сут после интоксикации ТХВ. Через 7 сут, даже при действии в больших дозах цитостатиков, данный показатель нормализуется [Гольдберг Е. Д. и соавт., 1972]. Данные параметры являются косвенными критериями оценки состояния иммунной системы и могут отражать ее функциональное состояние в целом [Александров В. Н., Забродский П.Ф., 1998, 2005].

2.4. Оценка содержания лимфоцитов в органах системы Содержание Т-клеток в тимусе крыс или мышей определяют общепринятым методом подсчета ядросодержащих клеток в органе, учитывая, что лимфоциты в вилочковой железе представлены Тпопуляцией на 85-90% [Гольдберг Д. И., Гольдберг Е. Д., 1980;

Петров Р. В., 1987; Ройт А. и соавт, 2000; Хаитов Р. М. и соавт., 2000].

Лимфоциты в селезенке, лимфатических узлах (для изучения берут паховые лимфоузлы) и костном мозге (исследуют клетки костного мозга бедренной кости) подсчитывают, исходя из их относительного содержания в мазках данного органа, окрашенных по Романовскому– Гимзе. Для определения содержания в лимфоидных органах лимфоцитов клеточные суспензии из тимуса, селезенки, костного мозга и паховых лимфоузлов крыс или мышей готовят после действия токсикантов, как правило, через 1-6 cут. Содержание лейкоцитов и лимфоцитов в крови животных под влиянием ТХВ определяют через 1–6 сут общепринятыми методами [Гембицкий Е.В. и совт., 1987]. В более поздние сроки исследование содержания клеток в органах под влиянием острого действия ядов нецелесообразно в связи с практически полным восстановлением их содержания в органах системы иммунитета к 5–6 сут [Забродский П.Ф.,1991].

2.5. Исследование индукции макрофагами гуморального Способность макрофагов к индукции гуморального иммунного ответа оценивают через 4-5 сут по числу АОК к ЭБ у линейных крысреципиентов (или мышей) после введения токсиканта сингенным животным-донорам. Макрофаги от животных-доноров переносят реципиентам через 1 сут после интоксикации. За 1,5 ч до переноса перитонеальных макрофагов в брюшную полость крысам или мышам вводят 2,5·108 ЭБ в 0,1 мл изотонического раствора хлорида натрия [Argyris B.F., 1967].

2.6. Изучение кооперации Т- и В- лимфоцитов Кооперацию Т- и В- лимфоцитов исследуют in vivo и in vitro.

Методы исследования кооперации Т- и В- лимфоцитов in vivo изложены в монографии [Петров Р. В. и соавт., 1981а].

Исследование взаимодействия Т- и В-клеток in vitro включает получение Т-клеток. Для этого используют метод фильтрования селезеночной суспензии линейных мышей через нейлоновую вату (“Нитрон”) [Ширшев С.В., 1998]. Для выделения В-лимфоцитов применяют реакцию комплементзависимого масс-цитолиза. В качестве цитотоксической сыворотки используют моноклональные антитела против антигенов Т-лимфоцитов мыши. Из суспензии спленоцитов макрофаги удаляют методом негативной селекции, используя их способность прилипать к стеклянной поверхности [Ширшев С.В., 1998]. Жизнеспособность клеток оценивают в тесте с трипановым синим (она должна составлять 90-98%). Инкубируемая по методу J. K. Thomas, T. Imamura [1986] культура содержит 106 и 5· В- и Т-клеток соответственно и 107 эритроцитов барана в 0,15 мл среды Хенкса. Антителообразующие клетки (АОК) подсчитывают в инкубационных камерах через 4 сут [Thomas J. K., Imamura T., 1986].

Данный тест отражает синтез IgM В-клетками селезенки при участии Т-хелперов типа 1 (Тh1-лимфоцитов). Роль Т- и В-лимфоцитов в обеспечение антителопродукции определяют также путем сравнения числа АОК после инкубации той или иной популяции лимфоцитов в течение 1–4 ч с различными концентрациями ТХВ (109 – 101 М ).

2.7. Оценка гуморальных иммунных реакций Для оценки гуморальных иммунных реакций в качестве антигенов применяли эритроциты барана (ЭБ) и брюшнотифозный Vi-антиген (Vi-Ag).

Использование данных антигенов позволяет рассмотреть влияние токсикантов на Т-зависимый (ЭБ) или Т-независимый (Vi-Ag) иммунный ответ в сравнительном аспекте, а также оценить роль Тхелперов в реализации гуморального звена иммунного ответа [Утешев Б. С., 1984; Descotes J.,1986]. Данный подход широко используется для оценки действия химических соединений на систему иммунитета [Плецитый К. Д., 1985; Ройт А, 1991; Забродский П.Ф., 2000, 2006].

Исследование показателей Т-зависимого гуморального иммунного ответа проводят через 5, 8 и 13 сутoк (могут быть выбраны и другие сроки исследования) после острой интоксикации. Иммунизацию эритроцитами барана проводили путем их внутрибрюшинного введения в дозе 2·108 клеток в 0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия. Титры антител к ЭБ определяли в реакции гемолиза эритроцитов в присутствии комплемента. Все реакции проводились на стерильных пластиковых микропланшетах. Гуморальный иммунный ответ оценивают по отрицательному двоичному логарифму титра антител (ОДЛТА). Данный тест отражает способность органов системы иммунитета синтезировать IgM через 5 сут и IgG (преимущественно) через 8–14 сут [Ройт А., 1991; Casale G.P. et al., 1983]. Максимальный синтез IgG к ЭБ происходит через 14 сут после иммунизации.

Гуморальную иммунную реакцию к Т-зависимому и Тнезависимому антигенам чаще всего оценивают через 4–5 суток после иммунизации по числу АОК в селезенке [Белокрылов Г. А. и соавт., 1980; Jerne N. K., Nordin A. A., 1963] после введения ТХВ с внутрибрюшинной иммунизацией крыс ЭБ в дозе 2·108 клеток в 0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия и Vi-Ag в дозе 8 мкг/кг (использованный тест отражает синтез IgM B-клетками селезенки).

АОК, характеризующие продукцию IgG, определяют в селезенке методом непрямого локального гемолиза в геле [Jerne N. K., Nordin A.

A., 1963; Dresser D.W., Wortis H.H., 1965]. Данные литературы позволяют полагать, что данный метод характеризует преимущественно функцию Th2-лимфоцитов, так как Th1-лимфоциты обеспечивают возможность образования в этот период антителогенеза, кроме IgM, также и IgG2а, составляющих не более 20% от всех подклассов IgG [Ройт А. и савт., 2000].

Введение ТХВ проводят практически одновременно с иммунизацией. Кроме того, при исследовании Т-зависимого антителообразования по числу АОК в селезенке ксенобиотики вводят через 1 и 3 сут после иммунизации. При этом одновременное введение токсикантов с ЭБ и через 1 сут после иммунизации позволяет оценить индуктивную фазу гуморального иммунного ответа, а через 3 сут – продуктивную [Забродский П.Ф. и соавт., 2005; Deskotes J., 1986].

2.8. Оценка клеточных иммунных реакций Исследование функции Т-лимфоцитов Исследование функции Т-лимфоцитов проводят по реакции торморжения миграции лейкоцитов (РТМЛ) периферической крови в присутствии конконавалина А (КонА) или фитогемагглютинина (ФГА). Это один из очень простых, но достаточно информативных тестов. РТМЛ основана на способности сенсибилизированнных Тлимфоцитов в реакциях с антигеном или митогенами (ФГА, КонА) in vitro выделять биологически активные субстанции – лимфокины, в том числе фактор, ингибирующий миграцию лейкоцитов (один из лимфокинов воспаления) [Фримель Х., Брок Й., 1986].

Для исследования РТМЛ кровь у крыс или мышей забирают из подъязычной вены через 1–6 сут после введения исследуемых ксенобиотиков. В капилляры для определения С-реактивного белка набирают с часового стекла смесь, состоящую из гепаринизированной крови (0,2 мл) исследуемых крыс или мыщей (опыт и контроль) и раствора КонА (0,5 мл). Концентрация митогена в растворе должна составлять 10-100 мкг/мл. Капилляры запаивают с одного конца парафином и центрифугируют 5 мин при 1500 об/мин, затем в вертикальном положении их инкубируют 24 ч в термостате при температуре 37 0С. Учет реакции проводят путем измерения длины зоны миграции основной массы лейкоцитов от границы эритроцитарного осадка в контроле и опыте [Гембицкий Е.В. и соавт., 1987]. Величина миграции лейкоцитов обратно пропорциональна активности Т-клеток.

Изучение формирования гиперчувствительности замедленного Для оценки влияния ксенобиотиков на формирование реакции гиперчувствительности замедленного типа (ГЗТ) у крыс или мышей используют модель данной реакции, в которой не применяется перенос сингенных иммуноцитов, и адоптивные модели (связанные с переносом клеток; to adopt –принимать, усваивать, присваивать). ГЗТ оценивают после иммунизации внутривенным введением 2· эритроцитов барана (ЭБ) в 0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия одновременно с применением ксенобиотиков. Разрешающую (вызывающую реакцию) дозу ЭБ (5·108 в 0,05 мл изотонического раствора хлорида натрия) вводят под апоневроз задней лапы крысы через 4 сут после иммунизации. Оценку реакции осуществляют через 24 ч (можно проводить оценку через 6 – 48 ч) по приросту массы стопы задней лапы крыс по сравнению с контрольной – контрлатеральной [Брюхин Г.В. и соавт.,1990]. Ксенобиотики вводят одновременно с иммунизацией или через 1–4 после нее. Данный тест отражает функцию Th1-лимфоцитов и способность их к продукции TGF, ИЛ-3, -интерферона, ИЛ-12, -фактора некроза опухоли лимфотоксина и гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (ГМ-КСФ) [Georgiev V.St., Albright J.E., 1993; Ройт А. и соавт., 2002].

Локальную адоптивную ГЗТ оценивают у линейных крысреципиентов (мышей) после введения им под апоневроз стопы смеси ЭБ (5·108) и спленоцитов (4·108) от сингенных интактных животных (отрицательный контроль), животных, иммунизированных 108 ЭБ (положительный контроль) и спленоцитов крыс или мышей, получавших ксенобиотик (опытная серия). Селезенку для получения клеток извлекают у доноров через 4 сут после иммунизации. Опытной группе за 1 сут до извлечения селезенки вводят ксенобиотик (опытная серия). Суспензию спленоцитов готовят на среде № 199.

При исследовании формирования ГЗТ у линейных крысреципиентов (мышей) после переноса им спленоцитов (5·108) от иммунизированных 108 ЭБ сингенных доноров, реципиентов через 1 ч сенсибилизируют внутривенным введением 108 ЭБ. Через 4 сут под апоневроз стопы реципиентов вводят разрешающую дозу ЭБ (5·108) с последующей оценкой реакции через 24 ч. Спленоциты получают через 5 сут после иммунизации доноров. Ксенобиотик вводят реципиентам через 30 мин после иммунизации. В данном эксперименте формирование ГЗТ отражало влияние ксенобиотика на вторичный иммунный ответ в модели адоптивной реакции, связанной с переносом иммунных спленоцитов животным-реципиентам Исследование формирования ГЗТ у крыс при переносе супрессорных клеток проводят аналогично описанному опыту.

Влияние ТХВ на формирование спленоцитов-супрессоров исследуют путем практически одновременного введения токсиканта и ЭБ в толерогенной дозе (вызывающей значительное снижение или полное отсутствие иммунной реакции на антиген) крысам-донорам [Фролов и соавт., 1985; Забродский П.Ф., Мышкина А.К., 1990; Германчук В.Г, 2000].

Исследование активности естественных клеток-киллеров Оценку активности естественных клеток-киллеров проводят по показателю естественной цитотоксичности (ЕЦ) спектрометрическим (нерадиометрическим) методом Гордиенко С. М., 1983, 1984], где клетками-эффекторами служили спленоциты крыс, а клеткамимишенями – эритроциты кур (ЭК) [Белокрылов Г. А. и соавт., 1980].

Очищенную взвесь лимфоцитов получают, удаляя прилипающие клетки инкубацией в колонках с нейлоновой ватой. Эффекторные клетки взвешивают в концентрации 107 клеток в 1 мл питательной среды следующего состава: среда № 199 с добавлением до 10% истощенной ЭК эмбриональной телячьей сыворотки, L-глютамина (300 мкг/мл), стрептомицина (100 мкг/мл) и пенициллина (100 Ед/мл).

В ходе опыта обеспечивали соотношение эффектор - мишень 10:1, при этом концентрация клеток-мишеней (ЭК) составляла 106 в 1 мл питательной среды. Цитотоксический тест ставят в пластиковых камерах «Linbro» (76-013-05) с круглым дном. Результаты реакции учитывают по спектрофотометрическому определению концентрации гемоглобина, выделившегося из неразрушенных ЭК. В опытные лунки добавляли по 0,1 мл взвеси эффекторных клеток и по 0,1 мл взвеси ЭК. Проводят 3 контроля: эффекторные клетки в питательной среде без ЭК; питательная среда; взвесь ЭК в питательной среде без эффекторов. В конце инкубации содержимое лунок осторожно ресуспендируют и камеры центрифугировали 5 мин при 100g. 0,2 мл надосадка переносят в другие свободные ряды микропластины, а к осадку приливают 0,2 мл 0,25% раствора додецилсульфата натрия (ДСН) для лизиса ЭК, оставшихся неразрушенными в ходе цитотоксической реакции. Оптическую плотность осадков измеряют в специально изготовленных микрокюветах с длиной оптического пути 1 см и объемом 0,1 мл на спектрофотометре при длине волны 413 нм.

Определяли количество гемоглобина, выделившегося из неразрушенных ЕКК ЭК, путем лизиса осадка 0,25% ДСН. Индекс цитотоксичности (ИЦ) определяли по формуле:

где Ек - оптическая плотность лизированного осадка ЭК контроль ной пробы без эффекторов против лизирующего раствора;

Ео - оптическая плотность лизированных оставшихся в осадке опытной пробы неразрушенных ЭК против лизированного Естественную цитотоксичность in vitro определяют спектрофотометрически описанным методом после инкубации клетокэффекторов, получаемых из спленоцитов крыс, в течение 4 ч в среде 199 с содержанием токсикантов в концентрациях 1, 10, 100 и 1000 мМ.

В ходе опыта обеспечивается соотношение эффектор-мишень 10: (или 25:1, 50:1). Результаты реакции учитывают по спектрофотометрическому определению концентрации гемоглобина, выделившегося из неразрушенных ЭК.

Кроме того, существует радиометрический метод оценки активности ЕКК с использованием 51Cr. Результат учитывают по высвобождению 51Cr из меченых клеток определенных опухолей [Ройт А. и соавт., 2000] Исследование антителозависимой клеточной цитотоксичности В настоящее время доказано, что К-клетки, реализующие антителозависимую клеточную цитотоксичность (АЗКЦ), – это ЕКК, использующие для усиления реакции антитела (IgG) [Ройт А., 1991;

Хаитов Р. М. и соавт., 2002]) Антителозависимую клеточную цитотоксичность определяют спектрофотометрически по методу Ю.

И. Зимина, В. Ф. Ляхова (1985), через 5 сут после иммунизации эритроцитами барана (или без иммунизации), через различные сроки после введения ксенобиотика. Животных иммунизируют ЭБ (5· клеток в 0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия внутрибрюшинно или внутривенно). АЗКЦ оценивают в различных органах системы иммунитета через 5 сут после иммунизации.

Существует и радиометрический метод оценки АЗКЦ с использованием 51Cr. Результат учитывают по высвобождению 51Cr из меченых клеток определенных опухолей [Ройт А. и соавт., 2000].



Pages:     || 2 |


Похожие работы:

«К.В. Давыдов АДМИНИСТРАТИВНЫЕ РЕГЛАМЕНТЫ ФЕДЕРАЛЬНЫХ ОРГАНОВ ИСПОЛНИТЕЛЬНОЙ ВЛАСТИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ: ВОПРОСЫ ТЕОРИИ Монография nota bene ББК 67 Д 13 Научный редактор: Ю.Н. Старилов доктор юридических наук, профессор, заслуженный деятель науки Российской Федерации, заведующий кафедрой административного и муниципального права Воронежского государственного университета. Рецензенты: Б.В. Россинский доктор юридических наук, профессор, заслуженный юрист Российской Федерации, действительный член...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования ПЕРМСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ НАЦИОНАЛЬНЫЙ ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ М. В. Мырзина, К. В. Новикова РАЗВИТИЕ ОРГАНИЗАЦИОННО-ЭКОНОМИЧЕСКОГО МЕХАНИЗМА РЕГУЛИРОВАНИЯ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННЫХ УГОДИЙ РЕГИОНА МОНОГРАФИЯ Пермь 2013 УДК 338.43:[332.3 : 332.7] : 631.1 ББК65.32 – 5 : 65. М Мырзина М. В. М 94 Развитие...»

«РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ ЕСТЕСТВЕННЫХ НАУК НАУЧНЫЙ ЦЕНТР ПЛАНЕТАРНЫЙ ПРОЕКТ В.В.Смирнов, А.В.Безгодов ПЛАНЕТАРНЫЙ ПРОЕКТ: ОТ ИДЕИ К НАУЧНОМУ ОБОСНОВАНИЮ (О РЕЗУЛЬТАТАХ ДЕЯТЕЛЬНОСТИ НЦ ПЛАНЕТАРНЫЙ ПРОЕКТ В 2006/2007 ГГ.) САНКТ-ПЕТЕРБУРГ 2007 УДК 338 ББК 65.23 С 50 Рецензенты: Сизова Ирина Юрьевна доктор экономических наук, профессор Романчин Вячеслав Иванович доктор экономических наук, профессор С 50 Планетарный проект: от идеи к научному обоснованию (о результатах деятельности НЦ Планетарный проект...»

«356 Раздел 5. ПУБЛИКАЦИЯ ИСТОЧНИКОВ А. В. Шаманаев УДК 902/904 ДОКУМЕНТЫ О ПРЕДОТВРАЩЕНИИ ХИЩЕНИЙ КУЛЬТУРНЫХ ЦЕННОСТЕЙ НА ХЕРСОНЕССКОМ ГОРОДИЩЕ ВО ВТОРОЙ ПОЛОВИНЕ XIX в. Исследуется проблема предотвращения хищений культурных ценностей и актов вандализма на территории Херсонесского городища (Крым, Севастополь). Публикуется семь документов 1857—1880 гг. из фондов ГАГС, которые характеризуют деятельность Одесского общества истории и древностей, монастыря Св. Владимира и военных властей по созданию...»

«ББК 74.5 УДК 0008:37 С 40 Системогенетика, 94/ Под редакцией Н.Н. Александрова и А.И. Субетто. – Москва: Изд-во Академии Тринитаризма, 2011. – 233 с. Книга подготовлена по итогам Первой Международной коференции Системогенетика и учение о цикличности развития. Их приложение в сфере образования и общественного интеллекта, состоявшейся в г. Тольятти в 1994 году. Она состоит из двух разделов. Первый раздел представляет собой сборник статей по системогенетике и теории цикличности развития,...»

«В.И. Барсуков АТОМНЫЙ СПЕКТРАЛЬНЫЙ АНАЛИЗ МОСКВА ИЗДАТЕЛЬСТВО МАШИНОСТРОЕНИЕ-1 2005 В.И. Барсуков АТОМНЫЙ СПЕКТРАЛЬНЫЙ АНАЛИЗ МОСКВА ИЗДАТЕЛЬСТВО МАШИНОСТРОЕНИЕ-1 2005 УДК 543.42 ББК 344 Б26 Р е ц е н з е н т ы: Доктор химических наук, профессор В.И. Вигдорович Доктор химических наук, профессор А.А. Пупышев Кандидат физико-математических наук В.Б. Белянин Барсуков В.И. Б26 Атомный спектральный анализ. М.: Издательство Машиностроение-1, 2005. 132 с. Рассмотрены теоретические основы оптической...»

«К а к и м о в А.К М ЕХ А Н И Ч ЕС К А Я О БРАБО ТКА И ТЕХН О ЛО ГИ Я КО М БИ Н И РО ВАН Н Ы Х М Я С Н Ы Х П РО ДУКТО В Какимов А.К. М Е Х А Н И Ч Е С КА Я О БРАБО ТКА И ТЕХН О ЛО ГИ Я КО М Б И Н И Р О В А Н Н Ы Х М Я С Н Ы Х ПРО ДУКТО В Р е с п у б л и к а Казахстан С е м и п а л а ти н ск, 2006 У Д К 6 3 7.5.0 7 : 6 37.5.03 : 6 3 7.5 14.7 ББК 36.92 К 16 Ре цензенты : д о к то р т е хн и ч е с к и х н а у к, проф ессор Б.А. Рскелд иев д октор техн и чески х н аук, п р о ф е ссо р Д. Ж...»

«Федеральное агентство по образованию Омский государственный институт сервиса Кафедра прикладной математики и информатики ИНФОРМАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ И СИТУАЦИОННЫЕ ЦЕНТРЫ Омск 2010 УДК 681.3.004.8 ББК 32.81 И 972 Научный редактор – д-р. техн. наук профессор В. А. Филимонов Омский филиал Института математики СО РАН Рецензент: д-р. физ.-мат. наук профессор А. К. Гуц Омский государственный университет ИНФОРМАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ И СИТУАЦИОННЫЕ ЦЕНТРЫ: / Анисимов О. С., Берс А. А., Дубенский Ю. П. и...»

«Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания Сибирского отделения РАМН Амурская государственная медицинская академия Т.С. Быстрицкая, М.Т. Луценко, Д.С. Лысяк, В.П. Колосов ПЛАЦЕНТАРНАЯ НЕДОСТАТОЧНОСТЬ Благовещенск 2010 ББК 57.16 Утверждено к печати УДК 618.36-036.12 ученым советом ДНЦ ФПД СО РАМН Б 95 Быстрицкая Т.С., Луценко В.П., Лысяк Д.С., Колосов В.П. Плацентарная недостаточность. – Благовещенск, 2010. – 136 с. Монография посвящена одной из актуальных проблем акушерства –...»

«Министерство образования и науки Российской Федерации Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Тюменский государственный нефтегазовый университет Научно-исследовательский институт прикладной этики _ В. И. Бакштановский ПРИКЛАДНАЯ ЭТИКА: инновационный курс для магистр(ант)ов и профессоров Часть 1 Тюмень ТюмГНГУ 2011 УДК 17 ББК 87.75 Б 19 Рецензенты: доктор философских наук, профессор, академик, директор Института философии РАН А. А....»

«Министерство образования и науки Российской Федерации Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего профессионального образования Северный (Арктический) федеральный университет М.И. Козлов СОЦИАЛЬНАЯ СПРАВЕДЛИВОСТЬ В КОНТЕКСТЕ РУССКОЙ ТРАДИЦИИ Монография Архангельск 2010 УДК 364.614.8 ББК 60.027.7 К 59 Рецензенты: доктор философских наук, профессор Северного (Арктического) федерального университета В.А. Колосов; кандидат философских наук, доцент Северного...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ МОСКОВСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ УНИВЕРСТИТЕТ ЭКОНОМИКИ, СТАТИСТИКИ И ИНФОРМАТИКИ (МЭСИ) КАФЕДРА УПРАВЛЕНИЯ ЧЕЛОВЕЧЕСКИМИ РЕСУРСАМИ КОЛЛЕКТИВНАЯ МОНОГРАФИЯ ИННОВАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ УПРАВЛЕНИЯ ЧЕЛОВЕЧЕСКИМИ РЕСУРСАМИ Москва, 2012 1 УДК 65.014 ББК 65.290-2 И 665 ИННОВАЦИОННЫЕ ТЕХНОЛОГИИ УПРАВЛЕНИЯ ЧЕЛОВЕЧЕСКИМИ РЕСУРСАМИ: коллективная монография / Под редакцией к.э.н. А.А. Корсаковой, д.с.н. Е.С. Яхонтовой. – М.: МЭСИ, 2012. – С. 230. В книге...»

«Санкт-Петербургский университет управления и экономики Национальный исследовательский Иркутский государственный технический университет Н. М. Пожитной, В. М. Хромешкин Основы теории отдыха САНКТ-ПЕТЕРБУРГСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ УПРАВЛЕНИЯ И ЭКОНОМИКИ НАЦИОНАЛЬНЫЙ ИССЛЕДОВАТЕЛЬСКИЙ ИРКУТСКИЙ ГОСУДАРСТВЕННЫЙ ТЕХНИЧЕСКИЙ УНИВЕРСИТЕТ Н. М. Пожитной, В. М. Хромешкин ОСНОВЫ ТЕОРИИ ОТДЫХА Монография Под общей редакцией доктора экономических наук, профессора, заслуженного деятеля науки РФ А. И. Добрынина...»

«.. -. URL: http://www.molgvardia.ru/nextday/2008/10/10/2143?page=26;. URL: http://www.extremeview.ru/index/id/26305 Северный (Арктический) федеральный университет Northern (Arctic) Federal University Ю.Ф. Лукин ВЕЛИКИЙ ПЕРЕДЕЛ АРКТИКИ Архангельск 2010 УДК [323.174+332.1+913](985)20 ББК 66.3(235.1)+66.033.12+65.049(235.1)+26.829(00) Л 841 Рецензенты: В.И. Голдин, доктор исторических наук, профессор; Ю.В. Кудряшов, доктор исторических наук, профессор; А.В. Сметанин, доктор экономических наук,...»

«МИНИСТЕРСТВО ОБРАЗОВАНИЯ И НАУКИ РОССИЙСКОЙ ФЕДЕРАЦИИ А.Ф. Степанищев, Д.М. Кошлаков НАУЧНАЯ РАЦИОНАЛЬНОСТЬ: ПРЕДЕЛЫ ПЕРЕПУТЬЯ Брянск Издательство БГТУ 2011 ББК 87 С 79 Степанищев, А.Ф. Научная рациональность: Пределы перепутья: [Текст] + [Электронный ресурс]: монография / А.Ф. Степанищев, Д.М. Кошлаков. – Брянск: БГТУ, 2011. – 239 с. ISBN 978-5-89838-517-0 Рассмотрены проявления проблемы перепутья научной рациональности и наблюдающиеся в условиях постнеклассического знания тенденции к ее...»

«Дальневосточный Институт Управления СОЦИАЛЬНЫЙ ПОТЕНЦИАЛ МОЛОДЫХ СЕМЕЙ КАК ФАКТОР РАЗВИТИЯ РЕГИОНА МОНОГРАФИЯ Хабаровск - 2013 2 ББК 60.542.15 УДК 316.346.32–053.6 С 692 Рецензенты: Тюрина Ю.А., доктор социологических наук, доцент, директор института экономики ФГБОУ ВПО Дальневосточный государственный университет путей сообщения Фарафонова Л.Н., кандидат педагогических наук, доцент ФГБОУ ВПО Дальневосточный государственный гуманитарный университет Авторский коллектив Байков Н.М., д.с.н.,...»

«333С Г 34 Генералова Светлана Владимировна. Механизм создания и оценка эффективности микроэкономических инновационных систем на сельскохозяйственных предприятиях: монография / С. В. Генералова, В. А. Щербаков, А. И. Рябова. - Саратов: ФГБОУ ВПО Саратовский ГАУ, 2013. - 102 с. ISBN 978-5-904832-30-8 УДК 333С Аннотация: В монографии разработан механизм создания и функционирования микроэкономических инновационных систем в сельском хозяйстве России. Разработаны современные модели микроэкономических...»

«RUSSIAN ACADEMY OF SCIENCES FAR EASTERN BRANCH North-East Scientific Center Institute of Biological Problems of the North I.A. Chereshnev FRESHWATER FISHES OF CHUKOTKA Magadan 2008 РОССИЙСКАЯ АКАДЕМИЯ НАУК ДАЛЬНЕВОСТОЧНОЕ ОТДЕЛЕНИЕ Северо-Восточный научный центр Институт биологических проблем Севера И.А. Черешнев ПРЕСНОВОДНЫЕ РЫБЫ ЧУКОТКИ Магадан 2008 УДК 597.08.591.9 ББК Черешнев И.А. Пресноводные рыбы Чукотки. – Магадан: СВНЦ ДВО РАН, 2008. - 324 с. В монографии впервые полностью описана...»

«1 Степанов А.А., Савина М.В., Губин В.В., Степанов И.А. СОЦИАЛЬНО-ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ТРАНСФОРМАЦИЯ СИСТЕМЫ ПОТРЕБИТЕЛЬСКОЙ КООПЕРАЦИИ И ПРОБЛЕМЫ ЕЕ РАЗВИТИЯ НА ЭТАПЕ СТАНОВЛЕНИЯ ПОСТИНДУСТРИАЛЬНОЙ ЭКОНОМИКИ Монография Москва 2013 2 Степанов А.А., Савина М.В., Губин В.В., Степанов И.А. СОЦИАЛЬНО-ЭКОНОМИЧЕСКАЯ ТРАНСФОРМАЦИЯ СИСТЕМЫ ПОТРЕБИТЕЛЬСКОЙ КООПЕРАЦИИ И ПРОБЛЕМЫ ЕЕ РАЗВИТИЯ НА ЭТАПЕ СТАНОВЛЕНИЯ...»

«Центр проблемного анализа и государственноуправленческого проектирования Правовое противодействие расовой, национальной, религиозной дискриминации Москва Научный эксперт 2009 УДК 341.215.4 ББК 67.412.1 П 89 Авторский коллектив: В.И. Якунин, С.С. Сулакшин, В.Э. Багдасарян, А.В. Бутко, М.В. Вилисов, И.Ю. Колесник, О.В. Куропаткина, И.Б. Орлов, Е.С. Сазонова, А.Ю. Ярутич Правовое противодействие расовой, национальной, религиозной П 89 дискриминации. Монография — М.: Научный эксперт, 2009. — 224 с....»






 
2014 www.av.disus.ru - «Бесплатная электронная библиотека - Авторефераты, Диссертации, Монографии, Программы»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.