1

Федеральное государственное образовательное учреждение

высшего профессионального образования

Московская государственная академия ветеринарной медицины и

биотехнологии имени К. И. Скрябина

На правах рукописи

Ермолова Юлия Сергеевна

ОБРАБОТКА ЯИЦ КУР БИОЛОГИЧЕСКИ АКТИВНЫМИ

ПРЕПАРАТАМИ ДЛЯ СТИМУЛЯЦИИ РЕЗИСТЕНТНОСТИ

ЦЫПЛЯТ НА РАЗЛИЧНЫХ СТАДИЯХ ОНТОГЕНЕЗА

06.02.05 – ветеринарная санитария, экология, зоогигиена и ветеринарно-санитарная экспертиза Диссертация на соискание ученой степени кандидата биологических наук

Научный руководитель: заслуженный деятель науки Российской Федерации, доктор сельскохозяйственных наук, профессор М.С. Найденский Москва –

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ…………

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Применение естественных метаболитов и комплексных препаратов на их основе для стимуляции роста и развития животных

1.2. Применение тканевых препаратов для повышения естественной резистентности животных

1.3. Биологическая роль микроэлементов и их влияние на обмен веществ, здоровье и продуктивность животных

ГЛАВА 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материал и методы исследований

2.2. Результаты исследований

2.2.1. Первая серия экспериментов – эффективность предынкубационной обработки яиц растворами АСД Ф-2

2.2.1.1. Опыт 1

2.2.1.1.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.1.2. Опыт 2

2.2.1.2.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.1.2.2. Анатомические показатели цыплят

2.2.1.2.3. Некоторые показатели неспецифической резистентности

2.2.1.2.4. Биохимические исследования сыворотки крови...... 2.2.1.2.5. Зооветеринарные показатели

2.2.1.3. Опыт 3

2.2.1.3.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.2. Оптимизация эффекта применения препарата АСД путем двукратной обработки яиц

2.2.2.1. Опыт 4

2.2.2.1.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.2.2. Опыт 5

2.2.2.2.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.2.2.2. Анатомические показатели цыплят

2.2.2.2.3. Некоторые показатели неспецифической резистентности

2.2.2.2.4. Гематологические исследования

2.2.2.2.5. Биохимические исследования сыворотки крови...... 2.2.2.2.6. Зооветеринарные показатели

микроэлементов

2.2.3.1. Опыт 6

2.2.3.1.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.3.2. Опыт 7

2.2.3.2.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.3.2.2. Анатомические показатели цыплят

2.2.3.2.3. Некоторые показатели неспецифической резистентности

2.2.3.2.4. Биохимические исследования сыворотки крови...... 2.2.3.2.5. Зооветеринарные показатели

2.2.4. Четвертая серия экспериментов – эффективность двукратной обработки яиц растворами комплекса микроэлементов

2.2.4.1. Опыт 8

2.2.4.1.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.4.2. Опыт 9

2.2.4.2.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.4.3. Опыт 10

2.2.4.3.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.4.4. Опыт 11

2.2.4.4.1. Показатели биоконтроля инкубации

2.2.4.4.2. Анатомические показатели цыплят

2.2.4.4.3. Некоторые показатели неспецифической резистентности

2.2.4.4.4. Гематологические иследовния

2.2.4.4.5. Биохимические исследования сыворотки крови.... 2.2.4.4.6. Зооветеринарные показатели

2.2.4.5. Производственная проверка

ГЛАВА 3. ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ.......... ВЫВОДЫ……

СВЕДЕНИЯ О ПРАКТИЧЕСКОМ ИСПОЛЬЗОВАНИИ

РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЙ

РЕКОМЕНДАЦИИ ПО ИСПОЛЬЗОВАНИЮ НАУЧНЫХ

ВЫВОДОВИ…

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЯ

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы Промышленное птицеводство как самая наукоемкая и динамичная отрасль АПК вносит весомый вклад в обеспечение населения развитых стран продовольствием. За последние 20 лет среднегодовой прирост яиц и мяса в мире превышает 4% (Фисинин В.И., 2006). Эффективность птицеводства во многом зависит от результатов инкубации яиц и жизнеспособности молодняка птицы.

Доля влияния генотипа на выводимость яиц составляет 15%, а на сохранность молодняка 5%, тогда как доля влияния внешних факторов 85% и 95% соответственно (Кочиш И.И. и др., 2007). За 2008 г. гибель птицы от болезней составила 47,2 млн. гол. или 3,8% от всего поголовья. Сохранность молодняка птицы не превышала 93,2%, а яичных кур 96,2% (Фисинин В.И., 2009).

С применением новых технологических схем, направленных на повышение яйценоскости, нагрузка на организм птицы значительно возрастает. Нарушения в кормлении и содержании родительского стада кур могут спровоцировать заболевания и повышенный падеж поголовья, а также снижение инкубационного качества яиц (Забудский Ю.И., 2004; Бессарабов Б.Ф., 2007; Фисинин В.И., 2009).

В связи с этим большое значение приобрела проблема использования физических и химических стимуляторов для профилактики заболеваний и повышения продуктивности птицы на различных стадиях онтогенеза, включая и эмбриональный период (Szymkiewics M.M. et. al., 1985;

Mazurkievicy M. Et al., 1992; Забудский Ю.И., 2002; Кочиш О.И., 2006;

Кочиш И.И. и др., 2008; Егоров И.А., Имангулова Ш.А., 2005).

Однако многие аспекты вышеуказанной проблемы требуют дальнейшей разработки и обоснования. Особенно эффективно применение различных стимуляторов на ранней стадии онтогенеза, когда организм наиболее реактивен и пластичен.

В связи с этим актуален поиск возможностей прогнозирования результатов инкубации и управления эмбриональным развитием птицы для получения молодняка высокого качества, что имеет важное зоотехническое и экономическое значение (Naidensky M.S., 1996; Дядичкина Л.Ф, 2008).

Поэтому необходима разработка комплекса зоогигиенических мероприятий, направленных на повышение резистентности организма цыплят на различных стадиях онтогенеза путем целенаправленного применения эффективных адаптогенов.

К таким препаратам относятся некоторые естественные метаболиты (органические кислоты: сукцинат, фумаровая кислота, глицин и другие), а также тканевые препараты, которые применяются в животноводстве, как эффективные стимуляторы при выращивании и откорме с.-х. животных и птиц, а также для профилактики заболеваний.

использовали отечественные препараты комплексного действия: АСД фракция 2 (АСД Ф-2), а также органический комплекс микроэлементов.

низкомолекулярные компоненты, которые по своей структуре аналогичны метаболитам клеточного обмена и, следовательно, свойственны живому организму. АСД обладает нейротропным, холиномиметическим действием, неспецифическую резистентность.

повышения жизнеспособности телят, поросят и цыплят (Дерябина З.И., 1980 г.; Графов Д., Бесарабов Б., Гонцова Л., 2007 г. и др.).

Однако несмотря на выполненные исследования до сих пор не изучена эффективность применения АСД для обработки инкубационных яиц с целью повышения резистентности цыплят на различных стадиях онтогенеза.

В последнее время для восполнения дефицита микроэлементов и аминокислот фирмой «А-Био» разработан комплексный препарат под коммерческим названием Ферропептид, который содержит микроэлементы (Fe, Cu, Co, Zn, Mn, Se и J2) в комплексе с декстраном и их хелаты, а также пептиды (ферментативный гидролизат соевого белка).

Железо (III) в комлексе с декстраном 5, Медь в комплексе с железом-декстраном 0, Кобальт в комплексе с железом-декстраном 0, Селен в комплексе с железом-декстраном 0, Данный препарат предназначен для алиментарного применения.

Впервые действие его на эмбриональное развитие мясных цыплят было изучено член-корр. РАСХН, профессором Кочишем И.И. и аспирантом Боруком В.В.

Однако влияние этого препарата на эмбриональное развитие цыплят яичных кроссов еще не изучено.

Цель и задачи исследований инкубационных яиц растворами АСД Ф-2, а также комплекса микроэлементов для стимуляции эмбрионального и постэмбрионального развития цыплят кросса «Птичное».

Для достижения указанной цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить влияние предынкубационной обработки яиц растворами постэмбрионального развития цыплят.

3. Установить влияние вышеуказанных препаратов на некоторые анатомические, гематологические и биохимические показатели 4. Изучить длительность последействия препаратов на рост и резистентность цыплят.

5. Определить экономическую эффективность оптимальных схем применения АСД Ф-2 и комплекса микроэлементов.

Научная новизна Впервые изучено влияние обработки инкубационных яиц кур кросса микроэлементов на эмбриональное и постэмбриональное развитие цыплят.

Дано биологическое и зоотехническое обоснование оптимальных концентраций и схем применения препаратов. Доказано, что оптимальная концентрация препаратов при двукратной обработке яиц (перед и на 19-е сутки инкубации) повышает вывод кондиционного молодняка, естественную резистентность и некоторые биохимические показатели цыплят, улучшает рост и развитие молодняка.

На защиту выносятся следующие положения диссертации:

цыплят и повышения их резистентности.

2. Использование растворов препарата комплекса микроэлементов резистентности цыплят на различных стадиях онтогенеза.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Применение естественных метаболитов и комплексных препаратов на их основе для стимуляции роста и развития животных выполнением ветеринарно-санитарных и гигиенических требований произошло снижение как вывода цыплят, так и резистентности полученного молодняка. Так, вывод цыплят яичных кроссов колеблется от 62 до 85%, при нормативном уровне не менее 80%, а сохранность молодняка – всего 87,7% (Фисинин В.И., 2004). Поэтому повышение вывода кондиционных цыплят при минимальных дополнительных затратах и без существенного изменения технологии инкубации имеет важное экономическое значение (Забудский Ю.И., 2000; Кочиш И.И. и др., 2007).

В настоящее время широкое распространение получило применение сельскохозяйственных животных, и в частности органических кислот янтарная и аминоуксусная кислоты (глицин), а также комплекс препаратов, полученных на их основе - митомин, лимонтар, эмицидин и другие.

Янтарная кислота, ЯК, сукцинат (бутандиовая кислота, этан- 1,2дикарбоновая кислота), общей формулы: HOOC–CH2–CH2–COOH, образуется в цикле трикарбоновых кислот Кребса, обеспечивающей энергетические потребности организма. Установлено, что янтарная кислота и ее соли обладают адаптогенной способностью, оказывая антиоксидантное, антистрессовое и нейротропное действия, нормализуют энергетический, углеводный обмены, общее физиологическое состояние организма, усиливают биохимические и физиологические восстановительные процессы в различных органах в условиях патологии и интенсивной физической нагрузки и устраняет метаболический ацидоз. В организме действие сукцината реализуется через регуляторные центры – гипоталамус и надпочечники. (Bindoli A. Et al., 1982; Найденский М.С., Нестеров В. В., и др., 1999; Нестеров В.В., Тотоева М.Э., Волчкова Л.А., 2003).

Янтарная кислота является универсальным антистрессовым препаратом и с этой целью широко применяется в медицине, ветеринарии и животноводстве (Aberle E.D., Morkol R.A., 1974; Velon S.M., Tomas S., 1981;

Toutain P.L., 1985; Tretter L. Et al, 1987; Kondrashova M.N. et al., 1991;

Rafal P., 1994).

Глицин (гликокол) - является простейшей аминоуксусной кислотой, используется в организме для синтеза парных желчных кислот, глутатиона, креатинина, серина, коламина, пуринов и порфиринов. При недостатке глицина в рационе замедляется рост молодняка, снижается конверсия корма и повышается гибель птицы. Обмен глицина связан с метаболизмом триптофана, метионина, серина, бетаина, холина и креатина (Нестеров В.В., Тотоева М.Э., Волчкова Л.А., 2003).

Митомин – комплексный препарат, включающий янтарную кислоту, витамин С и фруктозу, с широким спектром действия: способствует активации энергетического обмена во всех тканях организма, повышает его устойчивость к воздействию окружающей среды, стимулируя иммунную систему.

Эмицидин – производное 3-оксипиридина и янтарной кислоты, водорастворимый антиоксидант нового поколения, обладающий выраженным антигипоксическим эффектом. Механизм его действия заключается в способности нейтрализовать в организме свободные радикалы, разрушающие клетки.

В последние годы под руководством профессора Найденского М.С.

сотрудниками и аспирантами кафедры зоогигиены им. А.К. Даниловой разработан ряд методов по обработке инкубационных яиц кур с целью стимуляции жизнеспособности цыплят, начиная с ранних стадий эмбриогенеза водными растворами сукцината, сукцинатсодержащими и другими биологически активными препаратами (Найденский М.С., Лазарева Н.Ю., Констанди О.Х., 2000; Кочиш И.И., Найденский М.С., Азарнова Т.О., Краснобаев Ю.В., 2008) По данным ряда авторов (Лазарева Н.Ю., 1998; Агеева К.М., 2006;

Кочиш И.И., Найденский М.С., Елизаров Е.С., 2007) установлено, что при обработке инкубационных яиц кур яичных и мясных кроссов растворами янтарной кислоты увеличивается выводимость яиц на 2-5,3%, а вывод кондиционного молодняка на 2-5%. При этом повышаются энергетический, белковый, липидный обмены, а также естественная резистентность цыплят.

В.А. Грицюк (2000) был получен положительный эффект от однократной аэрозольной обработки яиц кур кросса «Ломан коричневый»

0,3% раствором янтарной кислоты, при этом выводимость яиц увеличилась на 2,28-11,8%, живая масса в 20-дневном возрасте – на 5,4-7,5%. Однако, ростостимулирующий эффект продолжался не более первых 2-х декад постэмбрионального развития.

Исследования С.С. Бурлакова (2001) показали, что предынкубационная обработка яиц мясных кур кросса «Исса-Ведетте» 0,3% растворами комплекса препаратов (глицин+янтарная кислота+крезацин или глицинат меди+янтарная кислота+крезацин) оказала положительное влияние на развитие эмбрионов и цыплят, что выразилось в повышении выводимости яиц и вывода кондиционных цыплят на 6,2-6,0% (р‹0,001) и 5,9-6,5% (р‹0,001) соответственно. При этом установлен эффект длительного физиологического последействия, который выразился в увеличении живой массы бройлеров на 4,4-7,8% и сохранности на 6,6-7,6% по сравнению с контролем.

Т.О. Азарнова (2006) обрабатывая инкубационные яйца кур яичного кросса «Хайсекс-белый» по следующей схеме: 0,1% комплекса янтарной кислоты и глицина до инкубации, а при переводе на вывод 0,5% раствором янтарной кислоты, получила увеличение выводимости яиц и вывода цыплят на 9,66% (р‹0,001) и 9,67% (р‹0,001) соответственно.

Тотоева М.Э., 2004 отметила, что предынкубационная обработка яиц 0,5% раствором митомина (янтарная кислота+витамин С) стимулирует эмбриогенез уже на ранних стадиях развития: через 48 часов инкубации количество пар сомитов возросло на 20,0%, диаметр сосудистого поля на 21,7%, длина эмбриона на 22,2%, по сравнению с контролем. В дальнейшем увеличилась масса эмбрионов и выводимость яиц на 5,3%-15,4%.

Последующее алиментарное применение препарата улучшило ряд гематологических и биохимических показателей. В крови повысилось содержание гемоглобина и эритроцитов на 11,6 и 8,8%, а также активность ферментов (каталазы и пероксидазы) и содержание аскорбиновой кислоты на 12,4, 19,4 и 21% соответственно. Общий белок в сыворотке крови повысился на 22,6%, содержание альбуминов и гамма – глобулинов возросло на 8,1 и 33% соответственно. Увеличилась лизоцимная и бактерицидная активность сыворотки крови на 60% и 28,5% по сравнению с контролем.

Аналогичные данные получила при обработке яиц перепелов Кузьмина С.В. (2006).

По данным О.И. Кочиш (2005) при комбинированном использовании 0,3%-ного раствора митомина и 0,0015%-ного раствора эмицидина для предынкубационной обработки яиц мясных кур достоверно повысились выводимость яиц на 5,5%, вывод цыплят на 5,3%; сохранность молодняка на 3,1%.

В сыворотке крови суточных цыплят, полученных из яиц, обработанных митомином и эмицидином достоверно возросло содержание общего белка на 3,0-4,6%, трансферинов на 28,1-66,7%, Fe на 6,2-7,0%, Mn на 44,4-55,6%, Ca на 12,6-20,3%.

Кроме вышеуказанных препаратов в последние годы широкое распространение получили фитопрепараты, в т.ч. рибав.

Рибав – спиртовой (65%) экстракт из биомассы микоризных грибов, выделенных из корня женьшеня, и включает в себя комплекс биологически активных веществ – продуктов синтеза грибов: витаминов, аминокислот, фитогормонов, липидов, фосфорсодержащих соединений, стимулирующих жизнеспособность организма.

Данный препарат обладает широким спектром фармакологического действия: иммуностимулирующей и гепатозащитной активностью, антитоксическим и ростостимулирующим действием. Кроме того, рибав способствует повышению питательной ценности продукции птицеводства и улучшению его экологического состояния за счет снижения содержания нитритов, нитратов и солей тяжелых металлов (Азарнова Т.А., 2006).

Соломатин М.В. (2005) доказал стимулирующее влияние рибав на птиц, даже при однократном пероральном применении в дозе 0,25 мл/кг на клеточные факторы иммунитета.

Онокиенко Н.И., Головирина Л.И., Газзави Л.В., Черный Н.В. (2006) применяли рибав в дозе 0,5 мл. на 1кг веса цыплятам кросса «Кобб-500» с 5суточного до 42-суточного возраста и установили увеличение живой массы на 4,6% по сравнению с контролем.

Рибав также оказал стимулирующее влияние на морфологические показатели крови. Так, по сравнению с контролем, в опыте количество эритроцитов было выше на 9,3%, лейкоцитов на 8,9%, гемоглобина на 4,1%.

И.И. Кочиш, М.С. Найденский, Т.О. Азарнова, Ю.В. Краснобаев (2008) установили, что сочетанное аэрозольное применение рибав + янтарная кислота перед инкубацией и на 19-е сутки оказывает положительное влияние на эмбриональное и постэмбриональное развитие цыплят яичных кроссов в течение 60 суток выращивания. В опытных группах увеличилась выводимость яиц на 4,2-7,1% и вывод цыплят на 6,3-10,7%.

Использование растворов рибав и янтарной кислоты привело к длительному эффекту последействия, что позволило снизить падеж в опытных группах за 60 суток выращивания в 1,5 – 2 раза по сравнению с контролем.

Положительный эффект от применения вышеуказанных препаратов получен и на других видах животных.

В работе Басанкина А.В., Антипова В.А. (2008) установлено, что добавление в рацион свиноматок янтарной кислоты в количестве 0,1 г/кг массы тела оказывает положительное действие на потомство: повышается рождаемость, крупноплодность, жизнеспособность новорожденных, при этом уменьшается количество мертворожденных и слабых.

Доказано, что скармливание сукцината сухостойным коровам в период интенсивного развития плода позволяет повысить живую массу телят при рождении, резистентность, а также среднесуточный удой коров на 10-15% (Tyutyunnic N.N., Kozhevnikova L.K., 1996).

В.М. Пурецкий, В.А. Прахт (2005) доказали, что скармливание новорожденным телятам препарата рибав в дозах 0,25, 0,17 и 0,12 мл/кг живой массы один раз в сутки со 2-го дня после рождения до 10-ти суточного возраста, способствовало снижению заболевших диспепсией в 1,6 - 4, раза и сроков продолжительности болезни в 2 - 4 раза.

увеличился на 25,4%, 28,2 и 16,7% соответственно вышеуказанным дозам.

Л.Ю. Топурия (2005) изучала влияние иммуностимулятора рибав на иммунный статус коров и их новорожденных телят. Стельным коровам за и 30 суток до отела перорально вводили рибав в дозе 0,25 мл/кг массы в течение 5 суток.

В результате проведенных исследований было доказано повышение лизоцимной и бактерицидной активности в сыворотки крови у коров и молодняка крупного рогатого скота.

У коров опытной группы за 7 суток до отела наблюдалось повышение IgG на 28,21% и IgM на 25,30%; сразу после родов – 39,07 и 6,36% соответственно.

Применение растительного иммуномодулятора значительно увеличивало в крови количество Т и В лимфоцитов.

Таким образом, применение рибава стельным коровам повышает естественную резистентность и воспроизводительную способность животных, способствует устранению иммунодефицитных состояний у полученного от них потомства.

Резюмируя вышеизложенное, следует отметить, что применение биологически активных веществ, и в частности органических кислот оказывает стимулирующее влияние на продуктивные качества и защитные продуктивности животных.

естественной резистентности животных профилактики заболеваний различных видов животных и птиц, повышения естественной резистентности организма и нормализации обмена веществ (Булашева А.И., 2005; Пальчиков А.Ю., Безбородов Н.В., Шитов Г.Г., 2005;

Бессарабов Б.Ф., Мельникова И.И., Лазуткина Е.А., 2006; Графов Д., Бессарабов Б., Гонцова Л., 2007).

Теоретические основы тканевой терапии заложены еще академиком М.П. Тушновым в 1905 г. Он придавал особое значение физиологической роли продуктов клеточного распада в обмене веществ, считая, что согласованность физиологических функций в организме зависит не только от нервной и гормональной систем, но и от промежуточных продуктов метаболизма. Особое внимание М.П. Тушнов обратил на действие продуктов распада белка. По его мнению, первичные высокомолекулярные продукты распада белка являются наиболее мощными физиологическими раздражителями. Они повышают общий жизненный тонус организма в целом, а с другой стороны, сохраняя химическую специфичность строения белка различных тканей, действуют наиболее активно на клетки той ткани, из которой они образовались.

При парентеральном введении продуктов распада белка различных органов можно стимулировать деятельность гомологичных тканей, исправлять нарушение обмена веществ и устранять патологию (Дерябина З.И., Николаев А.В., 1968).

С 1933 г. тканевая терапия получила дальнейшее развитие в работах академика В.П. Филатова, который установил способность переживающих на холоду тканей стимулировать регенеративные процессы в живом организме.

Теоретическая основа применения тканевых препаратов В.П. Филатова сводится к тому, что при неблагоприятных условиях в переживающих тканях накапливаются специфические активные вещества, вырабатываемые живыми клетками. Эти вещества были названы В.П. Филатовым биогенными стимуляторами. Биогенные стимуляторы образуются не только в тканях животных, но и в клетках растений. Биогенные стимуляторы Филатова применяются для лечения разнообразных болезней человека и животных, при этом специфичность ткани не имеет существенного значения.

заболеваниях В.П. Филатов объясняет тем, что биостимуляторы не оказывают влияния на причину болезни. Они действуют на организм в целом, мобилизуя его естественные защитные силы и стимулируя физиологические и иммунобиологические реакции. Стимулирующее влияние осуществляется через нервную систему. Биогенные стимуляторы, изменяя активность ферментных систем, повышают уровень обменных процессов и устойчивость к различным патогенным воздействиям.

Благоприятное влияние биогенных стимуляторов на функции организма послужило основой для применения их в животноводстве для стимуляции роста при откорме животных (Дорогов А., 1951).

Среди существующих средств тканевой терапии препарат АСД занимает особое место.

Тканевый лекарственный препарат АСД Ф-2 (антисептик-стимулятор Дорогова) является оригинальным отечественным препаратом, изготовленным по специальной методике, разработанной кандидатом ветеринарных наук А.В. Дороговым в 1948 г.

По своему химическому составу АСД Ф-2 резко отличается от других тканевых препаратов. Он содержит химические соединения, не имеющие какого-либо родства с белком и не расщепляющиеся протеолитическими ферментами, его можно применять внутрь и парентерально. Препарат не имеет ни видовой, ни органной специфичности, так как при глубоком распаде тканей животных, который происходит при получении АСД Ф-2, постепенно расщепляются органические вещества (белки, жиры, углеводы) до низкомолекулярных компонентов, сходных по своей химической структуре с метаболитами клеточного обмена, стираются все различия, присущие органам и тканям, а также и отдельным классам живых организмов.

Препарат представляет собой прозрачную летучую жидкость от желтого до темно-красного цвета с резким специфическим запахом, имеет щелочную реакцию и хорошо растворим в воде. (Дерябина З.И., 1980;

Тимофеев Б.А., Щедрин Е.Л, Сироткина В.П. и др., 1987; Абрамов В.Е., Абдрахманов В.И., Дорогова О.А. и др., 2004).

Одним из основных биологически активных компонентов препарата являются холиновые эфиры карбоновых кислот типа ацетилхолина, бутирилхолина, пропионилхолина, которые обладают выраженным ацетилхолинподобным действием.

Ацетилхолин является одним из основных регуляторов жизненных процессов в организме. Он осуществляет метаболическую функцию, участвуя во внутриклеточной регуляции обмена путем воздействия на проницаемость клеточных мембран и на активность различных ферментов.

Ацетилхолин усиливает синтез адреналина, РНК, белка, увеличивает поглощение кислорода тканями, способствует активации транспорта РНК, аминокислот, сахаров, электролитов через мембраны эритроцитов, скелетных мышц, кровеносных сосудов.

В случаях холиновой недостаточности препарат может восполнять дефицит холина, восстанавливать нормальную трофику тканей и устранять дистрофические состояния.

Жирные кислоты, содержание которых в препарате АСД Ф- составляет около 4%, при введении в организм могут использоваться в процессах обмена как пластический и энергетический материал (Дерябина З., 2000).

В препарате установлено содержание свободных неорганических азотистых веществ (до 15%) в виде солей аммония и органических веществ, среди которых были идентифицированы первичные и вторичные амины, карбоновые кислоты жирного ряда, их амиды и аммонийные соли, холиновые эфиры карбоновых кислот (Абрамов В.Е., Абдрахманов В.И., Дорогова О.А. и др., 2004).

По данным многочисленных авторов ионы аммония, а также ионы щелочных металлов (Na, K, Ca) относятся к числу основных электролитов, обеспечивающих функциональную активность нервной и мышечной тканей.

В малых концентрациях они являются физиологическими раздражителями и стимулируют функцию нервной системы, процессы дыхания.

Кроме того высокая биологическая активность препарата АСД Ф- обусловлена содержанием функционально активных сульфгидрильных групп (SH –групп), которые участвуют в синтезе глутатиона.

Препарат оказывает стимулирующее влияние на те биохимические процессы в организме, которые сопряжены с биологической функцией сульфгидрильных групп, т.е. препарат может активизировать процессы обмена углеводов, липидов и белков в животном организме (Дерябина З., 2000).

Ацетат метиламин ускоряет синтез биологических аминов (холина, серотонина, гистамина, адреналина). Метилмеркаптан – донор в образовании тиолового кофактора глутатиона – принимает участие в синтезе аминокислот, метионина, холина, креатинина. Уксусная кислота – активный компонент коэнзима А, необходимого для синтеза дикарбоновых, трикарбоновых и жирных кислот, кетоновых тел, стеринов, убихинона, ацетилхолина. Метилмочевина обеспечивает синтез производных жирных кислот, участвующих в обменных процессах. Циклопентан – промежуточный продукт в синтезе пуриновых и пиримидиновых оснований. Декан – важный элемент в создании эфиров, спиртов, кетонов, липидов, каротиноидов.

Диметилпиррол входит в состав гемоглобина крови.

Под воздействием препарата возрастает легочный газообмен, повышается потребление кислорода тканями и активность ряда ферментных систем, увеличивается антиоксидантная защита (Кирюткин Г., Абдрахманов В., Шабанов В., 2004).

При изучении газового и энергетического обмена у собак (А.В.

Дорогов, З.И. Дерябина, 1957), которым препарат АСД Ф-2 вводили в дозе 100 мг/кг вместе с кормом в течение 3 и 9 месяцев, было установлено повышение величины легочного газообмена, увеличение артерио-венозной разности кислорода и кислородной емкости крови, повышение потребления кислорода тканями. Возрастала интенсивность энергетического обмена.

Перестройка процессов обмена веществ была длительной, так как после 6месячного перерыва в применении препарата АСД показатели газового и энергетического обмена у животных были выше исходных.

Усиление процессов газо-энергетического обмена свидетельствует о стимулирующем влиянии вышеуказанного препарата на общий обмен веществ в организме, на повышение окислительного фосфолирирования в митохондриальной дыхательной цепи.

Т.А. Мороз (1986) было установлено положительное действие АСД Ф-2 на обмен витамина А в организме животных, а также его эффективность в профилактике гибели эмбрионов у коров в критические периоды внутриутробного развития.

Изучение влияния препарата АСД Ф-2 на яичники и гаметы коров проводили методом трансплантации эмбрионов. Животным опытной группы до осеменения вводили препарат путем трехкратной мышечной инъекции с интервалом в 5 суток. Доза препарата составила 0,001-0,003 мл на 1кг живой массы.

Обработка коров препаратом АСД Ф-2 увеличивает в два раза количество полноценных эмбрионов, что свидетельствует о стимулирующем действии препарата, который повышает их выживаемость.

обработанных биостимулятором в критические периоды внутриутробного развития эмбрионов, стельность повышалась на 15-20%, а сервис-период сокращался на 10-13 суток.

Аналогичные данные получены Полянцевым Н.И., Подберезным В.В.

(2004).

«Янтарный биостимулятор» (янтарная кислота+АСД Ф-2) внутримышечно в дозе 5 мл, двукратно с интервалом 15 сут, за месяц до отела и телятам опытной группы этот же препарат в дозе 2 мл внутримышечно на 2-3 сутки после рождения, отметил достоверное повышение содержания общего белка в сыворотке крови, а также альбуминов и фракций глобулинов, бактерицидную активность сыворотки крови и содержание Т-лимфоцитов.

Горбанец Т.М., Лобач П.И., Божко И.Г., Мануйленко В.Г. (1984) установили влияние АСД-Ф2 на рост и мясные качества бройлеров.

Молодняку опытных групп дополнительно скармливали по 0,005 мл препарата, вследствие чего живая масса бройлеров увеличивалась на 7,5а содержание протеина в тушке возросло на 4,3-5,2%.

Курам опытной группы вводили внутрь препарат АСД Ф-2 в дозе 125мг/кг веса в 10%-ном водном растворе.

Живая масса кур в первые два месяца применения препарата была выше, чем у контрольных на 8%.

Яйценоскость у контрольных кур в 6-ти месячном возрасте составляла 22%, а у опытных – 30,2% (то есть на 8,2% выше).

интенсивности роста у кур и увеличению их продуктивности.

Исследования показали, что повышение синтеза белка в организме кур находилось в тесной корреляции с синтезом нуклеиновых кислот (НК). Через 30 суток после введения препарата АСД Ф-2 в крови кур содержание НК достоверно увеличивалось на 10,2% по сравнению с контролем. Через суток после введения АСД Ф-2 содержание НК у опытных кур было выше на 9,8%.

Под влиянием препарата у опытных кур повышалась активность фермента рибонуклеазы.

уровень гликогена в печени опытной группы был на 23% выше, чем в контроле, что указывает на преобладание в организме кур процессов ассимиляции над процессами диссимиляции, т.е. подтверждается анаболическое действие данного препарата на организм.

Б.Ф. Бессарабов, И.И. Мельникова и Е.А. Лазуткина (2006) применяли естественной резистентности птицы, а также стимуляции яйценоскости у самок перепелов.

К концу опыта интенсивность яйценоскости возросла на 36,9% по сравнению с контролем.

Таким образом, проведенные исследования показали, что препарат АСД Ф-2 оказывает стимулирующее влияние на продуктивность птиц и их естественную резистентность.

распространение получили препараты на основе плаценты: ПДЭ (плацента денатурированная эмульгированная) из плаценты человека, ПДС (плацента денатурированная суспендированная), изготавливаемая из плаценты человека и тканевый препарат «Биостим» (Багданова О.С., Дементьев Е.П., 2005; Пальчиков А.Ю., Безбородов Н.В., Шитов Г.Г., 2005).

Препарат ПДЭ содержит 16 аминокислот, в том числе незаменимые, высокоактивные короткие белки-пептиды, нуклеиновые кислоты, микроэлементы и другие вещества, всего около 100, содержащихся в этой уникальной, созданной природой ткани для развития и защиты будущей жизни. Данный препарат обладает противовоспалительным, противоотечным, иммуномоделирующим действием, способен резорбировать соединительную ткань (Вагина М.С., 2005).

М.С. Вагина (2004) изучала действие ПДЭ на цыплятах – бройлерах кросса «Смена» в возрасте 1-42 суток, которых обрабатывали аэрозолем препарата. Было установлено, что содержание общего белка в сыворотки крови в опытной группе было на 5,4 г/л больше. Увеличение общего белка в крови цыплят опытной группы происходило за счет возрастания - и глобулинов соответственно на 0,54% и 6,55%.

На фоне повышения сохранности молодняка на 3,5% установлено повышение приростов живой массы до 5%.

По данным Кириловой Ю.В. (2004) установлено, что под влиянием 0,25% раствора тканевого препарата «Биостим» происходят положительные изменения в лейкоцитарной формуле крови у цыплят. Особенно за счет увеличения лимфоцитов на 6,8%.

Активизация обменных процессов, проходящих в организме цыплят, отразилась и на биохимических показателях сыворотки крови цыплят.

Содержание общего кальция повысилось на 0,53 мг/%, фосфора – 0,19 мг/%, витамина Е – 0,20 мг/% и каротина - 0,04 мг/% в пределах физиологической нормы. Общий белок повысился на 0,53 г/%.

Гуревичев П.А., Уразаев Д.Н., Равилов М.Н. (2005) отметили, что применение ПДЭ способствует профилактике задержания последа у коров. Этот препарат сокращает сроки отделения последа у животных в среднем за 4 часа, а также снижает вероятность возникновения эндометритов.

тканевые препараты оказывают многостороннее влияние на организм.

Повышают обмен веществ и окислительные процессы, стимулируют рост и развитие молодняка. Тканевые препараты вызывают улучшение функционального состояния механизмов естественной резистентности, усиливают процессы регенерации тканей, стимулируют иммуногенез, вследствие чего повышается сопротивляемость к неблагоприятным воздействиям.

1.3. Биологическая роль микроэлементов и их влияние на обмен веществ, здоровье и продуктивность животных В составе животных организмов имеется 55 микроэлементов или 0,4живой массы тела животного. Они необходимы как для оптимального функционирования различных органов и тканей, так и для роста и развития организма в целом. Микроэлементы входят в состав гормонов, ферментов, витаминов, определяют их активность и этим оказывают непосредственное влияние на интенсивность процессов обмена веществ и энергии, состояние естественной резистентности и иммунобиологической реактивности, воспроизводительную способность, продуктивность, жизнеспособность поголовья (Цымбал Р.А., 2000; Кабиров Г.Ф., Юсупов Р.Х., 2006).

микроэлементов в питании сельскохозяйственных животных посвящено большое число исследований, результаты которых обобщены в ряде обзоров (Beisel W., 1982; Ковальский В.В., 1983; Танатаров А.Б., 1984; Двинская Л.М., Дудин В.И., 1986; Кальницкий Б.Д. и др., 1986; Гогин А.Е, 2001;

Пермяков Н.С., 2001; Сазонов Н.Н., 2001; Двоярская Ю.И., Сурай П.Ф., 2006;

Павленко О., 2007; Шацких Е., Цыганова О., 2007).

Изучение роли влияния микроэлементов в составе биологически активных веществ органической природы на организм птицы в онтогенезе является актуальной проблемой (Ручий О.С., 2007).

При дефиците микроэлементов в инкубационных яйцах нарушается эмбриогенез и ухудшается их выводимость (Фисинин В.И., Журавлев И.В., Айданян Т.Г., 1990).

Особенно чувствительны к дефициту микроэлементов эмбрионы в первую половину инкубации. Чем больше дефицит по минеральным веществам, тем выше смертность эмбрионов птицы, которая наступает в более ранние сроки.

Недостаток меди, селена является одной из причин повышенной гибели эмбрионов в первую неделю инкубации, при этом количество отходов инкубации в виде кровяных колец превышает гибель зародышей в виде задохликов (Дядичкина Л., 2007).

Дефицит кобальта, цинка, марганца и йода отрицательно сказывается на резистентности и продуктивности птицы (выводимости яиц, интенсивности роста, сохранности молодняка и яйценоскости).

За последние годы установлено, что биологическая доступность микроэлементов из неорганических солей невелика и, даже при достаточном их содержании в рационе, организм может испытывать нехватку того или иного микроэлемента. Это происходит в результате конкурентного взаимодействия минеральных веществ в желудочно-кишечном тракте.

Усвоение железа ухудшается при избытке в рационе марганца, что проявляется в снижении уровня гемоглобина и приростов массы свиней.

Повышенный уровень кальция в рационе затрудняет всасывание цинка и нередко служит причиной заболевания свиней паракератозом. Одним из кормовых факторов, препятствующих всасыванию и отложению меди в организме жвачных, является одновременное присутствие в корме избыточного количества сульфатов и молибдена (Горобец А.И., 1984;

Кальницкий Б.Д., 1985).

По данным Ю.В. Краснобаева (2009) микроэлеметы в кишечнике животных усваиваются всего лишь на 10-40%, а остальные 90-60% не только не усваиваются, но, при постоянном использовании приводят к отложению нерастворимых солей на стенках кишечника, что является причиной возникновения запоров и блокированию каналов, через которые происходит всасывание, что уменьшает поступление минеральных веществ.

Поэтому применение неорганических форм минеральных веществ может оказывать негативное влияние на организм.

Основной процесс всасывания микроэлементов происходит в тонком отделе кишечника, который не способен усваивать отдельные ионы минералов. В результате в кишечнике происходит процесс хелатирования, то есть связывания доступных органических веществ с ионом минерала (Пикалина О.А., 2007).

Однако для того чтобы процесс хелатирования проходил более успешно, необходимо определенное соотношение количества минералов и органических соединений (аминокислоты, белки, органические кислоты), которые поступают в организм сельскохозяйственных животных с кормом.

Хелаты способствуют стабильности комплекса при его прохождении через кислую среду желудка, в результате чего обеспечивается оптимальная доступность микроэлементов в кишечнике. Усвоение микроэлементов увеличивается в 10-20 раз по сравнению с обычно используемыми в кормлении сульфатами и оксидами (Малышев М.А., Брылин А.П., 2006).

Хелаты (или циклические комплексные соединения) – это координационные соединения, в которых центральный атом или ион связан с двумя или более донорными атомами лиганда, в результате чего замыкается один или несколько гетероциклов (рис.1).

Рисунок 1. Образование хелатной связи Так, при действии водного раствора аминокислоты глицин H2N-CH2COOH на гидроксид меди (II) Cu(OH)2 образуется вещество, содержащее на один атом меди два остатка аминокислоты:

Cu(OH)2 + 2 NH2CH2COOH= Cu(NH2CH2COO)2 + 2H2O Глицин с центральным атомом металла может связываться как посредством азота аминогруппы, так и посредством кислорода карбоксильной группы, поэтому он является бидентатным лигандом (рис. 2).

Рисунок 2. Структура хелатного соединения 1. Хелатное соединение металла с аминокислотой. Это процесс хелатирования между аминокислотой и ионом металла из растворимой соли металла.

Использование хелатных добавок цинка, железа, марганца и меди с аминокислотами (глицином, метионином, лизином и гистидином) в рационе птицы положительно влияет на интенсивность роста, активность металлоэнзимов и накопление элементов в органах и тканях по сравнению с добавками микроэлементов в виде сульфатов. Стимулирующий эффект комплексных соединений микроэлементов с аминокислотами на обмен веществ обусловлен более высокой биологической доступностью хелатов микроэлементов в процессе их всасывания и использования в обмене веществ (Панина Н.В., 2006).

смешаннолигандные соединения биометаллов (Fe) с аминокислотами (лизин, глицин, гистидин, фенилаланин) и витамином В2 (рибофлавином).

Характерной способностью комплексных соединений биометаллов с витамином В2 и аминокислотами является то, что входящий в их состав рибофлавин восстанавливается в дегидрорибофлавин значительно легче, чем рибофлавин в свободном состоянии.

Применение комплексных соединений железа с рибофлавином и аминокислотами в кормлении цыплят кросса «Бройлер 6» оказало положительное влияние на продуктивность, интенсивность метаболизма, использование питательных и минеральных веществ корма и качество мяса птицы (Кебец А.П., Кебец Н.М., Егоров С.В., Богатырев А.А., 2006).

Положительное влияние таких соединений на обменные процессы в организме и продуктивность животных связаны с тем, что при образовании такого комплекса происходит изменение химической структуры биометалла и аминокислоты и появляются новые виды биологической активности, которыми не обладают входящие в их состав индивидуальные компоненты (Кебец А.П. и др., 2006).

Парентеральная инъекция анемичных поросят хелаткомплексным соединением аспарагината марганца и глицината меди с йодидом калия на фоне инъекции ферроглюкина быстрее стимулирует эритро- и гемопоэз в их организме, увеличивая к 24 суткам жизни количество эритроцитов в 1, раза, гемоглобина в 1,58 раза; величину гематокрита в 1,36 раза по сравнению с 2-х разовой инъекцией только железодекстрана (Бушов А.В., Тен Э.В., 2005).

2. Комплексы пептидов и белков с металлами.

Металлокомплекс карнозин оказывает модулирующее действие на способность цинка и меди влиять на возбудимость нейронов и на нейротоксичность этих металлов (П.К. Тромбли и др., 2000 – цитировано по:

Кабиров Г.Ф., Логинов Г.П., Хазипов Н.З., 2005).

Металлирование белков приводит к возникновению характерных для образующихся металлопротеидных комплексов качественно новых свойств.

Нерастворимые в дистиллированной воде глобулины легко растворяются в обычных водносолевых растворителях, что происходит благодаря образованию комплексных соединений глобулинов с металлами – металлоглобулинатов. (Э.В. Тен, Х.Ш. Казаков и др., 1972 – цитировано по:

Кабиров Г.Ф., Логинов Г.П., Хазипов Н.З., 2005).

3. Взаимодействие металлов с азотистыми основаниями нуклеотидов и нуклеиновыми кислотами.

Двухвалентные катионы металлов играют ключевую роль во всех ферментативных реакциях с участием нуклеиновых кислот, которые могут координироваться с ионами металлов и своими основаниями, и углеводными компонентами, и фосфатными группами, т.е. обладают амбивалентными, или амбидентантными свойствами.

Связывания металлов с фосфатной группой приводит к расщеплению фосфодиэфирных связей РНК, что очевидно является одной из причин эволюционного предпочтения ДНК в качестве носителя генетической информации (Кабиров Г.Ф., Логинов Г.П., Хазипов Н.З., 2005).

4. Взаимодействие металла с углеводами.

Синтезированы комплексы биогенных металлов с моносахаридами, комплекс полисахарида железа. В качестве природных хелатирующих макролигандов используют также крахмал, декстраны, глептоксил, цитровит и другие соединения (M.E. Mochie-Eldin et al., 1994; U. Hofmann et al., 1989 – цитировано по: Кабиров Г.Ф., Логинов Г.П., Хазипов Н.З., 2005).

5. Синтетические хелаты с искусственными хелатообразователями.

По данным Калимуллина Ю.Н. (1984), Кривовой Т.С. и др. (1986), Сехина А.А. (2003), Бушова А.В. (2005), Логиновой Г.П. (2005), Лоховой С. (2005) большую перспективу для повышения продуктивности, иммунодинамических и воспроизводительных функций, а также для профилактики и лечения заболеваний сельскохозяйственных животных представляет применение синтетических комплексов биогенных металлов с органическими соединениями.

Наиболее важны для животных следующие элементы:

Потребность в нем у птиц составляет около 20-60 мг/кг корма.

Особенно нуждаются в этом элементе растущие организмы. Часть железа находится в тканях печени, селезенки, костном мозге. Много микроэлемента в красном оперении птиц (38-40 мг/кг). Большая часть его находится в эритроцитах (Микулец Ю.И. и др., 2004; Комаров Ф.И., 2006; Бессарабов Б.Ф., 2007).

Железо выполняет различные уникальные физиологические функции в организме, оказывая влияние как на активность лимфоидно-макрофагальной системы, так и на многие стороны метаболизма, главным образом процессы обмена белков. Оно оказывает значительное влияние на гемопоэз и участвует в образовании гемоглобина, миоглобина, пероксидазы, цитохромов и каталазы. (Конопатов Ю.В., Макеева Е.Е., 2006).

При недостатке железа в первую очередь нарушаются обменные процессы в костном мозге, где образуются первичные форменные элементы крови. Нарушается и полностью подавляется синтез гемоглобина.

Эритропоэз отстает от потребностей быстрорастущего организма, вследствие чего развивается гипохромная анемия и нарушаются окислительновосстановительные процессы. Развивается кислородное голодание. Для компенсации общей гипоксии пульс усиливается, увеличивается минутный объем сердца, что приводит к гипертрофии сердечной мышцы (Скрынникова Т.И., Есепенок В.А., 2006).

У взрослых особей недостаток железа встречается редко в связи с высоким содержанием его в растительных кормах, удовлетворительной усвояемостью и реутилизацией элемента в организме, хотя иногда железодефицитное состояние регистрируют и у высокопродуктивного скота.

Анемия чаще проявляется у молодняка. Так, у новорожденных поросят имеет место железодефицитная анемия, которая характеризуется расстройством функционирования органов кроветворения, нарушения обменных процессов, снижением резистентности и иммунодефицитом.

представляющих собой комплекс железа с низкомолекулярным декстраном, способствует эффективной профилактике анемии и положительно влияет на иммуногенез. Однако такие препараты содержат только одно железо, а все остальные микроэлементы, участвующие в гемопоэзе отсутствуют.

(Кузнецов С., Кузнецов А., 2003; Алимов А. с соавтор., 2005).

Гемовит-плюс - препарат, содержащий в своем составе микроэлементы (Fe, Mn, Cu, Zn, Co, Se, J) в хелатной форме. По данным Д.В. Пчельникова и В.А. Бабич (2005) установлено, что выпойка 5 мл. препарата с кормом один раз в сутки телятам черно-пестрой породы повышает неспецифическую резистентность животных; введение в рацион 10 мл. гемовита-плюс свиноматкам крупной белой породы стабилизирует гемопоэз, эритропоэз и лейкопоэз, о чем свидетельствует повышение количества гемоглобина на 22,6%, эритроцитов на 27%, лейкоцитов на 71% и сывороточного железа на 45,6%.

Недостаток железа у кур вызывает уменьшение количества красных кровяных телец, затем нарушение пигментации оперения. В экспериментах при содержании на рационах без железа на 14-21 сутки после начала опыта перья теряют окраску и через 60 суток становятся совершенно белыми (Бессарабов Б.Ф., 2007).

По количественному содержанию в организме животных цинк занимает среди микроэлементов второе место после железа. Он влияет на рост, развитие и воспроиводительную функцию животных, процессы остеогенеза.

Цинк входит в состав более 200 ферментов, относящихся ко всем шести классам, включая гидролазы, трансферазы, оксидоредуктазы, лиазы, лигазы, изомеразы, контролирующие процессы роста, синтеза ДНК, функционирования тканей и нормального развития репродуктивных органов.

Он крайне необходим для формирования скелетной системы, так как при его дефиците невозможна кальцификация. Обеспечивая синтез Т-лимфоцитов и бласттрансформацию В-лимфоцитов, цинк усиливает иммунные реакции и тем самым повышает естественную резистентность организма. Этот микроэлемент увеличивает активность пищеварительных ферментов поджелудочной железы, щелочной фосфатазы, аминопептидазы, нейтральных протеаз, повышая переваримость корма, а также усиливает биодоступность витаминов (А и В6). В результате увеличиваются приросты и улучшается конверсия корма. Цинк также обладает сильным антимикробным действием, особенно в отношении различных видов кишечной палочки и стрептококков (Малышев М.А., Брылин А.П., 2006).

При недостатке цинка в рационе животные заболевают паракератозом.

На пораженных участках кожи шерстный покров выпадает (Огуй В.Г. и др., 1981).

При дефиците цинка наблюдается нарушение развития в эмбриогенезе.

Так, у эмбрионов кур отмечают искривление позвоночника, возникает уродство головы, отеки, аномалии развития головного мозга, глаз, внутренних органов.

Недостаток цинка у цыплят вызывает нарушения эпителия желудочнокишечного тракта, наступает замедление роста, перья становятся ломкими, истонченными. У контурных перьев, особенно у маховых и хвостовых, в результате облома опахала остаются одни стержни, задерживается половое созревание, нарушается дыхание, утолщаются суставы ног и возникает перозис (Белецкий Е.М., 1995).

Изучение скелета цыплят при недостатке цинка в кормах показало нарушение синтеза коллагена при выраженном снижении коллагеназы.

Недостаток цинка в рационе кур родительского стада вызывает снижение выводимости яиц, высокую смертность цыплят и нарушение развития скелета и перьев. В некоторых случаях цинковый дефицит ассоциируют с эмбрионами, не имеющими крыльев и ног (Топорова Л., Топорова И., 2008).

Марганец необходим для нормального обмена веществ и играет каталитическую роль в процессах обмена. Способность его в качестве катализатора и активизатора участвовать в реакциях гормонов, витаминов и ферментов обуславливает его физиологическую функцию, влияние на рост, развитие, нормальное проявление половой активности и другие биологические процессы. Марганец является биоэлементом, принимающим активное участие в окислительно-восстановительных процессах и кроветворении (Кабыш А.А., 2006).

Этот микроэлемент входит в состав ферментов пируваткарбоксилазы и орнитиназы, необходимых для синтеза гликанов хрящевой ткани, повышает прочность скорлупы яиц, улучшает развитие эмбрионов кур (Манукян А., 2007; Околелова Т. и др., 2007).

Применение комплексонатов марганца и цинка, являющихся солями диэтилентриаминпентауксусной (ДТПУ) и оксиэтилидендифосфорной (ОЭДФ) кислот оказывают положительное действие на рост, развитие и физиологическое состояние животных, а также увеличение количества эритроцитов, лейкоцитов и содержание гемоглобина в крови (Кабиров Г.Ф., Логинов Г.П., Хазипов Н.З., 2005).

активность каталазы и пероксидазы крови у цыплят на 12 и 9%, эритроцитов на 0,8 млн/мкл.

Аналогичными были различия и в содержании тиамина в грудной мышце, что свидетельствует об активном включении его в ферментные системы организма цыплят и нарастании уровня обменных процессов.

Из всего вышеизложенного следует, что комплексонат марганца микроэлемента в кормах (Колганов В.А., Латышев В.И., Струговщиков В.Р., 2000).

марганецсодержащего фермента глюкозилтрансферазы тесно связан метаболизм глюкозаминогликанов. При дефиците этого элемента уменьшается уровень содержания глюкозаминогликанов в хрящевой ткани, а также понижается активность ряда ферментов углеводного обмена.

У коров и свиноматок нарушаются воспроизводительные функции (нерегулярная течка, перегулы), снижается оплодотворяемость. Возможны рассасывание плодов и аборты; молочная продуктивность, а часто и жирность молока падают.

У молодняка нарушается половое созревание и оссификация скелета, замедляется рост; отмечаются укорочение и слабость ног, иногда хромота и несгибаемость в суставах, а также повышенное жироотложение (чаще у поросят) (Топорова Л.В., Архипов А.В., Бессарабова Р.Ф., и др., 2004).

Дефицит марганца в организме птицы вызывает нарушение костеобразования, при котором сильно увеличен скакательный сустав, пяточное сухожилие соскакивает с мыщелка. При недостатке марганца происходит снижение яйценоскости, ухудшение прочности скорлупы и состояния оперения, снижается оплодотворяемость яиц и их выводимость (Бессарабов Б.Ф).

Химические свойства, благодаря которым медь играет важную роль в процессах обмена веществ, выражены у нее в большей степени, чем у других микроэлементов. Ионы меди по сравнению с ионами других металлов активнее взаимодействуют с белками, образуя устойчивые (хелатные) комплексы. Медь служит исключительно эффективным катализатором.

Наконец, медь легко переходит из одного валентного состояния в другое, являясь как донором, так и акцептором электронов.

Участие меди в метаболических процессах организма сопряжено главным образом с функциональной активностью медьсодержащих ферментов-оксидаз: цитохромоксидазы, церулоплазмина, супероксиддисмутазы и др. Они играют регулирующую роль в тканевом дыхании, что важно не только для эритроцитов, но и для клеток лимфоидномакрофагальной системы. Ряд дисмутаз фагоцитарных клеток содержит медь, цинк, марганец и железо. Эти ферменты играют ключевую роль в бактерицидной активности фагоцитов и представляют, вероятно, возможные места регуляции активности лизосомального аппарата клеток (Кузнецов С., Кузнецов А., 2003; Конопатов Ю.В., Макеева Е.Е. 2006).

На усвоение меди влияют многие кормовые факторы, и прежде всего белок: повышение его уровня в рационе снижает отложение ее в печени.

Недостаток меди приводит к следующим патологиям:

1. Нарушение синтеза гемоглобина и возникновение анемии 2. Развитие сахарного диабета, так как медь ингибирует инсулиназу 3. Кариес зубов, потому что медь входит в состав эмали 4. Диарея, лизуха, замедление роста 5. Энзоотическая атаксия у новорожденных ягнят У телят первым признаком недостатка меди является ходульная походка, особенно характерная для тазовых конечностей. При этом отмечают также кахексию, прогрессирующую в течение 4-5 месяцев. Возможна распространяющаяся на лоб, нижнюю челюсть и другие части тела. Это происходит из-за недостатка меланина, в образовании которого необходим медьсодержащий фермент тирогеназа (Королев А.Ю., 2005).

Некоторые тяжелые металлы (свинец, кадмий, ртуть, серебро, цинк, мышьяк) конкурируют с медью при всасывании, обуславливая ее недостаточность. Высокое содержание железа в рационе (150-400 мг/кг) тормозит поглощение меди и предохраняет организм от избыточного накопления ее у птицы (Кузнецов С., Кузнецов А., 2003).

Недостаточность меди в рационе птицы приводит к снижению выводимости яиц; вызывает анемию, при которой красные кровяные тельца – малого размера и с низким уровнем гемоглобина, ядра эритроцитов бесформенные или удвоенные; нарушается кератинизация пера. Взаимосвязь между медью и цинком влияет на выводимость, при этом избыток цинка увеличивает дефицит меди. В период эмбрионального развития птицы при дефиците меди наблюдается высокая смертность на ранней стадии формирования кровеносной системы, уменьшается активность церулоплазмина плазмы, а также супероксиддисмутазы эритроцитов (Егоров И.А., Имангулов Ш.А., 2005; Топорова Л, Топорова И., 2008).

Биологическая роль кобальта в значительной степени связана с проявлением активности витамина В12 – цианкобаламина: образование метильной группы метионина из предшественников, повышение термостабильности SH – групп, поддержание активности коэнзима А.

Действие данного витамина на организм обосновано многими факторами: он регулирует кроветворение, влияет на азотный, нуклеиновый, углеводный, липидный, минеральный обмен, принимает участие в реакциях трансметилирования, активизирует аргиназу, карбоангидразу, щелочную фосфатазу, является остеогенным микроэлементом. Наиболее важную роль витамин В12 играет в эритропоэзе, недостаточность его и фолиевой кислоты (витамина В9), является причиной металопластических анемий и наиболее распространенной формы – злокачественной анемии. Дефицит фолиевой кислоты довольно частое явление. При ее недостаточности тормозится синтез нуклеопротеидов и созревание клеток, появляются аномальные предшественники эритроцитов – мегалоциты. Острый недостаток фолиевой кислоты вызывает анемию, кровоточивость слизистых оболочек рта, десен и кишечника, поражение пищеварительного тракта, развитие дерматитов (Кабиров Г.Ф., Логинов Г.П., Хазипов Н.З., 2005).

Кобальт необходим для нормальной жизнедеятельности микрофлоры преджелудков жвачных и синтеза микробиального белка (Скрынникова Т.И., Есепенок В.А., 2006).

Кобальт обеспечивает нормальный синтез гемоглобина и ускорение созревания эритроцитов в костном мозге. Установлено стимулирующее действие кобальта на систему кроветворения (Бакулин В.А., 2006).

Недостаток кобальта приводит к развитию злокачественной гиперхромной анемии (с избыточным количеством гемоглобина), снижению плодовитости, а у овец к снижению качества шерсти (Королев А.Ю., 2005).

У свиней ухудшается аппетит, снижается прирост живой массы;

развиваются поносы, появляется анемия. При недостатке кобальта в рационах в крови и печени животных уменьшается содержание этого элемента и витамина В12 (Топорова Л.В., Архипов А.В., Бессарабова Р.Ф., и др., 2004).

Потребность птицы в кобальте составляет 4-5мг/кг корма. Дача кобальта цыплятам в первые дни жизни способствует увеличению обмена азота и повышению содержания глобулинов сыворотки крови.

Дефицит рационов по кобальту вызывает cнижение аппетита, уменьшение количества гемоглобина и развитие анемии, нарушение функции щитовидной железы, задержку роста, снижение яйценоскости у несушек (Бакулин В.А., 2006; Бессарабов Б.Ф., 2007).

Селен обладает высокой биологической активностью. Он способен образовывать сложные органические соединения, участвующие во всех биохимических процессах организма (Овчинникова Т., 2005). Этот микроэлемент воздействует на процессы тканевого дыхания, регулируя скорость течения окислительно-восстановительных реакций (обмен глюкозы, цикл трикарбоновых кислот, калиево-натриевый-кальциевый обмен, повышает иммунобиологическую реактивность организма, регулирует усвоение и расход витаминов А, С, Е и К. Установлено влияние селена на белковый обмен, в частности, на обмен серосодержащих аминокислот, тироидных гормонов (R.G. Ellis et al, 1997 – цитировано по: Кабиров Г.Ф., Логинов Г.П., Хазипов Н.З., 2005).

Кроме того селен является одним из микроэлементов, участвующих в работе антиоксидантной системы организма.

Существует два способа антиоксидантной защиты. Первый способ, наиболее частый, когда используется неорганическая форма селена в рационе животных. В этом случае в период стресса организм пытается реагировать, используя антиоксидантные резервы и, что более важно, синтезируя дополнительные селенопротеины. При этом основным ограничением является отсутствие запасов селена в организме, что приводит к ограничению способности животных синтезировать дополнительные селенопротеины в ответ на возникшие стрессы. Таким образом, в результате стресса образование свободных радикалов усиливается, но организм не может адаптироваться к данным изменениям из-за упомянутых ограничений.

Происходит снижение продуктивных и воспроизводительных качеств, так же как и нарушение иммунной функции животных. Это особенно актуально для новорожденных животных, так как их антиоксидантная система незрелая и зависит от передачи антиоксидантов от матери через молозиво и молоко.

Второй способ - это использование органической формы селена, главное преимущество которого заключается в создании резервов этого элемента в форме селенометионина в мышцах. В случае стрессовой ситуации при катаболизме белков в протеосомах селен освобождается и эффективно используется для синтеза дополнительных селенопротеинов, что позволяет повреждающее действие повышенного образования свободных радикалов.

Это особенно важно еще и потому, что в стрессовых условиях потребление корма животными падает. Полученные в результате синтеза селенопротеины иммунную систему и репродуктивные качества животных. В связи с тем, что новорожденных животных возрастает уровень их антиоксидантной активности. Более того, селенозависимый фермент йодотирониндиодиназа связан с активацией тироидного гормона и терморегуляцией всего организма.

Поэтому более высокий уровень селена во втором способе может быть связан с лучшей терморегуляцией у новорожденных животных и, как результат, с повышением сохранности телят и поросят в первые дни жизни (Двоярская Ю.Е., Сурай П.Ф., 2006).

свиноматкам за две недели до опороса повлияло на иммунологические показатели крови поросят, что выразилось в повышении общего количества лейкоцитов, процента Т-лимфоцитов, а также повышение иммуноглобулинов А- и М- классов в сыворотке крови животных (Боряев Г.И. и др., 2004).

По данным ряда авторов применение селеноорганических препаратов регулирует иммунные реакции в организме, которые способны выступать в качестве регуляторов процессов свободнорадикального окисления и оказывать стимулирующее действие на антиоксидантный механизм защиты организма (Шевченко С. и др., 2005; Ивахник. Г., 2006; Фисинин В.И., Сурай П.Ф., Папазян Т.Т., 2006; Цогоева Ф., 2006).

В случае с птицей селен переносится из корма в яйца и далее к развивающемуся эмбриону. По данным Paton N.D. (2000) при использовании органического селена в рационе кур его количество в снесенных яйцах было выше, чем при использовании селенистокислых форм. Двоярская Ю.Е., Сурай П.Ф. (2006) доказали, что эффективность переноса неорганической формы селена в яйца очень низкая. Таким образом, практически невозможно обогатить их селеном. Напротив, органическая форма селена «Сел-плекс»

эффективно переносится в яйца и далее к эмбриону.

Включение в рацион кур-несушек селеноорганических препаратов СелПлекс и Дафс-25 усиливает механизмы иммунной защиты, что выражается в повышении показателей лизоцимной активности, соответственно на 17,3% и 16,3%, бактерицидной активности сыворотки крови – на 26,3% и 24,9%, достоверном увеличении процессов гемопоэза, а также в повышении напряженности иммунитета к Ньюкаслской болезни птиц – на 1,01 log2, (Рубцов В., Алексеева С., 2006; Рубцов В.В., 2007).

Дефицит селена не просто снижает иммунитет, а приводит к возникновению различных заболеваний, снижению продуктивности и даже падежу животных и птицы (Овчинникова. Т., 2005). Недостаток селена в рационах племенной птицы приводит к уменьшению вывода цыплят.

Признаки дефицита – слабые цыплята, у которых отмечают миопатию мышц живота, у многих – параличи ног, вытянутые назад и вывернутые вверх.

Часто при недостатке селена возникает экссудативный диатез, опухание суставов ног, нарушение выводимости яиц и аномалии перообразования (Топорова Л, Топорова И, 2008).

Йод входит в состав тиреоидных гормонов. В свою очередь роль этих гормонов в организме связана с регуляцией основного обмена, расхода углеводов, белков и жиров в организме, процессов теплообразования; они влияют на рост, развитие и функции воспроизводства. Действие гормонов на обмен веществ связанно с их влиянием (через синтез дыхательных и других ферментов) на внутриклеточные процессы окисления, окислительного фосфорилирования и синтеза белка (Овчинникова Н.А., 2006; Сушков В.С. и др., 2007).

Многие литературные данные свидетельствуют о том, что добавленные к корму микродозы йода стимулируют рост и развитие молодняка сельскохозяйственной птицы, повышают уровень естественной резистентности и сохранности, яйценоскость, оплодотворенность яиц (Шевченко С. и др., 2005; Гаврикова Л., 2007).

Егоров И.А., Имангулов Ш.А. (2005) также отмечают, что этот элемент необходим для обеспечения оптимальной яйценоскости и нормального развития эмбрионов.

Широко применяемые растворимые неорганические соединения йода быстро всасываются при поступлении в организм птицы с кормом, причем этот элемент, хорошо усваивается из йодидов калия или натрия, йодатов кальция и калия. Однако названные соединения весьма нестойки. Кроме того, неорганический йод легко теряется в процессе транспортировки, переработки, хранении, и поэтому заявленного количества йода продукты, обогащенные такими соединениями микроэлемента не содержат. (Шацких Е., Цыганова О., 2007; Ермолаев С.В., Тряпицина Н.В., 2006).

Напротив, включение в рацион кур-несушек премикса «Йод-плюс»

позволяет получать яйца с повышенным содержанием йода. Кроме того, наблюдается тенденция к повышению сохранности и интенсивности яйцекладки (Козлобаева Е., 2005).

При йодной недостаточности задерживается рост и развитие эмбрионов, время вылупления цыплят иногда растягивается до нескольких дней, при этом у них увеличивается щитовидная железа, наблюдается снижение яйценоскости. (Королев А.Ю., 2005; Бессарабов Б.Ф., 2006).

При недостатке йода у сельскохозяйственных животных снижается функция щитовидной железы, угнетается биосинтез гормонов (тироксина и трийодтиронина), что ведет к нарушению окислительно-восстановительных процессов, биосинтезу белков и как, следствие этого, замедлению роста, развитию молодняка, расстройству воспроизводительной функции у взрослых животных. У таких животных неполноценные половые циклы, часто возникают аборты и рассасывание эмбрионов. Дефицит йода в организме может вызвать зобную болезнь.

Особенно часто дефицит йода встречается у высокопродуктивных коров, что связано с большим выделением его с молоком, при этом молочная продуктивность и жирномолочность животных уменьшаются (Огуй В.Г., 1981; Топорова Л.В., Архипов А.В., Бессарабова Р.Ф., 2004).

Таким образом, роль микроэлементов в организме молодых и взрослых животных хорошо изучена. Однако вопросы применения вышеуказанных препаратов для стимуляции эмбрионального развития требуют дальнейшего изучения.

ГЛАВА 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материалы и методы исследований Анализ многочисленных литературных данных свидетельствует о том, что одним из важнейших факторов создания устойчивого здоровья птицы на различных стадиях онтогенеза, успешного роста производства продукции и снижения ее себестоимости является поиск новых экологически безопасных способов, направленных на стимуляцию эмбриогенеза, роста и развития молодняка яичных кур и повышение их неспецифической резистентности и иммунобиологической реактивности.

В связи с этим, мы изучали эффективность применения препарата АСД и комплекса микроэлементов для обработки инкубационных яиц с целью стимуляции эмбрионального и постэмбрионального развития цыплят кросса «Птичное».

Исследования проводили в период с 2008 по 2010 гг. в цехах инкубации и выращивания ФГУП ППЗ «Птичное» Нарофоминского района, Московской области, а также в лаборатории кафедры зоогигиены имени А.К.

Даниловой МГАВМиБ им. К.И. Скрябина.

Во всех опытах использовали яйца кур для получения финального гибрида кросса «Птичное».

Кросс «Птичное» - аутосексный, четырехлинейный обладает высокой продуктивностью, жизнеспособностью и конверсией корма.

Приведенная ниже схема скрещивания предусматривает получение аутосексных родительских форм, так как птица линий Пк1 и Пк3 обладает рецессивным геном быстрой оперяемости kk, а линий Пк2 и Пк4 – доминантным геном медленной оперяемости K. Благодаря этому суточных цыплят родительских форм Пк12 и Пк34 легко разделить по скорости роста маховых и кроющих перьев крыла на петушков и курочек.

Петушки Пк12 и Пк34 медленнооперяющиеся, у них в суточном возрасте маховые перья (второй ряд) короче кроющих (первый ряд) или одинаковы по длине.

гибридное потомство, аутосексное по цвету пуха в суточном возрасте:

петушки имеют светло-желтую окраску, курочки – палевую или светлокоричневую с двумя полосками на спинке.

Схема получения финального гибрида В соответствии с поставленными задачами было проведено 4 серии научно-хозяйственных опытов (11 экспериментов) и производственная проверка (табл. 1).

В 1-й серии научно-хозяйственных экспериментов изучали влияние предынкубационной обработки яиц растворами АСД различной концентрации. Во 2-ой серии экспериментов определяли эффективность повторного применения АСД при переводе яиц на вывод. В опытах третьей серии устанавливали действие предынкубационной обработки яиц растворами комплекса микроэлементов, а в 4 серии изучали эффективность двукратной обработки этого препарата. Производственная проверка проведена для подтверждения экспериментальных данных и расчета экономической эффективности на больших партиях яиц и группах цыплят.

Материалом для экспериментов были инкубационные яйца, а так же выведенные из них цыплята. В опытные и контрольные партии подбирали яйца от одного родительного стада при соблюдении равенства массы, сроков снесения и хранения. Возраст родительских стад составлял 230-270 дней.

Средняя масса яйца – 54,8-59,5 г., плотность – 1,092-1,095 г/см3, толщина скорлупы – 380-400 мкм, кислотность желтка - 4,2-4,4 мг КОН, содержание каротина в желтке – 15,5-15,7 мкг/г, вит. А –7,2-8,6мкг/г. Срок хранения – 2- суток. Яйца опытных и контрольных партий инкубировали в машинах ИУПи ИУВ-15.

Серии экспериментов Режимы инкубации, плотность посадки, фронт кормления и поения, а также параметры микроклимата были аналогичными для всех опытных и контрольных групп в каждом исследовании и соответствовали зоогигиеническим и технологическим нормативам (НТП АПК 1.10.05.001Обработку яиц водными растворами (18-22°С) препаратов АСД и комплекса микроэлементов проводили методом орошения путем нанесения их на поверхность яиц с помощью пульверизатора.

Кормление птицы осуществляли в соответствии с рекомендациями ВНИТИП по кормлению сельскохозяйственной птицы (2003).

При проведении экспериментов учитывали следующие показатели:

1. Зоогигиенические:

-температуру воздуха с помощью термометров и термографов.

-относительную влажность с помощью психрометров и гигрографов.

-освещенность люксметром Ю-116.

2. Зоотехнические:

-показатели биоконтроля инкубации (отходы инкубации, выводимость яиц, вывод цыплят).

-динамику живой массы цыплят за 5-6 недель выращивания, путем индивидуального взвешивания по 30 голов из контрольных и -сохранность поголовья путем ежедневного учета падежа.

3. Анатомо-морфологические:

- интерьерные показатели суточных цыплят (масса сердца, печени, селезенки, фабрициевой сумки, остаточного желтка, мышечного и железистого желудков) - определение индексов развития внутренних органов 4. Биохимические: в сыворотке крови цыплят в суточном возрасте определяли:

- количество общего белка (биуретовый метод) и отдельных его фракций (Pre Alb, Alb, Post Alb, Tf, Cp, 2, S2, 1, Lp) (методом электрофореза на пластинах ПААГ) - содержание лизоцима (по В.Г. Дорофейчуку (1986)) и бактерицидную активность (метод Смирновой О.В., Кузьминой Т.П. (1979)) 5. Биометрические:

- экспериментальные данные статистически обрабатывали с применением методов, изложенных в пособиях Е.К Меркурьевой (1991 г.) и А.Д. Соболева (2006 г.) с использованием персонального компьютера по программе Microsoft Office Excel, 2003.

6. Экономическую эффективность применения препаратов:

-рассчитывали по методике определения экономической эффективности использования результатов научно-исследовательских работ в животноводстве (Шатохин Ю.И. 1997).

2.2. Результаты исследований 2.2.1. Первая серия экспериментов – эффективность предынкубационной обработки яиц растворами АСД Ф- Для определения эффективности предынкубационной обработки инкубационных яиц кур растворами препарата, было проведено 3 научнохозяйственных эксперимента.

2.2.1.1. Опыт В данном опыте изучали влияние предынкубационной обработки яиц кур растворами препарата АСД Ф-2 в различных концентрациях на некоторые показатели биоконтроля инкубации.

Все партии яиц (кроме контроля), обрабатывали растворами препарата в диапазоне концентраций (от 0,1% до 1%), а контроль не обрабатывали (табл. 2).

2.2.1.1.1. Показатели биоконтроля инкубации Обработка яиц растворами препарата не оказала существенного влияния на показатели биологического контроля инкубации (табл. 3).

Однако следует отметить, что во всех опытных партиях наблюдается незначительное снижение количества неоплодотворенных яиц на 0,24-0,46% по сравнению с контролем, что очевидно можно объяснить, уменьшением «ложного неоплода» и, следовательно увеличением жизнеспособности эмбрионов на ранней стадии эмбриогенеза. Количество замерших в опытных партиях (кроме 1 опытной) было ниже, чем в контроле на 0,25-0,31%. Кроме того, снизилась смертность зародышей в виде задохликов на 0,24-0,73% по сравнению с контролем. Отход инкубации в виде слабых во всех опытных партиях был в основном на уровне контроля.

О некотором повышении жизнеспособности эмбрионов в опытных партиях свидетельствует увеличение таких показателей, как выводимость яиц (рис. 3) и вывод цыплят (рис. 4) на 0,22-1,09% и на 0,44-1,23% соответственно по сравнению с контролем. Различия по этим показателям между опытными партиями и контролем статистически недостоверны.

Максимальный уровень выводимости яиц и вывода цыплят установлен в 4 опытной партии, при обработке яиц 1% раствором препарата.

Исходя из полученных данных можно предположить, что испытанные концентрации препарата оказались недостаточными, чтобы вызвать значительное повышение жизнеспособности эмбрионов.

Рисунок 3. Показатели выводимости яиц в 1 опыте Рисунок 4. Показатели вывода цыплят в 1 опыте.

2.2.1.2. Опыт Учитывая результаты предыдущего эксперимента, в данном опыте изучали эффективность применения повышенных концентраций растворов препарата на показатели биоконтроля инкубации и выращивания молодняка (табл. 4).

Опытные партии яиц (с 1 по 5), обрабатывали растворами препарата в расширенном диапазоне концентраций (1- 5%).

2.2.1.2.1. Показатели биоконтроля инкубации В результате обработки инкубационных яиц водными растворами препарата более высоких концентраций удалось значительно снизить почти все отходы инкубации и увеличить вывод цыплят и выводимость яиц (табл. 5).

Так, по сравнению с контролем отход яиц в опытных партиях в виде кровяных колец уменьшился в 1,5-1,7 раза, а количество замерших (кроме и 5 опытных партий) в 1,1-1,4 раза по сравнению с контролем. В конце инкубации почти во всех опытных партиях установлено достоверное снижение задохликов в 1,3-1,9 раза. В 1, 2 и 5 опытных партиях не было слабых цыплят, тогда как в контроле этот показатель был на уровне 1%.

Выводимость яиц (рис. 5) и вывод цыплят (рис. 6) во всех опытных соответственно.

Максимальная выводимость яиц, на 7,08% (p‹0,01) превышающая контроль, установлена в 3 опытной партии при использовании 3% раствора АСД.

Рисунок 5. Показатели выводимости яиц во 2 опыте Примечание: здесь и далее *- p‹0,05; **- p‹0,01; ***- p‹0,001 по сравнению с контролем Рисунок 6. Показатели вывода цыплят во 2 опыте Прижизненную оценку развития зародыша проводили по степени замыкания аллантоиса в остром конце яиц на 11 сутки инкубации. Как видно из таблицы 6 в лучшей опытной группе получено 97% яиц I категории против 96% в контроле.

Категории яиц по степени замыкания аллантоиса, % Партия яиц Развитие аллантоиса по категориям

I II III

Контроль В процессе инкубации вследствие испарения воды и обмена газов яйцо уменьшается в весе. Происходит так называемая «усушка» яиц, уровень которой соответствует интенсивности обмена веществ развивающегося зародыша.

В первой половине инкубации на 6-е и 12-е сутки установлена тенденция к меньшему испарению влаги в лучшей опытной группе, что имеет важное значение для развивающегося зародыша. Во вторую половину инкубации на 18-е сутки наблюдается тенденция к увеличению усушки в опытной группе по сравнению с контролем, что является положительным фактором и свидетельствует о более интенсивном обмене веществ развивающегося эмбриона. За 18 суток инкубации «усушка» оказалась несколько большей в опытной группе и составила 13,3%, тогда как в контрольной группе не превышала 12,8% (табл. 7).

2.2.1.2.2. Анатомические показатели цыплят разделки цыплят в суточном возрасте, показывает степень их роста и развития в эмбриональный период, а также позволяет провести оценку их качества (табл. 8).

Из данной таблицы видно, что при предынкубационной обработке яиц 3% раствором препарата установлена тенденция к повышению живой массы суточных цыплят на 3,1% по сравнению с контролем.

У цыплят лучшей опытной группы уменьшилась масса остаточного желтка с желточным мешком на 13,1% по сравнению с контролем, масса мышечного и железистого желудков была на 5,1% выше, чем в контроле.

Кроме того, следует отметить тенденцию к увеличению массы таких внутренних органов, как печень, селезенка и фабрициева сумка на 9,2%, 12,5% и на 4% соответственно, а также достоверно увеличилась масса сердца на 13,8% (p‹0,05) по сравнению с контролем.

О более интенсивном развитии эмбрионов свидетельствует тенденция к уменьшению индекса массы остаточного желтка у суточных цыплят в опытной группе на 1,23% по сравнению с контролем. В этой же группе индекс массы печени, желудков и сердца превосходили контроль на 0,13%, 0,14% и 0,09% соответственно (табл. 9). Однако различия по этим показателям между опытом и контролем были статистически недостоверны.

предынкубационная обработка яиц не оказала отрицательного влияния на интерьерные показатели цыплят, в т.ч. и на развитие иммуннокомпетентных органов.

2.2.1.2.3. Некоторые показатели неспецифической резистентности Обработка яиц раствором препарата не оказала отрицательного влияния на некоторые показатели неспецифической резистентности цыплят.

Так, при определении лизоцимной и бактерицидной активности в сыворотке крови цыплят не установлены существенные различия между опытной и контрольной группами (табл. 10). Количество лизоцима у цыплят опытной группы увеличилось на 1,4%, а бактерицидная активность повысилась на 2,8% по сравнению с контролем. Однако различия по этим показателям были статистически недостоверны.

Содержание лизоцима и бактерицидная активность сыворотки крови цыплят в суточном возрасте 2.2.1.2.4. Биохимические исследования сыворотки крови Из таблицы 11 видно, что в сыворотке крови цыплят опытной группы