«Учебно-методический комплекс дисциплины для студента (УМКДС) Дисциплина: PVP 41318 ПЕРВИЧНАЯ ВЕТЕРИНАРНАЯ ПОМОЩЬ Специальность 5В120200 – ВЕТЕРИНАРНАЯ САНИТАРИЯ дневное Алматы 2013 Автор: Махмутов А.К. кандидат ...»

КАЗАХСКИЙ НАЦИОНАЛЬНЫЙ АГРАРНЫЙ УНИВЕРСИТЕТ

Факультет ветеринарии

Кафедра акушерства, хирургии и

биотехнологии размножения

Учебно-методический комплекс дисциплины для

студента (УМКДС)

Дисциплина:

PVP 41318 «ПЕРВИЧНАЯ ВЕТЕРИНАРНАЯ ПОМОЩЬ»

Специальность 5В120200 – ВЕТЕРИНАРНАЯ САНИТАРИЯ

дневное Алматы 2013 Автор: Махмутов А.К. кандидат ветеринарных наук Учебно-методический комплекс дисциплины для студента составлен на основе УМКД «Первичная ветеринарная помощь» для специальности 5В120200 – «Ветеринарная санитария»

Утверждено методической комиссией ветеринарного факультета от «23» апреля 2013 г № 6 КазНАУ ОУМР. Регистрационный номер №798 13.05.2013г.

© Изд. «Айтмар»,

СОДЕРЖАНИЕ

Стр.

ВВЕДЕНИЕ

Программа обучения для студента (Syllabus)

График выполнения и сдачи заданий по дисциплине

ЛЕКЦИОННЫЙ КОМПЛЕКС (10 Лекции)

Методические указания для проведения лабораторных занятий............. Методические указания для проведения практического занятие........... Материалы для самостоятельной работы студентов (задачи).................. Темы для самостоятельной работы студентов (СРС)

Вопросы 1– го коллоквиума по дисциплине

Вопросы 2– го коллоквиума по дисциплине

Вопросы промежуточной аттестации(экзамен)

Список литературы

ВВЕДЕНИЕ

Первичная ветеринарная помощь – это дисциплина, обеспечивающая профессиональную подготовку ветеринарных врачей, санитаров, работников животноводства. Изучает правила и способы своевременного оказания первой помощи животным, с различной патологией. Дисциплина дает знания по реанимации и проведению экстренной ветеринарной помощи животным.

Данный предмет включает изучение способов, техники фиксации различных видов животных, основах асептики, антисептики, анестезиологии, десмургии, способах применения лекарственных веществ, оказание первичной помощи при различных травмах, отравлениях, остановке кровотечения, акушерских болезнях, гельминтозах, в зависимости от состояния, вида, пола и возраста животного.

Предмет охватывает наиболее часто встречающиеся в условиях хозяйств патологии животных. Так, например оказание первой помощи при ушибах, кровотечениях, асфиксии, остановке дыхания, сердца, переломах, вывихах, растяжениях, шоке, коллапсе, обмороке, ожогах, обморожениях и других патологиях.

Целью дисциплины является обеспечение студента теоретическими знаниями, практическими навыками, которые дали бы возможность оказать качественную первичную ветеринарную помощь животным.

Задачей данной дисциплины дать наиболее общие знания по оказанию первичной ветеринарной помощи животным, вызванной травматизмом, неправильной эксплуатацией животных, специфической инфекцией, незаразными, паразитарными и инфекционными болезнями с учетом требований кредитной технологии.

Дисциплина логически связана с не менее важными дисциплинами, как микробиология, физиология, акушерство и гинекология, незаразные болезни, эпизоотология, паразитология.

АVK 41318«Первичная ветеринарная помощь» на 2012– 2013 учебный год 1. Основная информация о модуле Специальность 5В120200– ветеринарная санитария Код дисциплины AVK кредитов Место проведения занятий Корпус №11, аудитория №23 (большой хирургич.

Преподаватели, ведущие Ст.преподавательАбдулла А.А.

лабораторное и практическое Офис: кафедра «Ветеринарного акушерства, хирургии 2. Пререквизиты и постреквизиты Пререквизиты: морфология, физиология, биохимия, фармакология, патология, микробиология и вирусология.

Постреквизиты: специализации в области ветеринарной таможенной экспертизы, ветеринарно– санитарный контроль на границе и на транспорте 3. Цели и задачи дисциплины Цель: Обеспечение студента теоретическими знаниями, практическими навыками, которые дали бы возможность оказать качественную первичную ветеринарную помощь животным при различных патологиях.

Задачи: Дать наиболее общие знания по оказанию первичной вет. помощиживотным, вызванной травматизмом, неправильной эксплуатацией животных, специфической инфекцией, незаразными, паразитарными и инфекционными болезнями.

4. Общие затраты рабочего времени студента за 2 кредита – 50 мин./зан. 100 мин./зан. 50 мин./зан.

5. Содержание дисциплины Состоит из разделов:

Введение, Организация ПВП, асептика и антисептика, анестезиология, десмургия, способы применения лекарственных веществ, общие вопросы реаниматологии, кровотечения и их остановка, ПВП при острых хирургических инфекциях и патологиях, травматизм животных, раны, ПВП при патологии незаразной этиологии, ПВП при острых инфекционных и паразитарных болезнях.

6. Политика курса При изучение следует освоить теоретический и практический курс дисциплины.

Для освоения необходимо пройти текущий контроль и сдать экзамен. Текущий контроль состоит из аудиторной и внеаудиторной работы студента, по которому необходимо набрать не менее 50% баллов из 140 баллов для допуска на экзамен. Сдача коллоквиумов, реферата и защита курсовой работы является обязательным. Коллоквиум принимается устно, письменно с практическими вопросами.

Посещение занятий обязательно, опоздавшие студенты на занятия не допускаются.

Пропущенные занятия отрабатываются студентом своевременно в период дежурства преподавателей. Сдача лабораторных занятий обязательна. Студенты являющиеся членами научного кружка имеют льготные преимущества.

Студент, не посетивший 60% занятий, к отработкам занятий не допускается.

Экзамен проводится устно, с представлением практических вопросов. Для сдачи экзамена необходимо набрать 50% баллов из 30 баллов. Пересдача экзамена нету.

7. Литература (основная и дополнительная) Основная литературы 1. Магда И.И.и др., Оперативная хирургия. М,1990.

2. Уша В.В., Фельдштейн М.А Первичная ветеринарная помощь при Незаразных болезнях животных. М., 3. Шарабин И.Г. и др. Внутренние незаразные болезни животных М., 4. Шипилов В.П. и др. Ветеринарное акушерство и гинекология, М, 1986.

5. Ершов П.А. и др. Паразитология, М, Дополнительная литература 1. Белов А.Д. и др. Общая ветеринарная хирургия, М., 1990.

2. К.И. Шакалов Частная ветеринарная хирургия, М: 3.И.А. Калашников Практикум по общей и частной ветеринарной Хирургии, М: 8. Рейтинговые баллы (подтверждение успеваемости) *Всего за рубежный контроль (кол– во зависит от кол– ва кредитов), в т ч.: 9. Промежуточная аттестация 17 неделя Устно количество вопросов 5 График выполнения и сдачи заданий по дисциплине (семинар.)занятия Активность На каждом занятии – 0, аудиторных занятий Виды работы График (недели) Распределение баллов Всего Промежуточная Срок, форма – 16 неделя, устный, 4 вопросов (экзамен)

ЛЕКЦИОННЫЙ КОМПЛЕКС

Цель лекции: Познакомить студентов с дисциплиной. Обеспечение студента теоретическими знаниями, практическими навыками, которые дали бы возможность оказать качественную первичную ветеринарную помощь животным.

Ключевые слова: Хирургия, асептика, антисептика, Хирургическая инфекция План лекции:

1 История развития дисциплины первичная ветеринарная помощь.

2 Организация первичной ветеринарной помощи.

3 Понятие о асептике и антисептике 1. История развития дисциплины первичная ветеринарная помощь.

Первая ветеринарная помощь может проводиться как ветеринарными специалистами так и при неотложных случаях специально подготовленные и обученные к этому рабочие ухаживающие за животными.

Ранней ветеринарной помощью являются мероприятия, оказанные в течение первых двух суток с момента получения повреждения или возникновения болезни.

Отсроченной ветеринарной помощью называется лечение, оказанное в течение от 7 до 14 суток с начала болезни, если до этого не было оказано.

Поздняя ветеринарная помощь, которая оказана в позже 14 дней после заболевания животного в тех случаях когда своевременное лечение не было проведено. При оказании этой помощи проводят все необходимые лечебные манипуляции, вправление вывихов, вскрытие абсцесса или флегмоны, лечение запущенных форм пневмонии, гастроэнтеритов, аллергические и др.

болезни.

Специализированную первую ветеринарную помощь оказывают в ветеринарных клиниках и пунктах ветврачи высокой квалификации. Больное животное выводят из шока, коллапса или другого тяжелого состояния проведением специализированных методов лечения, проводят экстренные операции, внутривенные инфузии растворов, крови или кровезамещающих жидкостей и т.д.

Для оказания первичной лечебной помощи необходимо первоначально поставить предварительный диагноз, которое является кратким заключением сущности болезни. Поставка диагноза осуществляется на основе установленных клинических, функциональных, морфологических и других видимых изменении у больного животного, которое помогает распознать характер болезненного процесса, определить причину его возникновения.

«Ветеринарным законом», в котором четко определено, что ветеринарный специалист любой квалификации, обязан оказать больному животному ветеринарную помощь в любое время суток и при любых обстоятельствах.

Отказ от оказания ветеринарной помощи или всякое другое уклонение влечет дисциплинарную или материальную ответственность, как за невыполнение или ненадлежащее выполнение своих обязанностей, если не влекут по закону уголовной ответственности.

Ветеринарный врач, при обращении владельца животного отказавшийся от оказания врачебной помощи, вследствие которого произошла утрата продуктивности или рабочих качеств или гибель животного обязан возместить материальный и моральный ущерб. Если не выполнение врачебной помощи повлекло к дальнейшему распространению инфекции среди животных и людей (сибирская язва, чума верблюдов, птичий грипп и т.д.) со смертельным исходом то в отношении врача возбуждается уголовное дело со всеми вытекающими последствиями.

2 Организация первой ветеринарной помощи.

Технологические процессы по воспроизводству и выращиванию молодняка, получению молока, яиц, шерсти и другой продукций, откорму животных и птиц на промышленной основе, а также в фермерских хозяйствах обуславливают возникновение ряда патологий требующих неотложной первой помощи. Методы ведения хозяйства зачастую сопряжены с необычными для животных условиями содержания (ограничение движения – гипо и адинамия, несбалансированное кормление, отсутствие или недостаточная инсоляция, неадаптированность молодняка к колебаниям температуры окружающей среды и т. д.). В результате снижаются общая и иммунобиологическая резистентность организма. Поэтому важнейшее значение имеет своевременное оказание первой помощи, обеспеченность хозяйства необходимым оборудованием, медикаментами и другими средствами для квалифицированной ветеринарной помощи. Первичная ветеринарная помощь является экстренной и основана на применении наиболее радикальных средств и методов помощи. При этом усилия оказывающего помощь должны быть направлены на стимулирование естественных сил организма животного в сочетании с профилактикой возможных отрицательных последствий. От своевременности и качества оказанной первичной помощи зависят длительность и особенности течения болезни, сохранения работоспособности, продуктивности животного, а иногда его жизнь.

3 Понятие о асептике и антисептике.

Асептика это комплекс мероприятий, направленных на превентизацию проникновения возбудителей инфекции в поврежденные ткани. С этой целью при оказании лечебной помощи животным все предметы хирургического или другого обихода (инструменты, шовный, перевязочный материалы, влагалищное зеркало, эндоскопы, посуда и др.) стерилизуют. Кроме того, обеззараживают операционное поле и руки врача.

Антисептика меры направленные на борьбу с возбудителями инфекции, проникшими в ткани организма животного. Она может быть механической, физической, химической и биологической. Механическая антисептика сводится к очищению раневой поверхности и полости от загрязнения, раневого отделяемого, удалению инородных тел, некротизированных тканей.

Возбудители инфекции могут проникать в организм и рану экзогенным путем из окружающей среды, помещения, контактным путем от прикосновения руками, нестерильными инструментами, перевязочным и шовным материалами. Не меньшую угрозу представляют заражения капельным путем т. е. попадание микробов с каплями пота, слюны и слизи при кашле и чихании и воздушный с пылью. Патогенные микроорганизмы могут попадать также и эндогенно гематогенными, лимфогенными, интраканальными и другими путями из имеющихся в его тканях очагов инфекции расположенных даже вдали от раны. При оказании ветеринарной помощи соблюдение правил асептики приобретает исключительное значение т.к. не исключается вероятность инфицирования при оказании врачебной помощи, которое представляет серьезную угрозу для организма больного животного.

Контрольные вопросы:

1 Что такое хирургическая инфекция?

2 История развития дисциплины?

3 Понятие о асептике и антисептике?

Тема: Профилактика хирургической инфекции Цель лекции: Познакомить студентов с методами стерилизации.

Научить стерилизовать хирургические инструменты, перевязочный материал и хирургические нити. Познакомить с методами обработка рук и операционного поля.

Ключевые слова: Стерилизация, дезинфекция, асептика, антисептика, хирургическая инфекция.

План лекции:

1 Обработка рук и подготовка операционного поля 2 Стерилизация инструментов 3 Стерилизация перевязочного материала 1 Обработка рук и подготовка операционного поля На руках людей различают микрофлору двойного происхождения:

преходящая, легко смываемая; постоянная, гнездящаяся в складках и порах кожи, постоянно живущая и размножающаяся на коже рук. Задача обработки рук двойная – уничтожение микробов на поверхности кожи и создание условий, препятствующих выходу микробов из глубоких слоев кожи на поверхность. Поэтому методы обработки рук хирурга слагаются из 3– х составляющих: механической очистки; обработки антисептическими растворами; дублении кожи или покрытии ее тонкой пленкой.

При всех методах мытья рук обязательно надевание резиновых перчаток.

Метод Спасокукоцкого– Кочергина включает в себя мытье рук с мылом под краном с теплой водой. Далее моют марлевой салфеткой в 2– х тазиках по 3 мин в 0,5%– м растворе нашатырного спирта. Руки сушат стерильным полотенцем и обрабатывают малой салфеткой, смоченной в 96%– м спирте. Ногтевые ложа и складки кожи тыла кисти смазывают 5%– м раствором йода. Способ надежен, кожа не раздражается.

Метод Альфельда предусматривает мытье рук от кончиков пальцев до локтевых сгибов мылом и щеткой под краном с теплой водой в течение мин (дважды меняя щетку). Руки сушат стерильным полотенцем и обрабатывают 96%– м спиртом 5 мин. Ногтевые ложа смазывают 5%– й настойкой йода.

Метод Срюбрингера имеет в виду мытье рук мылом и щетками по мин. Руки сушат и обрабатывают 70%– м спиртом в течение 3– х мин, а затем раствором сулемы 1 : 1000 3 мин. Ногтевые ложа смазывают настойкой йода.

Методика обработки рук первомуром. Руки моют мылом (без щетки) в течение 1 мин и сушат стерильной салфеткой. Затем руки погружают в раствор первомура на 1 мин. Руки сушат. Надевают резиновые перчатки.

Через каждые 40– 60 мин руки в перчатках погружают в тазик с 2,4%– м раствором первомура.

2 Стерилизация инструментов.

Наиболее удобный и доступный способ для практического врача стерилизации инструментов кипячением. Инструменты, которые нельзя подвергать действию высокой температуры стерилизуют химическим способом. В настоящее время все большее применение находят одноразовые стерильные инструменты (скальпели, ножницы, пинцеты), шприцы и атрибуты хирургического белья. С согласия владельца больного об уплате стоимости желательно использовать как в гуманитарной медицине одноразовые предметы, т.к. при этом достигается максимальная стерильность проводимых лечебных вмешательств.

Все металлические инструменты: скальпели, ножницы, иглы, пинцеты, различные щипцы и другие стерилизуют в дистиллированной воде.

Допускается добавление в воду щелочей: 1% – ного натрия карбоната; 3% – ного натрия тетрабората (бура), 0,1% – ной гидроокиси натрия, которые уменьшают время и повышают эффект стерилизации, осаждают соли, имеющиеся в воде, а также предупреждают возникновение коррозии и потемнение инструментов. Перед кипячением использованные инструменты тщательно очищают от загрязнении, разбирают, инъекционные иглы освобождают от мандренов, острые части инструментов, а также стеклянные заворачивают в марлю.

3 Стерилизация перевязочного материала.

Стерилизация автоклавированием – очень надежный способ обеспложивания. Чаще всего под давлением в автоклавах стерилизуют перевязочный материал (бинты, салфетки, тампоны и др.) и операционное белье (халаты, простыни, полотенца, колпачки) Иногда туда помещают фарфоровую и стеклянную посуду, эмалированные тазики, растворы и т. п. Перед автоклавированием материал и белье укладывают (неплотно) в специальные металлические коробки – биксы а если их нет, в холщовые мешки или пакеты. Имеющиеся на боковой стенке бикса отверстия открывают перед загрузкой автоклава и закрывают после стерилизации. В автоклав ставят одновременно несколько биксов.

Продолжительность стерилизации зависит от показании манометра; при 1, атм. (126,8°) –30 мин, или 2 атм. (132,9°) –20 мин. По прошествии нужного времени нагревание прекращают, осторожно открывают спусковой кран, выпускают пар и доводят давление до атмосферного (до нуля), только после этого осторожно открывают крышку автоклава и вынимают материал.

Стерилизация текучим паром осуществляется либо в специальном текучим паровом стерилизаторе Коха, либо (при его отсутствии) используют кастрюлю или ведро с крышкой. Последняя должна быть хорошо при гнойной, но способной пропускать пар. В сосуд наливают на 1/3 его высоты воду, вставляют выше уровня воды решетчатую перегородку, на которую помещают стерилизуемые материалы в матерчатых пакетах или в биксе.

Закрыв сосуд крышкой, в которой для выхода пара должно быть несколько очень мелких отверстий, подогревают его. Начало стерилизации считают с момента, когда пар начинает некоторое время выходить из – под крышки непрерывной струёй. Температура пара достигает 100°С; продолжительность стерилизации не менее 30 мин.

Стерилизация утюжением белья и перевязочного материала допускается только в тех случаях, если нельзя применить другие способы стерилизации. Обычно температура утюга достигает 150°С; сначала раскладывают и проглаживают простыню, на которой будет идти обработка, затем обрызгивают водой необходимый материал и проглаживают его с обеих сторон (марлю с одной стороны), при этом утюг передвигают медленно по 2–3 раза на одном месте.

Контрольные вопросы:

1 Стерилизация, виды стерилизации ?

2 Методы обработки рук хирурга ?

3 Метод Кияшова?

4 Метод стерилизации операционного поля?

Цель лекции: Познакомить студентов с наркотическими препаратами.

Научить студентов со стадиями наркоза и физиологией боли.

Ключевые слова: Наркоз, обезболивание, транквилизаторы, новокаин.

План лекции:

1 Понятие об обезболивании 2 Препараты для обезболивания. Методы обезболивания 3 Премедикация и стадии наркоза 1 Понятие об обезболивании. Боли резко увеличивается сосудистый тонус, учащается дыхание, и ритм его нередко нарушается, тормозится секреция желез желудочно-кишечного тракта, усиливаются все виды обмена веществ со значительным сдвигом в сторону катаболизма, развивается ацидоз, в крови появляется большое количество адреналина. Крайнее клиническое проявление расстройств, вызванных болью – травматический шок. Чувствительность органов и тканей зависит от степени снабжения их соответствующими нервными окончаниями. Очень болезненна роговица глаза, кожа особенно чувствительна в области губ, венчика, межкопытцевой щели, подушек пальцев у плотоядных, вентральной стенки живота, промежности, наружных половых органов.

Длительное болевое раздражение резко снижает продуктивность животных; уменьшаются надои молока у коров, значительно снижается прирост массы у откармливаемых животных.

В настоящее время применяют два основных метода обезболивания:

наркоз и местное обезболивание.

Классификация наркоза. Наркоз бывает глубоким и поверхностным.

В зависимости от пути введения, то есть способа практического применения избранного наркотического вещества, наркоз можно разделить на две основные группы – ингаляционный и неингаляционный (парапулъмональный). В первом случае летучие жидкости (хлороформ, эфир и др.) или газообразные вещества (закись азота, циклопропан и др.) дают вдыхать животным или вдувают им в дыхательные пути (ингаляционный наркоз). Во втором так называемые неингаляционные наркотики (спирты и альдегиды–хлоралгидрат, этиловый алкоголь и др.; барбитураты пентотал– натрий, тиопентал– натрий и др.) вводит в организм, минуя дыхательные пути. Наиболее распространенный при этом способ введения наркотических веществ – внутривенный. Определенную глубину наркоза можно вызвать введением некоторых наркотических веществ в желудок, прямую кишку, интраперитонеально, внутрикостно и даже внутритестикулярно и др В соответствии с этим наркоз различают внутривенный, оральный, прямокишечный, интраперитонеальный, внутрикостный (разновидность внутривенного) и др.

Кроме того, наркоз может быть однокомпонентный (для наркоза используют одно вещество) –хлороформный, эфирный хлоралгидратный, пентоталовый и др. и смешанный (назначают смесь двух или нескольких веществ), например ингаляционный хлороформ– эфирный наркоз. Нередко наркотические вещества вводят в организм последовательно (различными путями); тогда это будет комбинированный наркоз (пентотал – эфирный). В этом случае иногда говорят о вводном и базисном наркозе. Сначала применяют одно какое– ни будь вещество (пентотал – натрий). вызывающее короткий сон и резко снижающее чувствительность животного (вводный наркоз), а затем на фоне действия этого наркотического вещества вводят средство более длительного и глубокого действия (эфир, хлороформ), при коротком зачастую и протекает дальнейший наркоз (базисный) и операция.

Термин «базисный наркоз» не совсем точен. В медицине, где он был впервые введен, нет единства взглядов на объяснение этого термина. Мы считаем, что тому основному наркозу, на фоне которого происходит операция, следует приписать наименование «базисный», а не наоборот, как это принято. В дальнейшем мы будем придерживаться термина «базисный» в высказанном смысле.

Применение неглубокого наркоза, позволяющего фиксировать животное в желаемом положении, а затем последующие инъекции местно анестезирующих веществ в области операции называют сочетанным наркозом или комбинированным обезболиванием (например, хлоралгидрат внутривенно, орально или ректально, а новокаин местно).

Группы средств премедикации следующие.

1. Средства седативной премедикации. так называемые нейролептики (транквилизаторы: лат. tranquillare – успокаивать). К ним относят главным образом препараты фенотиазинового ряда аминазин и др. Ретикулярная формация стволовой части мозга является местом воздействия производными фенотиазина. В ней блокируются импульсы неспецифической чувствительности, что обусловливает седативный эффект. При этом следует учитывать, что эти вещества могут иногда от их применения на стоячих животных вследствие присущего им гипотензивного свойства снижать кровяное давление, вызывать анемию мозга и внезапное падение животного (ортостатический коллапс). Таким животным их лучше вводить внутримышечно.

Одним из весьма активных средств премедикации является ромпун (ксилазин), он применяется для большинства домашних животных внутримышечно или внутривенно. Его действие наступает быстро и длится до нескольких часов. Наиболее сильно ромпун действует на крупный рогатый скот, вызывая седативно – гипнотическое состояние при явлениях расслабления мускулатуры и резкого уменьшения реакции на болевое раздражение (анестезия). Крупному рогатому скоту ромпун применяют в четырех дозировках на каждые 100 кг массы: 0,25 мл; 0,50; 1,0; 1,5 мл.

Специально для свиней используют нейролептик бутирофенолового ряда – азаперон (стреснил). Его инъецируют внутримышечно в имеющейся 4%– ной концентрации. Обычная седация достигается при инъекции 1– мл/10 кг. Азаперон может быть широко использован для устранения агрессивности свиней, для успокоения и потери животными их массы при транспортировке на мясокомбинат и др. Для молодых свиней назначают до мл на 20 кг массы, что позволяет без последующего применения наркоза выполнять болезненные диагностические исследования, оперировать при выпадении прямой кишки, при герниотомии. Ввиду таких свойств азаперона после его инъекции операции можно продолжить под местной анестезней– 2. Холинолитические средства. Главный представитель этой группы – атропин– сульфат. Он ограничивает секрецию желез, уменьшает ларинго– и бронхоспазм снижает тормозящее влияние вагуса па сердце и возбуждает дыхание, чем предупреждается коллапс, остановка сердца и дыхания.

3. Аналитические средства. Сюда относятся главным образом морфин и его заменители. Они действуют на всем протяжении центральной передачи чувства боли, уменьшают его, не нарушая сознания. Передозировка этих веществ может вызвать общее возбуждение, в обычных дозах отмечают угнетение дыхания. Из заменителей употребляют промедол.

4. Снотворные средства. Используют барбитураты перед ингаляционным наркозом или хлоралгидрат.

5. Миорелаксанты как средства премедикации в настоящее время применяют при наркозе с управляемым дыханием. Исключение составляет только так называемая мианезиновая группа мышечных релаксантов, например гваякол– глицериновый эфир.

6. Антигистаминные средства. В процессе операций и наносимой травмы ткани освобождают значительное количество гистамина. Попадая в кровь, он вызывает ряд расстройств, которые отягощают течение наркоза и выполнение самой операции (спазмы бронхиол, кишечника, мочевого пузыря, матки, парез капилляров, обусловливающий падение кровяного давления, проницаемость мембран с последующим выпотом крови в ткани н др.). Подобные изменения имеют огромное значение в патогенезе развивающегося при этом шока. Одним из наиболее активных антигистаминных препаратов является димедрол. Он снимает спазмы гладкой мускулатуры, выравнивает кровяное давление, предупреждает развитие отеков и шоковых явлений и действует противовоспалительно.

Наряду с этим он оказывает седативный, анестизирующий и даже снотворный эффект, а также является одним из компонентов литических смесей, применяемых для премедикации.

Течение наркоза. Наиболее типично протекает ингаляционный наркоз, при котором устанавливают четыре стадии.

Первая стадия (анальгетическая) характеризуется некоторым беспокойством животного, болевые ощущения и другие виды чувствительности несколько понижены, дыхание глубокое и равномерное, пульс частый и полный, зрачок расширен, движения глазного яблока произвольны. Рефлексы и мышечный тонус сохранены.

Вторая стадия (возбуждение) сопровождается потерей сознания в результате торможения центров ассоциации (фармакологическая декортикация) и движения. Наряду с этим усиливаются рефлексы и повышается мышечный тонус. Появляется беспокойство, дыхание неравномерное и временами учащенное, зрачок расширен. У лошади и крупного рогатого скота появляется нистагм, усиливается секреция слюнных, бронхиальных и слезных желез, резко повышается глотательный рефлекс, появляется рвота. Пульс полный, учащенный и аритмичный, кровяное давление повышено.

Третью стадию (хирургическую, или толерантную) делят на четыре периода. В первом периоде наркоз становится глубоким, дыхание равномерное, рефлексы, хотя еще сохранены, но значительно ослаблены, секреция желез и мышечный тонус начинают уменьшаться. Во втором периоде мышечный тонус резко ослабевает, рефлексы начинают исчезать (кроме глазных), зрачок сужен до предела, глазное яблоко повернуто вниз. В третьем периоде, наступает полный, лишенный рефлексов наркоз (кроме роговицы) с ровным, но неглубоким дыханием, которое становится все более поверхностным и может быть отрегулировано только ингаляцией углекислоты. Ротация глазного яблока исчезает, и оно занимает обычное положение, роговица сухая, зрачок расширен. Наступают явления, опасные для жизни.

Четвертая стадия зависит от продолжения поступления наркотика или его прекращения. В первом случае дыхание останавливается (его можно восстановить искусственно) при наблюдающейся работе сердца, которая вскоре прекращается, и наступает смерть. Во втором случае после прекращения подачи наркоза начинается обратное развитие стадий вплоть до стадии возбуждения и полного пробуждения.

Контрольные вопросы:

1 Значение устранения болевого синдрома?

2 Виды анестезии. Показания и противопоказания к анестезии ?

3 Основные средства анестезии и техника их применения?

4 Нейролептаналгезия?

Тема: Кровотечения, остановка кровотечения Цель лекции: Познакомить студентов с видами кровотечения и борьбы с ними. Научить к профилактике кровотечения.

Ключевые слова: Кровь, жгут, коагулянты. Этамзилат. Викасол План лекции:

1 Виды кровотечения 2 Опасности кровотечения 3 ПВП при острых кровотечениях 1 Виды кровотечения. В зависимости от источника возникновения кровотечения может быть артериальным (алая кровь вытекает в виде пульсирующей струи, которая прекращается после прижатия центрального конца сосуда); венозным (цвет струи темно– вишневый, течет иногда прерывисто синхронно дыханию, уменьшается после прижатия периферического участка сосуда), капиллярным (кровь течет равномерно со всей поверхности раны) и паренхиматозным (возникает при повреждении легких, печени, селезенки, почек характеризуется обильным вытеканием крови; как и капиллярное, оно является смешанным). Кроме того различают кровотечение наружное – при повреждении целости покровов и внутреннее при излиянии крови во внутренние замкнутые полости организма; наконец, скопление крови в межтканевых промежутках квалифицируют как внутритканевое (интерстициальное) кровотечение; если при этом в межтканевых промежутках возникает полость, то образуется гематома.

По времени появления кровотечений бывает первичным, возникающим сразу же после повреждения сосуда, и вторичным, если оно развивается в результате ослабления и соскальзывания лигатуры или распада тромба.

Кровотечение, которое может произойти вследствие разъедания стенки сосуда при распаде окружающих тканей' называется аррозионным. При длительном и тугом наложении кровоостанавливающего жгута может возникнуть повреждение вазоконстрикторов; развивающееся кровотечение после снятия жгута называют паралитическим.

2 Опасности кровотечения. Кровотечение - наиболее опасный спутник многих травм, ранений и послеоперационных осложнений, связанных с повреждением крупных кровеносных сосудов. Но и ранения мелких артериальных сосудов или вен.

В зависимости от вида поврежденного сосуда различают артериальное, венозное, капиллярное и паренхиматозное кровотечение.

При артериальном кровотечении алая кровь вытекает пульсирующей струей. При отсутствии анастомозов кровь выходит лишь из центрального конца артерии, а при наличии их вытекает из обоих концов, однако сильнее из центрального отрезка. Артериальное кровотечение может быстро привести к острой анемии и ги6ели животного. Самостоятельно такое кровотечение останавливается редко.

Венозное кровотечение отличается темным цветом крови, которая вытекает медленно. Истечение крови струей бывает только в случае ранения крупного сосуда при повышенном венозном давлении и, как правило, не пульсирует. Если венозный сосуд был перерезан полностью, то кровь вытекает только из периферического его конца. Центральный конец сосуда может кровоточить лишь когда в сосуде нет клапанов и имеются условия, мешающие спаданию сосудистой стенки.

3 ПВП при острых кровотечениях.

Временная остановка кровотечения. При кровотечении из небольших сосудов наиболее простой способ остановки его – временное прижатие сосуда через ткани пальцем или в ране тампоном. Это легко сделать на артерии рога, пястных артериях и др. При кровотечении из ветвей сонной артерии иногда ее обнажают и временно накладывают на нее артериальный зажим. Кровотечение из ветвей брючной аорты и подвздошных сосудов у крупных животных можно остановить прижатием их через стенку прямой кишки.

Надежное средство временной остановки кровотечения – наложение вышеупомянутого кровоостанавливающего жгута. Наконец, кровотечение временно останавливают захватыванием на короткий срок и перекручиванием кровоточащего сосуда гемостатическим пинцетом. Следует отметить, что после временной остановки кровотечения необходимо немедленно принимать срочные меры к окончательной его остановке.

Окончательная остановка кровотечения может быть осуществлена применением механических, физических, химических и биологических средств, причем первые наиболее надежный.

1) Скручивание сосуда (torsio). Для этой цели пользуются различные кровоостанавливающие пинцеты и артериальные зажимы. Кровоточащий сосуд захватывают тем или иным гемостатическим пинцетом и скручивают инструментом вокруг продольной оси до тех пор, пока пинцет не отделится вместе с зажатой в нем тканью.

2) Изолированная перевязка сосуда в ране показана при повреждении крупных и средних стволов, так как скручивание не может остановить кровотечение из них. Сначала сосуд захватывают кровоостанавливающим пинцетом, отодвинув от него окружающие ткани, особенно нерв, а затем под пинцетом накладывают лигатуру 3) Перевязка сосуда с окружающими тканями (ligature en masse) рациональна в случаях. Чаще всего применяют обыкновенную лигатуру, завязываемую морским или хирургическим узлом. Когда сосуды находятся в толстой связке или брыжейке, пользуются прошивной лигатурой, проводя нить через толщу тканей вблизи сосуда.

5) Перевязка сосуда на протяжении осуществляется в типичном месте доступа к сосуду 6) Длительная тампонада раны рекомендуется как способ окончательной остановки кровотечения при операциях на холке, затылке, копыте, в носовой полости, орбите и т. д. Тампоны следует смачивать антисептическими и кровоостанавливающими средствами;

из них наиболее употребительны скипидар, йодоформ– эфир и др. (при тампонаде носовой полости и орбиты скипидар противопоказан).

7) Кровоостанавливающий шов. При некоторых операциях соединяющий шов на рану накладывают с таким расчетом, чтобы закрыть просветы небольших кровоточащих сосудов (ампутация ушной раковины, полового члена, языка, операции на паренхиматозных органах).

Контрольные вопросы:

1 Виды кровотечения и профилактика кровотечения?

2 Механическая остановка кровотечения ?

3 Физическая остановка кровотечения?

4 Биологическая остановка кровотечения?

5 Химическая остановка кровотечения Цель лекции: Научить студентов накладывать повязки на разные части тела животных. Познакомить с бинтовыми и иммобилизирующими повязками.

Ключевые слова: Десмургия, бинтовые повязки, иммобилизирующие повязки План лекции:

1 Понятие о повязках и перевязках 2 Способы наложения бинтовых и фиксирующих повязок 3 Бинтовые и специальные повязки 4 Иммобилизирующие повязки Десмургией называют учение о повязках. Предметом ее является рассмотрение методов наложения повязок и форм применения перевязочных материалов.

Повязкой называют механический прием, осуществляемый при помощи перевязочного материала с целью: а) остановки кровотечения из ран (давящая повязка); б) лечения ран и защиты их от внешних вредных воздействий (раневая повязка); в) укрепления области тела при переломах, вывихах и других процессах (неподвижная, или иммобилизирующая, повязка); г) лечения закрытых повреждений и различных воспалительных процессов мягких тканей (повязки– компрессы).

В большинстве повязок различают внутренний слой, накладываемый непосредственно на больную часть (перевязка), и наружный, удерживающий первый слой(собственно повязка).

К основным перевязочным материалам относятся: марля, вата, лигнин, а к вспомогательным – пакля, джут, торфяной мох, целлофан, древесная шерсть, гранулеза, клеенка, байка, фланель и др.

Марля – хлопчатобумажная редкая ткань, изготовляемая из слабо скрученных ниток. Марлю выпускают беленую (химически обезжиренную) и серую (необезжиренную).

Вата–получается из хлопка и бывает как обезжиренная (беленая), так и необезжиренная (серая или белая).

Лигнин – имеет вид тончайшей пористой бумаги. Его изготовляют из древесины путем химической обработки (кипячения в кислотах). Лигнин обладает очень большой всасывающей способностью. Под влиянием света он становится хрупким и приобретает желтоватую окраску.

Торфяной мох – готовят из стеблей мха в виде ваты или спрессованных пластинок; он обладает огромной всасывающей способностью, а также дезодорирующим и дезинфицирующим свойствами.

Целлофан – в виде тонких прозрачных листов получают из побочных продуктов при производстве искусственного шелка. Обладая прочностью, мягкостью и непроницаемостью, он с успехом применяется для компрессов и как покрывающий материал для раневых повязок.

Гранулеза – представляет собой фабричные очесы, остающиеся после обработки сырого хлопка, в виде волокнистого материала черного цвета, бархатисто– эластичной консистенции.

Пакля – очищенное от твердых частиц стеблей льняное или конопляное волокно.

Джут–по виду напоминает паклю, изготовляется из молодых побегов индийской конопли.

Древесная шерсть (вата) – напоминает мелкие пушистые опилки. В хирургии используется редко.

Тампоны ватно – марлевые готовят различной величины. Наиболее часто при операциях пользуются тампонами размером 4х6 см, изготовляя их из куска марли размером 7х14 см. Края марли подвертывают внутрь во избежание попадания отдельных ниток в рану. Затем в подготовленный таким образом кусок марли вкладывают пласт ваты 4х6 см, толщиной 0,5–0, см и завертывают его в марлю со всех сторон. Тампоны готовят также фабричным способом размером 6х6 см и расфасовывают в пакетиках по штук. Эти тампоны состоят из двух (или одного) слоя марли и ваты, прошитых нитками. Вместо ваты нередко пользуются лигнином. Наконец, тампоны делают только из марли. Шарики ватно – марлевые готовят из куска марли размером 10х12 см, вкладывая внутрь его комок гигроскопической ваты и завязывая ниткой (или закручивая концы марли).

Шарики ватные, комочки ваты шарообразной формы, используемые для обработки рук и операционного поля.

Компресс – кусок марли или другой ткани произвольной формы и величины, сложенной в несколько слоев. Дренаж – длинная узкая полоска марли, вложенная по длине вдвое или вчетверо и служащая для дренирования ран. Дренажи наматывают на палочку и в таком виде стерилизуют в автоклаве. Конец дренажа захватывают пинцетом и вводят в рану, постепенно разматывая валик.

Салфетка – небольшой кусок марли квадратной формы размером 25– 35х25–35 см (квадратный кусок ткани большего размера называют платком).

Лонгет– кусок марли в форме длинного четырехугольника размером 10–15 х30–50 см.

Косынка– кусок ткани треугольной формы Праща–тот же лонгет, концы которого надрезаны в продольном направлении, а середина оставлена целой.

Бинты – ленты из марли, плотного холста или фланели длиною от 3 до 7 м и шириной 15 см. Бинты могут быть одноглавыми, двуглавыми и Т– образные. В бинте различают скатанную часть головку, свободный конец, внутреннюю и наружную поверхности (спинку). Стандартный марлевый бинт имеет в ширину 10 см, а в длину 7 м. При оказании первой помощи (перевязка ран) часто употребляют готовые антисептические материалы, получаемые путем пропитывания различными антисептическими смесями.

Например: 1) карболовой кислоты–55,0; спирта–150,0; глицерина–25,0;

дистиллированной воды–75,0; 2) йодоформа–10,0; спирта–100,0; эфира– 100,0; глицерина–8,0; 3) сулемы–0,6; спирта–5,0; глицерина–5,0;

дистиллированной воды–145,0 и др.

Контрольные вопросы:

1 Виды перевязочных материалов ?

2 Компрессные повязки ?

3 Повязки рога и хвоста?

Цель лекции: Научить студентов делать инъекции. Познакомить с инструментами и введением лекарственных веществ.

Ключевые слова: Инъекция, инфузия, шприцы Люэра, шприц Жанэ, План лекции:

1 Виды лекарственных веществ.

2 Понятие о дозах 3Способы применения лекарств Инъекция (лат. injectio–вбрасывание, син. впрыскивание) –введение жидких форм лекарственных веществ или биологических препаратов толщу тканей, полостиорганизма, сосудистое русло. Введение больших количеств жидкости (различных растворов, крови, кровезаменителей и др.) преимущественно самотеком называют вливанием (лат. infusio).

Инъекции и вливания осуществляют в тех случаях, если введение лекарства внутрь невозможно, нецелесообразно или если нужно получить быстрый лечебный эффект.

Делают их с помощью шприца (через иглу), безигольного инъектора или специальных систем. Шприцы ветеринарного назначения выпускают вместимостью 1, 2, 5, 10, 20 мл. Шприцы типа Люэра (на 2, 5, 10, 20, 50, мл) состоят целиком из стекла. Для них требуются иглы с большим диаметром внутреннего конуса канюли. При необходимости использования игл к шприцам типа «Рекорд» в сочетании с шприцами типа Люэра или наоборот применяют переходные канюли.

В настоящее время выпускаются и применяются в основном одноразовые стерильные пластмассовые шприцы. Для вливаний, переливания крови и промывания полостей организма используют шприцы типа Жанэ, аппарат Боброва, стеклянные воронки и др.

Иглы инъекционные различной длины и диаметра к шприцам типа «Рекорд» и Люэра выпускают под номерами: первые две диагностическом исследовании животных на инфекционные болезни. Применяют шприцы (вместимостью 2 мл) с бегунком и специальные иглы или безигольные инъекторы. Иглу вводят в толщу кожной складки, захваченной двумя пальцами, параллельно поверхности кожи. Место инъекции: у крупных животных – боковая поверхность средней трети шеи; у мелкого рогатого скота – подхвостовая складка; у свиней–наружная или внутренняя поверхность уха; у кур–бородка.

Подкожные инъекции – наиболее частый путь введения водных растворов (реже масляных). Противопоказаны суспензии, гипертонические и раздражающие растворы, которые вызывают развитие инфильтратов и некрозов.

Иглу вводят под оттянутую кожную складку в местах с хорошо развитой подкожной клетчаткой: лошади и крупному рогатому скоту –в области боковой поверхности шеи, подгрудка; овцам – на внутренней поверхности бедра; свиньям–в области шеи у основания уха, внутренней поверхности бедра; собакам и кошкам –в области шеи, груди, внутренней поверхности бедра: птице – в области затылка и груди. Действие лекарства наступает через 10–15 мин.

Внутримышечные инъекции менее болезненные. Кроме водных можно вводить масляные растворы и суспензии. Противопоказаны раздражающие вещества. Мышцы обильнее, чем под кожная клетчатка, снабжены кровью и всасывание лекарства идет быстрее.

У крупных животных местом инъекции является заднебедренная группа мышц, мышцы шеи, подгрудка, трехглавая мышца плеча; у свиней– мышцы шеи у основания уха, внутренняя поверхность бедра, ягодичные мышцы, трехглавая мышца плеча у собак и кошек–заднебедренная группа мышц, внутренняя поверхность бедра, трехглавая мышца плеча; у птиц– область грудной кости и бедра.

Для внутривенных инъекций и вливаний используют только водные растворы, ибо суспензии и масляные растворы могут вызвать эмболию.

Прибегают к внутривенным введениям, если нужно получить очень быстрый лечебный эффект, ввести большое количество жидкости или при противопоказаниях для введения другим путем (некроз тканей при подкожном или внутримышечном введении, например хлоралгидрата, кальция хлорида и др.). У лошади место введения – яремная вена в передней трети шеи, где отсутствуют клапаны сосуда и в наружную грудную вену.

Крупному рогатому скоту вводят в наружную яремную вену или подкожную вену живота; свиньям – в большую ушную вену подсвинкам в подкожную вену живота, а также в краниальную полую вену. У собак доступны для инъекции подкожная вена предплечья на грудной конечности и малая скрытая вена на тазовой конечности. Используют иглы № 0840, 0625; у птиц подкожная локтевая вена вблизи локтевого сустава Общие правила внутривенных инъекций. Крупных животных фиксируют стоя. При фиксации мелких животных удобно боковое или грудобрюшное положение. Центральный конец вены по отношению к месту ее пункции пережимают резиновым жгутом, всей кистью руки или пальцем.

Инъекционную иглу приставляют к коже и слегка придавливают, стенку вены острием иглы, резким толчком прокалывают ее. Желательно продвинуть кончик иглы в просвет вены на несколько миллиметров, придать игле продольное сосуду положение. В момент инъекции вену отпускают, а по окончании ее пальцем прижимают место пункции. Избегают попадания в кровяное русло пузырьков воздуха. Небольшие количества жидкости мелким животным можно вводить из шприца с присоединенной иглой.

Внутривенное вливание большого количества жидкости осуществляют различными инфузионными системами, для которых в качестве емкости могут быть использованы стеклянные воронки, цилиндр шприца Жанэ, аппарат Боброва и др. К ним присоединяют резиновый шланг, имеющий на свободном конце насадку для соединения с иглой. При использовании для введения жидкости самотеком аппарата Боброва удаляют резиновый баллон, а шланг с иглой присоединяют к – короткой стеклянной трубке. При вливании сосуд удерживают горловиной вниз. Воздух из резинового шланга вытесняют или жидкостью из системы в момент присоединения к введенной в вену игле, или струёй крови. В последнем случае после присоединения к игле шланга сосуд опускают ниже места пункции вены до полного прекращения выделения пузырьков воздуха. Жгут снимают, а систему поднимают выше места пункции. К концу инфузии вену пережимают вновь, как это делалось перед уколом, чтобы промыть иглу струёй крови и избежать параваскулярного попадания раздражающей жидкости при извлечении иглы.

В момент извлечения иглы жгут снимают. Если аппаратом Боброва жидкость вводят под давлением, резиновый баллон подсоединяют к короткой стеклянной трубке аппарата, а шланг с иглой к длинной. При инфузии аппарат удерживают горловиной вверх.

Внутриартериальные инъекции выполняют для целенаправленного воздействия на очаг поражения. У крупных животных лекарственные вещества вводят в срединную и плюсневую наружную дорсальную артерию.

При лечении гнойно – некротических процессов в дистальном отделе конечностей, в общую сонную артерию для непосредственного воздействия на очаг поражения в области головы и шеи, а также и брюшную аорту.

Общие правила внутриартериальных инъекций аналогичны внутривенным инъекциям, но пережимают не центральный, а периферический по отношению к месту пункции конец сосуда. Положение артерии определяют прощупыванием пульсации.

Внутрибрюшинные инъекции. В связи с тем, что брюшина обладает хорошо выраженной резорбтивной способностью, этим видом инъекции можно заменить внутривенные введения. Точку укола у крупного рогатого скота определяют в правой голодной ямке на середине линии от маклака к последнему ребру. Глубину укола контролируют пальцем, направляя иглу каудовентрально. У свиней инъецируют в области средней части левого подвздоха. Небольшим свиньям, собакам и кошкам прокол делают сбоку от белой линии между пупком и лонным сращением.

Внутрикостные инъекции. Красный костный мозг имеет исключительно богатую сеть капилляров венозной системы, способную принимать вводимую жидкость непосредственно в общее кровяное русло.

Это позволяет считать внутрикостные инъекции разновидностью внутривенных. Чаще их применяют у свиней, Используют специальные иглы Кассирского, Симоняна или приспособленные с хорошо подогнанным мандреном.

Интрастернальные инъекции делают в рукоятке или в первые два сегмента грудной клетки. Свинью фиксируют в правом боковом положении.

Иглу вкалывают или со стороны боковой поверхности рукоятки, отступив от ее переднего конца на 3–4 см, или сбоку от срединной линии сегмента грудной кости. Иглой с мандреном прокалывают мягкие ткани, а затем сверлящими движениями перфорируют кортикальную пластинку (о чем свидетельствует ощущение провала иглы) и вынимают мандрен. Раствор вводят при некотором усилии.

Контрольные вопросы:

1 Интрастернальные инъекции?

2 Внутрикостные инъекции?

3 Внутрибрюшинные инъекции?

4 Общие правила внутривенных инъекций?

Цель лекции: Познакомить студентов со стадиями болезни.

Ключевые слова: терминальное состояние, агония, смерть, реаниматология.

План лекции:

1 Понятие о терминальных состояниях 2 ПВП при остановке дыхания 3 ПВП при остановке сердца Каждая болезнь развивается в течение некоторого большего или меньшего времени. Одни болезни протекают очень быстро, другие развиваются медленно.

В зависимости от времени развития болезней, различают молниеносные развивающиеся в течение нескольких минут или часов, острейшие – до 4 дней, острые – около 5–14 дней, подострые – 15 – 40 дней и хронические или неизлечимые формы, длящиеся месяцы и годы.

Разделение это является во многих случаях условным, но необходимы для систематизирования и характеризирования состояния патологии.

В развитии многих болезней можно различить три стадии:

1. Начало болезни – продромальный или латентный периодом развития патологии. Разделяют эту стадию на: а) предболезнь и б) заболевание.

Начало болезни или «предболезнь», отображает процессы начального воздействия патологических факторов на организм и его ответные защитные реакции. Защитные реакции и резистеность организма во многих случаях могут предотвратить возникновение патологических явлении и не допустить развития клинических признаков заболевания.

Период от заражения до начала заболевания для инфекционных болезней называется инкубационным. Для незаразных болезней, отравлениях, и др. он называется латентным периодом, в онкологической практике – состоянием предболезни («предрак» и т. д.).

Начальный период при разных видах болезни может быть очень коротким (аллергизация, травматические повреждения, интоксикация) или очень – длинным (нарушение обмена веществ, системные патологии, болезни суставов, аутоиммунные болезни, некоторые инфекции).

В ветеринарной клинической практике в большинстве случаях затруднительно определить время наступления и продолжительность предболезни, это связанно с отсутствием обратной связи с пациентом, ветеринарный врач может полагаться только на информацию, полученную от владельца или обслуживающего персонала животного. Предболезнь также может изменяться индивидуально в зависимости от вида, породы, упитанности, резистентности, иммунобиологического состояния и т.д.

животного при одном и том же заболевании и варьировать во времени в широких пределах.

2. Стадия собственно болезни. Стадия собственно болезни характеризуется наиболее выраженными общими и местными проявлениями, характерными для каждого конкретного заболевания. Изучение их составляет задачу клинических дисциплин. Полное проявление всех характерных для болезни симптомов называется классическая форма течения. В клинической практике наблюдается весьма редко. В большинстве случаев картина проявления бывает противоречивой при одной и той же болезни, например, чума у собак протекает почти в десятках вариантах.

3. Исходы болезни. Различают следующие исходы болезни: I) выздоровление полное и неполное; 2) затягивание болезни или переход в хроническую форму; 3) смерть.

Выздоровление это процесс восстановления нарушенных функций больного организма и его дельнейшее приспособления к существованию.

Основным критерием выздоровления животного является возвращение к полноценной деятельности без снижения рабочих качеств или продуктивности. Выздоровление также называют реабилитацией (от лат, re– снова и abilitas–годность).

Выздоровление после болезни представляет у животного качественно новое состояние, создающее новые формы его отношения к окружающей среде. Обычно процесс выздоровление становится клинически заметным обычно в последней стадии течения болезни и некоторыми клиницистами определяется как выражение его последней стадии. Это понятие является неверным. Процессы, которые приводят к выздоровлению, начинаются в организме с начала заболевания. Они представляют собой совокупность ответных реакций больного организма на возникающие повреждения тканей и клеток органов и систем.

Выздоровление бывает полное и неполное. При полном выздоровлении в организме не остается следов расстройств, возникших при болезни. Однако, необходимо учитывать и то, что при видимом внешне клинически «полном»

выздоровлении, организм еще некоторое время не возвращается к прежнему состоянию до болезни, в нем могут возникать новые процессы жизнедеятельности и регуляции функций. Так, после перенесения инфекционной болезни, в организме выздоровевшего наблюдаются выработка антител, усиление фагоцитарной активности лейкоцитов, усиление выделительных процессов и др. После выздоровления на месте бывшего воспаления остается рубец и т. д. или после перенесенного наркоза психическое состояние приходит в прежнее состояние в течение 5– месяцев. Это необходимо учитывать при эксплуатации и нагрузке переболевшее животного, чтобы не привести к срыву результата лечения.

При неполном или частичном выздоровлении будут наблюдаться остаточные явления патологии в виде разной степени функциональных нарушений органов и их постепенная регуляция до нормальных параметров.

Механизмы выздоровления больных животных. За длительный период существования живой организм выработал определенные способы адаптации и выживания, процессы которых управляются нервными, эндокринными, клеточными и гуморальными механизмами.

Различают следующие группы механизмов выздоровления: 1).

Срочные, неустойчивые или «аварийные» защитно – компенсаторные процессы или реакции, проявляющиеся мгновенно в течение секунд или минут.

Контрольные вопросы:

3 Стадии реаниматологии ?

4 ПВП при остановке сердца?

Цель лекции: Познакомить студентов с методами стерилизации.

Научить стерилизовать хирургические инструменты, перевязочный материал и хирургические нити. Познакомить с методами обработка рук и операционного поля.

Ключевые слова: Стерилизация, дезинфекция, асептика, антисептика, хирургическая инфекция.

План лекции:

1 Понятие и виды хирургической инфекции.

2 Виды хирургических инфекций 3 ПВП при острых хирургических инфекциях Хирургической или общей инфекцией являются патологические процессы, вызванные микробами, грибами, вирусами, которые попадают в организм больного животного при оказании врачом лечебных вмешательств.

Возбудители этой инфекции проникают в ткани и органы при контакте через раневую поверхность, при инъекциях, пункциях, аэрогенно, посредством инструментов, при родовспоможениях и т. д. через не обеззараженные руки или инструментарий. Генезис инфекционного процесса определяется количеством проникших в организм возбудителей, их вирулентностью и патогенностью, наличием некротизированных тканей в зоне травмы, задержка в них экссудата, запоздалая лечебная помощь и т.д.

До возникновения микробиологии как науки хирурги не имели понятия о вирулентных микроорганизмах. Не знание этого фактора даже при незначительных операциях вызывало тяжелые осложнения, нередко приводившие к летальному исходу. Только со второй половины XIX в. на основании открытий Л. Пастера, Р. Коха и других ученых были разработаны методы профилактики и борьбы с микробами в хирургической практике. Так до Н.И. Пирогова хирурги не мыли рук перед операцией, перевязывали многократно использованными плохо отстиранными бинтами, которые были сняты даже с умерших. Незнание основных принципов соблюдения правил стерильности и недопущения попадания инфекции при проведении лечебных манипуляции представляет весьма серьезную, порой и смертельную опасность для больного пациента, а также для окружающих угрозу заражения или распространения инфекции.

Поэтому в системе подготовки врача для оказания любой лечебной, в том числе и первичной помощи, важной стороной является дать обучающимся знание и научить правильно подготовить руки, поверхность тела для инъекции или проведения оперативного вмешательства, провести стерилизацию инструментов, шовного материала, предметов обихода и хирургического белья.

Асептика это комплекс мероприятий, направленных на превентизацию проникновения возбудителей инфекции в поврежденные ткани. С этой целью при оказании лечебной помощи животным все предметы хирургического или другого обихода (инструменты, шовный, перевязочный материалы, влагалищное зеркало, эндоскопы, посуда и др.) стерилизуют. Кроме того, обеззараживают операционное поле и руки врача.

Антисептика меры направленные на борьбу с возбудителями инфекции, проникшими в ткани организма животного. Она может быть механической, физической, химической и биологической. Механическая антисептика сводится к очищению раневой поверхности и полости от загрязнения, раневого отделяемого, удалению инородных тел, некротизированных тканей.

Возбудители инфекции могут проникать в организм и рану экзогенным путем из окружающей среды, помещения, контактным путем от прикосновения руками, нестерильными инструментами, перевязочным и шовным материалами. Не меньшую угрозу представляют заражения капельным путем т. е. попадание микробов с каплями пота, слюны и слизи при кашле и чихании и воздушный с пылью. Патогенные микроорганизмы могут попадать также и эндогенно гематогенными, лимфогенными, интраканальными и другими путями из имеющихся в его тканях очагов инфекции расположенных даже вдали от раны. При оказании ветеринарной помощи соблюдение правил асептики приобретает исключительное значение т.к. не исключается вероятность инфицирования при оказании врачебной помощи, которое представляет серьезную угрозу для организма больного животного.

Венгерский врач И. Земмельвейс одним из первых указал, что загрязненные руки врача являются причиной осложнений послеродового периода у женщин (1861). Поэтому он настоятельно рекомендовал мыть руки раствором хлорной извести перед исследованием родовых путей. Этим удалось резко снизить процент смертности и осложнений у больных.

Примерно в то же время русский хирург Н. И. Пирогов для лечения ран с успехом применял раствор хлорной извести, спиртовой раствор йода и т. п.

Однако все эти методы предупреждения осложнения при заживлении ран не могли объяснить их настоящей причины. И только исследования Л. Пастера позволили установить значение микробов в этом процессе.

На основании открытий Л. Пастера английский хирург Листер разработал (1867) метод борьбы с инфекцией ран. Он рекомендовал применять 5%– ный раствор карболовой кислоты (фенола) на рану, соприкасающиеся с раной предметы, инструменты, руки и распылять его в операционной. Им же предложена особая многослойная непроницаемая повязка. Это метод давшее по тому временя прекрасные результаты, положило основу для метода антисептики (противогнилостный: греч. anti– против, sepsis–гниение), существо которого состоит в борьбе с инфекцией, при помощи химических веществ, применяемых в ране и вне ее. Однако в дальнейшем выяснилось, что этот способ вызывает многочисленные осложнения. В настоящее время фенол запрещен для применения в медицинской практике т.к. является сильно ядовитым и канцерогенным препаратом.

Хорошие результаты были достигнут соблюдением тщательной чистоты при операциях и применением на раны всасывающих повязок. Эти наблюдения послужили толчком к развитию нового метода борьбы с инфекцией ран, получившего название асептики (безгнилостного: греч. а– отрицание, sepsis–гниение). Этот метод и положен в основу современной хирургии. Метод асептики состоит в том, что все предметы хирургического и лечебного обихода (инструменты, шовный и перевязочный материал, процедурные оборудования, посуда и т.д.) подвергаются различным методам обработки (действию высокой температуры, применению антисептических жидкостей, УФЧ, и т д.), чем достигается их полная стерилизация. Наряду с этим руки врача и раневая поверхность у больного животного для устранения и подавления имеющейся на коже микрофлоры обрабатывают антисептическими веществами.

Контрольные вопросы 1 Что такое абсцесс ?

2 Что такое флегмона?

3 Понятие о хирургической инфекции ?

Ключевые слова: Рана, хирургическая травма, хирургическая инфекция.

Цель лекции: Познакомить студентов с видами ран. Научить диагностировать хирургических травм.

План лекции:

1 Понятие о травме и травматизме Виды и классификация травматизма 2 ПВП при острых травмах 3 Признаки, виды ран. ПВП при ранах Рана (vulnus) – это открытое механическое повреждение органов и тканей с нарушением целостности кожи или слизистой оболочки.

Классификация. В зависимости от характера ранящего предмета и механизма действия различают 10 видов ран: колотая, рубленая, ушибленная, рваная, размозженная, огнестрельная, отравленная химическими веществами (смешанная или микста – vulnus mixtum), укушенная и комбинированная (колото – резаная, рвано – ушибленная).

По причинам повреждения раны делятся на операционные (преднамеренные) и случайные.

инфицированные.

По отношению к полостям тела (полости черепа, груди, живота, суставов) различают раны проникающие и непроникающие.

Выделяют также простые раны и осложненные (отравление, ожог) или сочетание ранений мягких тканей с повреждением кости, полости и т. д.

Клинические признаки. Отмечают зияние, кровотечение, боль, нарушение функции органа.

Лечение. Для заживления случайной раны по первичному натяжению (за 6–8 дней) вначале проводит ее первичную хирургическую обработку (остановка кровотечения, удаление вокруг раны шерстного покрова, свернувшейся крови, инородных тел, ликвидация затоков, карманов, орошение антибиотиками), накладывают глухие швы. Затем производят глубокую инфильтрацию краев и стенок раствором антибиотиков пенициллинового ряда со стрептомицином в соотношении 1 :1 или 2:1 в дозе 10–12 тыс. ЕД на 1 кг массы животного. Таким методом у крупного рогатого скота и свиней раны заживляют по первичному натяжению с давностью ранения до 48–72 ч, у лошадей – до 24–47 ч. Раны с большим дефектом тканей, а также гнойные, колотые и огнестрельные лечат открытым методом (без наложения швов). Для этого вначале проводят первичную хирургическую обработку, включающую весь комплекс механической антисептики (туалет, частичное иссечение, контрактура), затем применяют химическую, биологическую, физическую антисептику, ране предоставляют покой. Необходимо обеспечить хороший отток из раны гнойного экссудата.

Химическая антисептика включает обработку раны 3%–ным раствором перекиси водорода на растворе фурацилина (1:5000), раствором калия перманганата (1–2%), раствором хлорамина (2%), припудривание сульфаниламидами и другими антисептиками, применение эмульсии Вишневского.

Биологическая антисептика (антибиотики, АСЛ, переливание крови, аутогемотерапия) сочетается с химической.

В физическую антисептику входит ультрафиолетовое облучение, сухое тепло, гигроскопические материалы, гипертонические растворы, повязки.

Перевязку раны делают в зависимости от показания; при большом выделении экссудата – каждый день, если повязка сухая и хорошо держится – через 4– дней. Для ускорения заживления ран применяется постоянное магнитное поле по той же методике, которая описана при ушибах.

Контрольные вопросы:

3 Понятие о хирургической травме ?

Тема: Основы экстренной помощи при патологиях у животных с Цель лекции: Познакомить студентов с патологиями животных различной этиологией. Научить диагностировать хирургические патологии.

Ключевые слова: тимпания, асфиксия, мочеполовая система.

План лекции:

1 ПВП при тимпании рубца и слепой кишки.

2 ПВП при асфиксии животных.

3 ПВП при патологии мочеполовой системы.

Острая тимпания рубца (tympania ruminus acuta) – быстро развивающееся вздутие рубца вследствие усиленного газообразования с уменьшением или прекращением отрыгивания газов. Тимпанию обычно разделяют на острую, подострю и хроническую форму. Однако на практике различают простую (наличие свободных газов) и пенистую тимпании.

Этиология. Переедание легко бродящих кормов: клевера, люцерны, вики, всходов озимых злаков, травы, покрытой инеем, кукурузных початков восковой спелости, листьев капусты и свеклы.

Опасность возрастает, если корма увлажнены дождем, росой или согрелись в куче. Поедание испорченных кормов: барды, дробины, загнивших корнеплодов, яблок, мороженого картофеля.

Причинами вторичной острой тимпании рубца являются закупорка пищевода, поедание ядовитых растений, вызывающих парез стенки рубца.

Физической причиной перистой тимпании рубца являются высокие вязкость и поверхностное натяжение рубцовой жидкости. Пенообразованию способствуют сапонины, пектиновые вещества, пектин– метилэстеразы, гемицеллюлозы и нелетучие жирные кислоты.

Симптомы. Болезнь развивается быстро: животное беспокоится, оглядывается на живот, часто ложится и быстро встает, отказывается от корма и воды, прекращаются жвачка и отрыжка, увеличивается объем живота, выравнивается голодная ямка. Дыхание напряженное, поверхностное, учащенное. Глаза выпуклые, животное проявляет страх. По мере нарастания тимпании движения рубца прекращаются, дыхание учащается, достигая 60– 80 движений в минуту, пульс увеличивается до сокращений в минуту и более. Способность к активному движению утрачивается.

Болезнь может закончиться летально в течение 2– 3 ч. Наиболее опасна пенистая тимпания.

Диагноз. Ставят на основании анамнеза и характерных клинических симптомов. Важно отличить первичную тимпанию от вторичной, простую от пенистой. Последняя развивается при поедании большого количества клевера, вики, люцерны.

Лечение. Для удаления газов из рубца используют следующие манипуляции: зондирование; вызывание отрыжки путем взнуздания животного толстой веревкой; в крайнем случае, прокол рубца троакаром, толстой иглой. Для адсорбции газов применяют парное молоко – до 3 л на прием, порошок животного угля, оксид магния – 20 г на прием корове и другие адсорбенты. В качестве анти бродильных средств назначают 10– 20 г ихтиола, 160– 200 мл тимпанола в 2 л воды, алкоголь, антибиотики внутрь.

При пенистой тимпании вводят смесь из растительного масла (до 500 мл) со спиртом (100мл), ихтиолом (30 г). Показан массаж рубца в течение 10– мин.

Профилактика. Нельзя выпасать животных на пастбище с бобовыми травами после обильной росы, холодного дождя.

2 ПВП при асфиксии животных.

Асфиксия. При недостатке растворимого в воде кислорода у рыб наблюдается асфиксия (удушье), которая нередко заканчивается гибелью рыб. Признаки кислородного голодания: постоянное нахождение рыб у поверхности воды и жадное заглатывание воздуха ртом.

При длительном содержании рыб в бедной кислородом воде они плохо поедают корм, отстают в росте, органы размножения дегенерируют (вырождаются, их функционирование ухудшается из поколения в поколение), и рыбы теряют способность к размножению. Особое значение приобретает количество растворимого в воде кислорода в период размножения рыб. При недостатке кислорода икра не развивается, а родившиеся личинки или мальки погибают либо остаются "затянутыми" даже при качественном и обильном кормлении.

Для предупреждения кислородного голодания и гибели рыб от асфиксии надо помнить, что:

– в аквариуме должно быть достаточное количество растений;

– зимой световой день необходимо поддерживать в течение 10– часов, летом – 15 часов;

– не следует давать рыбам лишнего корма;

– надо ежедневно удалять остатки не съеденного рыбами корма, отмершие части растений, погибшие водные организмы;

– нельзя допускать слишком уплотненной посадки рыб в аквариуме.

Рекомендовать точное количество рыб в расчете на 1 л воды чрезвычайно трудно, поскольку это зависит от объема и формы водоема, наличия аэрации воды, вида рыб, их размеров и биологических особенностей. Так, Е.Amiacher, немецкий специалист по болезням рыб, считает минимальным количеством воды на одну рыбу 5 л; наш соотечественник, автор книги "Аквариумное рыбоводство" М.Н.Ильин рекомендует посадку рыб без аэрации воды в аквариуме емкостью 40– 50 л в таком количестве, чтобы на каждую рыбу длиной до 5 см приходилось 2 л воды, длиной 8– 10 см – 3– 4 л и свыше см – 810 л;

– надо удалять из аквариума лишние водные организмы (особенно моллюсков) при значительном из размножении;

– в воде нерестовых и выростных аквариумов, где содержат молодь рыб, не достигшую половой зрелости, количество растворимого кислорода должно быть больше, чем в аквариумах, где содержат взрослых рыб;

– желательно 1– 2 раза в месяц проводить во всех аквариумах исследование воды на содержание в ней растворимого кислорода.

3 ПВП при патологии мочеполовой системы.

Органы мочеполовой системы включают почки, мочеточники, мочевой пузырь, мочеиспускательный канал (уретра), а также органы мужской репродуктивной системы – яички, эпидидимис, семявыносящий проток, семенные пузырьки, предстательную железу и половой член. Операции на надпочечниках могут проводить и урологи, и общие хирурги.

Операция при фимозе. Фимоз (греч. phimosis – сжатие) – сужение препуциального отверстия, препятствующее выведению пениса из препуциальной полости. Причиной может быть врожденное или приобретенное сужение в результате воспалительных процессов, травм, новообразований и рубцовых стягиваний листков препуциального отверстия.

Техника операции. Фиксируют животных в лежачем положении.

Операцию проводят под местной инфильтрационной анестезией, у крупных животных – под сочетанным обезболиванием.

После подготовки животного с дорсальной поверхности на 1 – 1,5 см рассекают кожные листки препуциального отверстия, проверяют на свободное выведение пениса из препуциальной полости. В тех случаях, когда его выведение затруднено, увеличивают разрез.

Рану обрабатывают антисептическим раствором. На внутренний и наружный кожный листок каждого края раны накладывают узловые швы из шелка. Ушитую рану обрабатывают и закрывают коллоидной повязкой. Швы снимают через 8–9 дней.

Парафимоз (греч. paraphimosis – ущемление, сужение отверстия) – ущемление пениса в препуциальном отверстии, выпадение пениса из препуциальной полости.

Техника операции. Операцию проводят под сочетанным обезболиванием при фиксации животного в боковом положении. Если пенис ущемлен из– за сужения отверстия препуция в результате увеличения объема органа и нет нарушений его тканей и другой патологии, то в этих случаях необходимо расширить препуциальное отверстие. Делают это путем рассечения кожных листков препуциального отверстия на 1–1,5 см с дорсальной его поверхности. После рассечения тканей пенис вправляют в препуциальную полость. На рану накладывают швы (как при фимозе).

В тех случаях, когда имеются большие травмы и другие изменения тканей пениса или паралич его нервов, его ампутируют.

Контрольные вопросы 1 Диагностика при тимпании рубца?

2 Терапевтические методы оказания помощи при асфиксии животных?

3 Инструменты для прокола рубца и слепой кишки?

3 Болезни мочеполовой системы?

для проведения лабораторного занятия по дисциплине Цель занятия: ознакомить студентов с методами фиксации и повала домашних и диких животных.

Оборудование и материалы: Животные, инструменты, ремни для повала и фиксации. Станки для фиксации животных. Операционные столы Виноградова и Жимайтиса. Зевники. Закрутки. Мыло. Вода. Полотенца.

Задание: Под руководством преподавателя студенты должны ознакомитьсяс различными методами фиксации и повалов животных. Уметь определять методы фиксации и повала животных в зависимости от показаний.

Методические указания Фиксация и повалы КРС. Проведение различных методов фиксации КРС в стоячем положении с использованием ремней и носовых фиксаторов (рис. 1). Проведение повалов КРС по Кавказскому, Итальянскому методу и методам Латифова.

Фиксация и повалы лошадей. Проведение различных методов фиксации лошадей в стоячем положении с использованием ремней и закруток.

Проведение повалов лошадей по Русскому, Берлинскому методам и методу Решетняка, а также специальному методу повала и фиксации для проведения кастрации жеребцов (рисунки 2, 3, 4).

спутывают веревкой или путовым ремнем. На область первой фаланги тазовой конечности со стороны, на которую валят животное, накладывают петлю веревки, сложенной вдвое. Концы веревки обводят вниз и назад над путовой веревкой и выводят их сзади от левой (или правой) грудной конечности в сторону. Затем один из концов веревки перебрасывают сверху через задний склон холки на сторону повала животного. При одновременном натяжении концов повальной веревки животное плавно ложится на бок. При этом один из помощников фиксирует голову, отводя ее в сторону, противоположную повалу. После повала при необходимости конечности фиксируют, как при русском способе повала.

Рис. 3. Берлинский способ повала Рис. 4. Фиксация лошади в боковом Фиксация собак. Собак фиксируют на столе в стоячем или сидячем положении. Фиксировать животных в этих случаях должен их владелец. При проведении лечебно– профилактических манипуляций обязательно должны быть связаны челюсти или надет намордник. Челюсти связывают тесьмой или бинтом. Делают петлю и надевают ее на морду так, чтобы концы тесьмы находились сверху. Затем их опускают вниз, завязывают одним простым узлом под подбородком и, проведя за ушами, бантиком на затылке.

При фиксации в спинном положении собаку кладут спиной на стол.

Один помощник удерживает голову и грудные конечности, другой привязывает тазовые конечности к столу. Грудные конечности располагают вдоль спины. Конец тесьмы правой конечности проводят под спиной и над левым предплечьем, а другую тесьму таким же образом переводят на противоположную сторону. Натягивая тесьму, конечности прижимают к туловищу и фиксируют, затем привязывают к столу голову животного.

Контрольные вопросы.

Фиксация лабораторных животных?

для проведения лабораторного занятия по дисциплине Тема: Стерилизации хирургического инструмента, перевязочного, Цель занятия: Ознакомить студентов с методами стерилизации хирургического инструмента, перевязочного, шовного материала.

Оборудование и материалы: Инструменты и дезинфицирующие средства. Мыло. Вода. Полотенца. Тазы. 0,5 % раствор нашатырного спирта.Растворы спирта 70 и 96%. Растворы сульфата цинка 3%, йода 5%, йодированного спирта в соотношении 1:1000– 3000. Автоклав.

Стерилизаторы.

Задание: Под руководством преподавателя студенты должны ознакомиться с явлениями хирургической инфекции у лабораторных животных (собака, кролик, морская свинка и др.). Уметь проводить стерилизацию инструментов.

Методические указания Стерилизация шовного материала. Для хирургического шва и наложения лигатур используют шелковые, льняные, хлопчатобумажные и синтетические нитки, а также кетгут готовые в стерильном виде.

Стерилизация шелка. Нити шелка выпускают либо в мотках длиной 8 м различной толщины – 13 номеров: от № 000 до № 10 (не стерильный), либо в ампулах (стерильный).

Способ Садовского. Мотки шелка моют сначала в горячей воде с мылом в течение 2 мин, затем его споласкивают, наматывают на катушки и погружают на 15 мин в 0,5% – ный раствор нашатырного спирта, а после этого на 15 мин в 2% – ный раствор формалина на 70% – ном спирте.

Стерилизация хлопчатобумажных и льняных ниток. Эти нитки обладают меньшей прочностью, чем шелковые. Обычно пользуются нитками № 10– 20, которыми зашивают дефекты кожи; при шве на внутренних органах применяют более тонкие номера. Стерилизуют хлопчатобумажные и льняные нитки по способу Садовского или погружают на 24 ч в 4% – ный раствор формалина.

Стерилизация кетгута. Кетгут обладает свойством рассасываться в тканях животного организма в сроки от 7 до 30 дней. Его применяют для погружных швов. Обработка кипячением или другим способом с применением высокой температуры исключается. Выпускают кетгут или в мотках, требующих стерилизации, или стерильным в запаянных ампулах.

Способ Покотило. Кетгут помещают на 72 ч в 4% – ный водный раствор формалина. Там же хранят.

Способ Губарева. Кетгут обезжиривают в течение 12 ч в бензине, затем высушивают и погружают на 14 дней в 1% – ный спиртовой раствор йода и калия йодида. Иод берут в отношении к калию йодиду как 1:2 в этом растворе и хранят.

Способ Садовского – Котылева. Кетгут помещают на 30 минут в 0,5 % – ный раствор нашатырного спирта, затем переносят на 30 мин в 2 % – ный раствор формалина на 65% – ном спирте, в котором и хранят до употребления.

Способ стерилизации конского волоса. Волос тщательно моют с мылом (при этом многократно меняют воду) до тех пор, пока мыльная пена не станет совсем белой. Высушивают стерильным полотенцем и сматывают в колечки. Опускают на 7 сутки в бензин для обезжиривания. Извлекают из бензина и кипятят в воде в течение 40 мин, меняя воду до исчезновения ее окраски.

Стерилизация синтетических нитей. Широко употребляют нитки из нейлона, полиакримида, лавсана, капрона; внешне и по своим основным свойствам они напоминают крученый шелк. Стерилизуют эти нитки кипячением в течение 20 минут, они теряют свою прочность при температуре выше 100°С.

Стерилизация перевязочного материала, белья и предметов хирургического обихода. Стерилизация автоклавированием.

Продолжительность стерилизации зависит от показании манометра;

при 1,5 атм (126,8°) – 30 мин, или 2 атм. (132,9°) – 20 мин.

Стерилизация текучим паром осуществляется либо в специальном текучим паровом стерилизаторе Коха, либо (при его отсутствии) используют кастрюлю или ведро с крышкой или бикс (рис.5).

Стерилизация утюжением белья и перевязочного материала допускается только в тех случаях, если нельзя применить другие способы стерилизации. Обычно температура утюга достигает 150 °С.

Стерилизацией обжиганием обрабатывают только эмалированную и фарфоровую посуду: тазы, ванночки и т. п. Для этого внутреннюю их поверхность и края обрабатывают горящим тампоном, пропитанным денатурированным спиртом.

Контрольные вопросы.

1 Что такое хирургическая инфекция, виды ?

2 Виды стерилизаторов ?

3 Методы стерилизации шовного материала ?

4 Стерилизация перевязочного материала?

для проведения лабораторного занятия по дисциплине Цель занятия – ознакомиться с лекарственными формами, изучить методы и способы введения лекарственных веществ. Определить лечебные и токсические дозы согласно наставлениям и инструкциям к препаратам.

Изучить правила отпуска и хранения лекарственных препаратов. Ознакомить студентов с методами кровопускание.

Оборудование и материалы: Инструменты и дезинфицирующие средства. Мыло. Вода. Полотенца. Тазы. 0,5 % раствор нашатырного спирта.Растворы спирта 70 и 96%. Растворы сульфата цинка 3 %, йода 5%, йодированного спирта в соотношении 1:1000– 3000. Автоклав.

Стерилизаторы.

Задание: Под руководством преподавателя студенты должны делать инъекции и пустить кровь. Уметь определять виды кровотечения.

1. Ознакомьтесь с существующими лекарственными формами и определите способы их применения.

2. В зависимости от способа введения рассчитайте дозы применения лекарственных препаратов.

3. Освойте практически методы перорального ипарентерального методов введения (per os, ректально, подкожно, внутримышечно, внутривенно, внутрибрюшинно и т.д.).

4. Примите экстренные меры первичной помощи возможных осложнении при введении лекарственных препаратов (попадание в дыхательные пути, анафилактический щок, тромбофлебиты и эмболии при внутривенном введении и т.д.) 5. Изучите правила хранения и отпуска сильнодействующих и ядовитых препаратов.

Методические указания Подкожные инъекции. Подкожная клетчатка – рыхлая неоформленная соединительная ткань. Подкожная клетчатка богата лимфатическими капиллярами, обладает весьма хорошо выраженной и сравнительно быстрой всасывающей способностью (резорбцией).

Подкожные введения осуществляют в те места, где хорошо развита подкожная клетчатка. У крупных животных это боковая поверхность шеи (выше яремного желоба), позади лопаточной области, подгрудок, у свиней – область шеи у основания уха, внутренняя поверхность бедра, у собак и кошек – шея, боковая грудная стенка и внутренняя поверхность бедра.

Внутримышечные инъекции. Обычно их делают в ягодичную область, заднебедренную группу мышц, трехглавую мышцу плеча или в плечевую часть грудной мышцы. Прочную, с острым скосом на конце иглу без шприца вкалывают перпендикулярно поверхности кожи. Присоединяют шприц и инъецируют раствор. Глубина укола иглы зависит от упитанности животного и толщины мышечного слоя. Нежелательно вводить иглу в ткани на всю длину, так как бывают случаи переломов иглы около муфты, и извлечь ее в этих случаях достаточно трудно. По окончании инъекции прижимают кожу пальцами и извлекают иглу, а место укола обрабатывают 5%– ным спиртовым раствором йода.

Рис. 6. Шприцы: 1 – «Рекорд»; 2 – Люэра; 3 – Жанэ; 4 – «Рекорд»– Правац Внутривенные вливания. Широко применяют в ветеринарной практике. Преимущество этого способа – быстрота введения и эффективность действия лекарственных средств на организм, что особенно важно при недостаточной сердечной деятельности, шоке, коллапсе и других тяжелых заболеваниях органов и систем животного. Лошадям и верблюдам внутривенные вливания осуществляют через яремную вену, в некоторых случаях через наружную грудную вену; крупному рогатому скоту – через яремную вену, можно и через подкожную вену живота, собакам и кошкам – через плюсневую дорсальную латеральную вену, подкожную вену предплечья и яремную вену; свиньям – через большую ушную вену и краниальную полую вену; птицам – через подкожную локтевую вену.

Небольшие количества растворов вводят в вену при помощи шприца. В других случаях используют аппарат Боброва, шприц Жанэ на 200 мл без поршня, стеклянную воронку и другие инфузионные аппараты (рис. 6). На канюлю инфузионного аппарата (шприц Жанэ, воронку и др.) надевают резиновую трубку длиной 50– 80 см, другой конец ее присоединяют к кровопускательной игле.

Внутривенные вливания у собак и кошек. Животных фиксируют в боковом положении. После подготовки поля операции помощник сдавливает пальцами рук конечность в верхней трети голени или плеча (рис. 6). Когда вена наполнится кровью и станет более упругой, делают пункцию иглой, присоединенной к шприцу, направляя конец иглы по току крови. При попадании иглы в вену (в шприц поступает кровь) прекращают сдавливание конечности и медленно вводят раствор. После введения место укола прижимают асептическим тампоном, извлекают иглу и обрабатывают место укола раствором йода.

Вливание в подкожную локтевую вену птиц. Вена расположена под кожей в области плеча, предплечья. Вблизи локтевого сустава выщипывают перья. Нажав пальцами выше локтя, находят наполненную вену. Пункцию делают тонкой иглой, присоединенной к шприцу, наполненному вводимым раствором (рис. 7).

Прокол стенки какой– либо полости (грудной, брюшной), а также капсул суставов, бурс сухожильных влагалищ и других полостей делают с диагностической и лечебной целями. Техника выполнения его будет дана в соответствующих разделах.

Рис. 7. Приспособления для внутривенных вливаний:

а – аппарат Боброва; б – воронка; в – бутыль; г – ;аппарат Конькова;

Биопсия. Биопсией называют иссечение кусочков тканей или органов для микроскопического исследования с целью уточнения диагноза болезни.

Она может производиться как во время операции, так и до нее. Полученный кусочек ткани немедленно помещают в 10%–ный раствор формалина (иногда в спирт) и направляют в лабораторию для гистологического исследования.

Рану на месте взятого кусочка ткани зашивают.

Контрольные вопросы:

1. Формы лекарственных препаратов.

2. Методы применения лекарственных препаратов.

3. Расчет дозы в зависимости от способов применения.

4. Понятие о лечебных, токсических и летальных дозах.

5. Возможные осложнения при введении лекарственных препаратов и их профилактика.

6. Правила хранения и отпуска лекарственных препаратов в ветеринарии для проведения лабораторного занятия по дисциплине Цель занятия: изучить методы соединения мягких тканей с целью остановки кровотечения. Отработать практически навыки на животном и трупном материале, приемы владения всех видов инструментов для соединения мягких тканей. Освоить механически метод остановки кровотечения, принципы соединения тканей и техника наложения различных видов швов: кожных, мышечных, фасциальных и кишечных снятие кожных швов.

Оборудование и материалы: Инструменты и дезинфицирующие средства. Иглы разной величины. Кетгут, шелк, хлопчатобумажные и синтетические нити.

Задание: Под руководством преподавателя студенты должны научится, шит хирургические дефекты. Должны научится завязывать нити хирургическим и морским узлом.

Методические указания 1. Отработайте технику вначале на трупах, затем на живых объектах послойного способа соединения тканей. Отработайте технику правильного держания хирургических инструментов и практическое владение ими.

2. Установите вид кровотечения, выберите один из способов остановки кровотечения. Отработайте навыки по временной и окончательной остановке артериального, венозного и капиллярного кровотечений.

3. Отработайте технику соединения тканей с соблюдением все правил и условия наложения всех видов швов (тщательная остановка кровотечения, удаление сгустков крови, послойное соединение тканей, хорошая кооптация краев раны, равномерность наложения шва), добиваясь заживления раны первичным натяжением.

4. Отработайте технику наложения кишечных швов.

5. После заживления раны отработайте технику снятия кожных швов.

Виды швов: Прерывистые швы (Узловой шов, ситуационный шов, петлевидный шов, шов с валиками); Непрерывные швы (Скорняжный шов, матрацный шов, кисетный шов).

Виды кишечных швов: Шов Шмидена, Шов по Ламберу, Шов Плахотина, Шов по Пирогова –Черни Непрерывные швы. К непрерывным швам прибегают при ушивании ран слизистой оболочки, реже – фасций и мышечной ткани, когда отсутствует зияние раны и не нужно усилий для сближения ее краев, а также при погружных швах на брюшной стенке.

Скорняжный шов (рис. 8) наиболее распространенный. Для его выполнения достаточной длины нить вдевают в ушко иглы так, чтобы один конец был значительно короче другого.

Рисунок 8. 1 – одноэтажный шов Ламбера; 2– непрерывный шов Ламбера; 3 – шов Шмидена; 4 – шов Плахотина: а – наложение шва; б – вид шва после стягивания Первый стежок делают вблизи угла раны, сблизив ее края до полного соприкосновения. В месте выхода иглы завязывают первый стежок морским узлом. Последующие стежки делают на одинаковых расстояниях от краев раны (0,5– 0,75 см) с равными промежутками. При этом нить должна лежать на поверхности раны в косом направлении, а в глубине – перпендикулярно ее краям. Чтобы предупредить при каждом последующем введении иглы ослабление нити, помощник подхватывает ее и слегка натягивает скобки и обеспечивая плотное прикасание краев Серозно– мышечные швы, при которых прокалывают только серозный и мышечный слои, чем обеспечивается высокий уровень герметичности раны, обычно накладывают как второй шов.

Серозно– мышечный шов может быть прерывистым и непрерывным, в частности кисетным (при круглых ранениях). Его можно накладывать по способам Ламбера или Плахотина.

Прообразом современного кишечного шва является шов Ламбера, применяемый в виде узлового или непрерывного шва как самостоятельно, так и в сочетании с другими. Для наложения шва иглу вкалывают на расстоянии 1 см от края раны, проводят только через серозный и мышечный слои кишки и, не повреждая слизистой оболочки, выводят наружу на расстоянии 0,3– 0,4 см от края раны. За тем переходят на другой край раны, вкалывая иглу на расстоянии 0,3– 0,4 см от края и выводя наружу на расстоянии 1 см от края раны. При затягивании нити первый шов погружается внутрь, а серозные оболочки противоположных сторон соприкасаются одна с другой.

При наложении на операционную рану полых органов первого шва по Шмидену края раны погружаются в просвет полости органа, что отрицательно влияет на заживление раны и способствует возможному образованию язвы. Учитывая это, К. А. Петраков предложил принципиально новый способ соединения краев раны полых органов. Суть его в том, что края раны соединяют между собой ели чистыми оболочками и, отступив 0,2– 0,5 см (в зависимости от размера полости) от края раны, накладывают скорняжный шов. В этом случае ушитая рана оказывается за пределами просвета полости органа. Затем накладывают второй серозно – мышечный шов, который кроме герметичности обеспечивает кооптацию краев раны и закрытие ее серозной оболочкой.

Такой способ ушивания раны успешно применяют при операциях на кишках, желудке, мочевом пузыре у собак и кошек, рубце у коров.

Шов Плахотина (серозно – мышечный). Напоминает матрацный шов.

Отличается от него тем, что каждый следующий стежок на другой стороне располагают, отступив на 1/3 длины назад по отношению к предыдущему стежку. При стягивании нити шов полностью закрывает предыдущий ряд шва, обеспечивая широкое соприкосновение серозных оболочек. Такой шов может быть и однорядным. Начинается шов Плахотина швом по Ламберу (прерывистым) с целью погружения узла вглубь.

При наложении кишечных швов следует соблюдать общее правило:

внутренние швы чаще делают кетгутом и непрерывными, наружные – шелком и отдельными узловыми стежками.

Двухрядный шов Пирогова– Черни. Накладывают на стенку мочевого пузыря. В первом ряду иглу вкалывают со стороны серозной оболочки, а выводят в просвет раны между слизистой и мышечной оболочками; затем вводят ее между этими оболочками другого края раны, а выводят на поверхности серозной. После завязывания узлов накладывают второй ряд шва по Ламберу.

Сухожильные швы. Их применяют при ранениях и пластике сухожилий. Наложение их требует полного расслабления мышцы после предварительного наркоза или проводниковой анестезии. В качестве шовного материала обычно используют сулемовый шелк или лавсановую нить. Шов накладывают круглыми иглами, так как Контрольные вопросы.

1 Техника наложения кожаных швов ?

2 Техника наложения кишечных швов?

3 Техника снятия швов ?

4 Скобы Мишеля?

для проведения лабораторного занятия по дисциплине Тема: Способы и техника общего обезболивания. Местная анестезия.

характеристику наркотических средств, способы применения наркоза на различных видах животных, стадий наркоза, возможные осложнения при наркозе. Изучить виды местного обезболивания. Определения состояния анестезии и аналгезии у животного.

Оборудование и материалы: Инструменты и наркотические средства.

0,5 % раствор нашатырного спирта. Растворы спирта 70 и 96%.

Нейролептики: рампун, рометар, кслазин, кетамин.

Задание: Под руководством преподавателя студенты должны ознакомиться делать наркоз с лабораторными животными (собака, кролик, морская свинка и др.). Уметь определять стадии наркоза.

Методические указания Течение наркоза: Наиболее типично протекает ингаляционный наркоз, при котором устанавливают четыре стадии.

Первая стадия (анальгетическая) характеризуется некоторым беспокойством животного, болевые ощущения и другие виды чувствительности несколько понижены, дыхание глубокое и равномерное, пульс частый и полный, зрачок расширен, движения глазного яблока произвольны. Рефлексы и мышечный тонус сохранены.

Вторая стадия (возбуждение) сопровождается потерей сознания в результате торможения центров ассоциации (фармакологическая декортикация) и движения. Наряду с этим усиливаются рефлексы и повышается мышечный тонус. Появляется беспокойство, дыхание неравномерное и временами учащенное, зрачок расширен. У лошади и крупного рогатого скота появляется нистагм, усиливается секреция слюнных, бронхиальных и слезных желез, резко повышается глотательный рефлекс, появляется рвота. Пульс полный, учащенный и аритмичный, кровяное давление повышено.

Третью стадию (хирургическую, или толерантную) делят на четыре периода. В первом периоде наркоз становится глубоким, дыхание равномерное, рефлексы, хотя еще сохранены, но значительно ослаблены, секреция желез и мышечный тонус начинают уменьшаться. Во втором периоде мышечный тонус резко ослабевает, рефлексы начинают исчезать, кроме глазных, зрачок сужен до предела, глазное яблоко повернуто вниз. В третьем периоде, наступает полный, лишенный рефлексов наркоз (кроме роговицы) с ровным, но неглубоким дыханием, которое становится все более поверхностным и может быть отрегулировано только ингаляцией углекислоты. Зрачок несколько расширен, роговичный рефлекс начинает ослабевать, резко ограничивается секреция желез, она еще несколько остается только у жвачных.