На правах рукописи

Кряжевских Ирина Сергеевна

Разработка метода выделения и изучение характеристик антитромбина III

как основы антитромботического лекарственного препарата

Специальность 03.01.06 Биотехнология (в том числе бионанотехнология)

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени кандидата химических наук

Москва 2012

Работа выполнена на кафедре биотехнологии и бионанотехнологии Московского государственного университета тонких химических технологий им. М.В. Ломоносова

Научный руководитель:

академик РАМН, д.х.н. Швец Виталий Иванович

Официальные оппоненты:

доктор химических наук Селищева Алла Анатольевна (ведущий научный сотрудник биологического факультета МГУ им. М.В. Ломоносова) кандидат биологических наук Павлова Евгения Юрьевна (заведующая лабораторией физико-химических методов исследования ЗАО «БИОКАД»)

Ведущая организация: ФГУП Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов

Защита состоится «14» мая 2012 г. в 15 ч 00 мин на заседании Диссертационного Совета Д 212.120.01 при Московском государственном университете тонких химических технологий им. М.В. Ломоносова (МИТХТ им. М.В. Ломоносова) по адресу: 119571, г. Москва, пр. Вернадского, д.

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке МИТХТ им. М.В. Ломоносова по адресу: 119571, Москва, пр. Вернадского, д. 86, МИТХТ им. М.В. Ломоносова.

Автореферат представлен на сайте www.mon.gov.ru Автореферат диссертации разослан « » 2012 г.

Ученый секретарь Диссертационного Совета, кандидат химических наук, старший научный сотрудник А.И. Лютик

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

*

Актуальность темы Плазма донорской крови является уникальным источником различных белков, обладающих высокой лечебной эффективностью. Одной из важных функций плазмы крови является поддержание системы гемостаза, которая включает в себя процессы свертывания крови и фибринолиза, и обеспечивает нормальную циркуляцию крови.

В процессах свертывания и фибринолиза участвуют большое количество белков плазмы. Совокупность их превращений приводит к образованию тромба, и в дальнейшем его лизиса. Смещение равновесия между образованием тромба и его растворением в одну из сторон может привести к развитию сложных патологических состояний.

По мере развития медицины ученые нашли причины многих заболеваний крови, таких как гемофилия, болезнь Виллебранда, различные тромбозы и др.

Выяснилось, что они связаны с врожденным недостатком или отсутствием определенного белка в плазме крови больного. Поэтому при лечении этих заболеваний пациенту показаны переливания плазмы донорской крови, в которой в норме содержатся все белки. Однако наряду с необходимым для выздоровления компонентом крови при таких переливаниях больной получает -----------------------Работа выполнена при участии кандидата химических наук Берковского А.Л.

Список используемых сокращений: AT III – антитромбин III, FVIII – фактор свертывания крови VIII, FIX - фактор свертывания крови IX, ППУ - плазма после удаления факторов свертывания FVIII и FIX, СЗП – свежезамороженная плазма донорской крови, ИЭФ – изоэлектрическое фокусирование, МЕ – международная единица активности, НМГ – низкомолекулярный гепарин, pI – изоэлектрическая точка.

весь комплекс белков плазмы крови, осложняющих процесс лечения. Крайнюю степень осложнений больной приобретает при так называемом синдроме массивных трансфузий. При трансфузии умеренных доз плазмы фаза угнетения физиологических реакций не всегда проявляется клинически, но ее всегда можно обнаружить лабораторными методами. При массивной трансфузии плазмы донорской крови неблагоприятные эффекты многократно усиливаются.

Все эти проблемы привели к развитию методов разработки лекарственных препаратов из плазмы донорской крови.

В последние годы препараты антитромбина III (AT III), выделенные из плазмы донорской крови, занимают одно из ведущих мест в современной медицинской практике. Это связано с тем, что риск развития тромбозов различной этиологии возникает не только вследствие наследственных изменений, но и в процессе лечения ряда различных сложных заболеваний и постоперационной реабилитации. Образование тромба после операционного вмешательства и риск его «отрыва» является очень острой проблемой в современной медицине. Поэтому разработка и получение препарата AT III биофармацевтической промышленности.

Работа выполнена при финансовой поддержке и в рамках ФЦП «Научные и научно-педагогические кадры инновационной России» на 2009-2013 гг.

(государственный контракт № 14.740.11.0120).

Цель данной работы заключается в разработке метода выделения AT III из плазмы донорской крови после удаления факторов свертывания FVIII и FIX (ППУ) с высоким выходом без дополнительной переподготовки сырья. Это требуется для соблюдения непрерывности потока исходного сырья, необходимой для обеспечения стерильности процесса фракционирования плазмы донорской крови, существующего на базе производственного отдела ГУ Гематологического научного центра.

Задачи исследования заключались в следующем:

';

1. Разработать метод получения антитромбина III из плазмы после удаления факторов свертывания FVIII и FIX в рамках расширения выпускаемых препаратов из плазмы донорской крови на базе Гематологического научного центра;

2. Оценить сорбционные свойства двух аффинных сорбентов по отношению к белку антитромбину III;

3. Разработать условия колоночной хроматографии выделения AT III из плазмы после удаления факторов свертывания FVIII и FIX на выбранном сорбенте;

4. Подобрать условия для вирусной инактивации AT III;

5. Выбрать стабилизаторы для лиофилизации готового концентрата AT III.

Научную новизну этой работы можно сформулировать следующим образом: разрабатываемая схема выделения AT III может рассматриваться как модуль, который можно встроить в любой процесс фракционирования плазмы донорской крови. Создание таких модулей для различных белков плазмы позволяет расширить количество получаемых субстанций и снизить затраты на фракционирование плазмы и дополнительное исходное сырье. Также в работе показано преимущество использования малоизвестного сорбента Toyopearl AFHeparin HC-650M по сравнению с популярным носителем Heparin-Sepharose FF.

Использование данного аффинного носителя на стадии очистки пастеризованного концентрата AT III от продуктов деградации позволяет очистить белок на 97 % и сохранить активность белка в процессе вирусной инактивации на 83 %.

Практическая значимость состоит в том, что в настоящее время на территории России не производят препараты AT III. Их недостаток компенсируется исключительно за счет приобретения зарубежных аналогов препарата. Потребность в препаратах на основе белка AT III возрастает с каждым годом, потому что риск развития сердечно-сосудистых заболеваний, трансплантация искусственных органов и сосудов и увеличение раковых больных приводят к проблемам с тромбообразованием. Разработанная нами технология применяется на базе опытно-промышленного производства препаратов плазмы в ФГБУ Гематологическом научном центре.

Апробация работы Результаты работы докладывались на XII международной научнотехнической конференции «Наукоемкие химические технологии – 2008»

(Волгоград, Россия, 2008) и на Московской международной научнопрактической конференции “Биотехнология: экология крупных городов” (Москва, Россия, 2010).

Публикации По результатам диссертационной работы опубликовано 2 оригинальных статьи в журналах, входящих в список изданий, рекомендованных ВАК, а также 2 тезисов докладов на Российских и Международных конференциях.

Структура диссертации Диссертационная работа изложена на 94 страницах машинописного текста и состоит из следующих разделов: введение, обзор литературы, материалы и методы, обсуждения и результаты, выводы и список литературы, включающий 91 источник. Работа иллюстрирована 14 рисунками и 9 таблицами.

Во введении сформулированы задачи исследования, обозначена цель работы и ее практическая значимость.

литературного обзора рассматривается физиологическая значимость и механизм действия AT III. Уделяется внимание структурным особенностям белка и клиническому применению препаратов на основе AT III. Вторая часть литературного обзора посвящена существующим способам выделения белка AT III из плазмы донорской крови. Также рассматриваются методы количественной и качественной оценки концентратов на основе AT III. В третьей части описываются дополнительные стадии технологического процесса, необходимые для получения готовой лекарственной формы, и способы определения лечебной эффективности концентрата AT III.

В основной части дается описание оборудования и материалов, использованных при проведении исследования и методик анализа.

В обсуждении результатов представлены этапы разработки технологии получения AT III из плазмы после удаления факторов свертывания (ППУ), проблемы и способы их устранения. Приводятся результаты количественной и качественной оценки, полученного концентрата AT III.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Исходное сырье: в качестве исходного сырья использовалась плазма донорской крови, полученная после удаления факторов свёртывания VIII и IX (ППУ), содержание AT III в которой составляло 86,7 + 5,8 % (n=8), концентрация общего белка - 6,3 + 0,4 % (n=8).

Изучение сорбционных свойств аффинных носителей Фракционирование плазмы донорской крови человека можно представить в виде поэтапного процесса, на каждой стадии которого выделяется белок, обладающий лечебными свойствами. В связи с этим, стадию выделения антитромбина III целесообразно включать после выделения факторов свертывания FIX и FVIII, потому что потери AT III на этих стадиях минимальны, рис. 1. Потери терапевтически значимых белков, таких как альбумин и иммуноглобулины, в ходе хроматографического фракционирования очень малы, поэтому их можно выделять из фракции не связанной с колонкой после аффинной хроматографии.

При хроматографическом выделении АТ III из плазмы донорской крови, используют в основном аффинные носители, в частности, Heparin-Sepharose FF и Toyopearl AF-Heparin HC-650M, содержащие в качестве лиганда гепарин.

Указанные сорбенты отличаются между собой строением матриц. Однако именно строение матрицы определяет устойчивость сорбента к скоростям элюции и допустимый интервал значений рН используемых растворов. Мы решили провести сравнительное изучение сорбционных характеристик Toyopearl AF-Heparin, построенного из полимерной матрицы, состоящей из хроматографический процесс на больших скоростях и в большом интервале значений рН 2-13, а также весьма распространенного сорбента HeparinSepharose FF, мягкая матрица которого состоит из полисахаридов.

Свежезамороженная плазма Фракция, обедненная FVIII и FIX (ППУ) Фракция не связанная с колонкой Рис. 1. Схема поэтапного процесса фракционирования плазмы донорской крови В качестве стартовых условий проведения сорбции белка были выбраны физико-химические характеристики исходной плазмы после удаления факторов свертывания FIX и FVIII (ППУ) с целью возможности соблюдения в разрабатываемой технологической схеме принципа непрерывности потока, рекомендуемого для стерильных производств, и исключить необходимость проведения каких-либо подготовительных стадий перед проведением хроматографического выделения АТ III.

Для проведения сравнительного изучения процесса сорбции на вышеуказанных носителях был выбран batch-метод. Сорбцию проводили путем постоянного перемешивания сорбента с различными объемами ППУ при комнатной температуре в течение 1 часа. Сорбент удаляли центрифугированием при 1000 об/мин в течение 20 мин. Количество сорбированного белка определяли по разности значений содержания AT III в растворах до и после сорбции.

При проведении сорбции (n=3) с использованием равных нагрузок на сорбент в размере 50 МЕ AT III/ г сорбента было установлено, что на Toyopearl AF-Heparin сорбировалось 42.8 ± 2.8 МЕ AT III/ г сорбента, а на HeparinSepharose FF 37.4 ± 6.1 МЕ AT III/ г сорбента. Уже при минимальных нагрузках емкость Heparin-Sepharose FF была меньше, чем емкость Toyopearl AF-Heparin.

В связи с полученными результатами представлялось целесообразным построение кривых насыщения обоих аффинных сорбентов.

Кривые насыщения аффинных носителей строились последовательным увеличением нагрузки белка на носитель от 30 до 300 МЕ AT III на г сорбента.

Кривые насыщения представлены на рис. 2.

Кол-во сорбированного AT III, МЕ AT III/ На рис. 2 видно, что с увеличением нагрузки белка на сорбент разница между значениями емкости аффинных носителей возрастает. Как следует из формы кривой, плато для Toyopearl AF-Heparin достигается при нагрузке МЕ AT III на г сорбента, а это означает, что при этой нагрузке на сорбенте заняты все гепариновые группы, доступные для АТ III в данных условиях сорбции. При этом максимальная емкость сорбента достигает значений 74,5 МЕ AT III/г сорбента. Для Heparin-Sepharose FF емкость достигается при нагрузке 100 МЕ AT III на г сорбента и равна 44,8 МЕ AT III/г сорбента.

Таким образом, емкость Toyopearl AF-Heparin в 1,5 раза превышает таковую для Heparin-Sepharose FF. Полученные результаты по изучению сорбции batch-методом свидетельствуют о преимуществах дальнейшего использования Toyopearl AF-Heparin по сравнению с Heparin-Sepharose FF в качестве сорбента для разработки процесса хроматографического выделения AT III. Кроме того, учитывая синтетическую природу матрицы, можно рассчитывать на возможность вести хроматографический процесс при высоких скоростях элюции, а также проводить регенерацию с использованием 6 М раствора мочевины, сильных растворов щелочи и других сильных детергентов.

Это допущение очень важно, так как плазма донорской крови и ее фракции представляют собой биологические матрицы, состав которых не бывает постоянным, и, следовательно, регенерация сорбента является важным этапом хроматографического процесса.

Разработка условий колоночной хроматографии на Toyopearl AFHeparin При переходе на колоночный процесс хроматографического выделения AT III на носителе Toyopearl AF-Heparin выбиралась нагрузка 75 МЕ AT III на г сорбента, установленная batch-методом. Стартовый буферный раствор оставался идентичным по составу буфера, который использовался для получения ППУ 0,01 М Tris, 0,06 M Na3Cit, pH 7,8, и ППУ наносили на колонку в неизменном виде после DEAE-Sepharos на скорости 113 см/час. Таким образом, мы исключили стадию переподготовки сырья. Три параллельных эксперимента показали, что выход по активности AT III составил 10 - 12 %, а основная часть целевого белка, равная 50 - 60 %, остается во фракции не связанной с колонкой. Полученные результаты показали, что в динамических условиях нагрузка на сорбент имеет меньшее значение.

Снижение нагрузки на сорбент до 35 МЕ AT III/г сорбента при прочих равных условиях привело к уменьшению потерь во фракции не связанной с колонкой до 20 - 30 %, но выход AT III оставался низким.

Дальнейшее уменьшение нагрузки до 25 МЕ/г сорбента при прочих равных условиях позволило минимизировать потери во фракции не связанной с колонкой до 0 - 10 %. При этом выход AT III оставался низким и составлял 20 а основная часть белка десорбировалась промежуточным буфером (0,01 М Tris, 0,06 M Na3Cit, 0,3 М NaCl pH 7,8) и промывом 2 М NaCl после элюции целевого белка.

Для того чтобы избежать больших потерь AT III во фракции, полученной при промыве колонки промежуточным буфером, представлялось целесообразным снизить ионную силу буферного раствора в два раза (0,01 М Tris, 0,06 M Na3Cit, 0,15 М NaCl pH 7,8). В результате выход AT III увеличился до 40 - 50 %, а потери целевого белка в промежуточном буфере уменьшились до 5 - 10 %.

Для обеспечения высокого выхода целевого белка в элюируемой фракции было решено снизить скорость элюции с 25 см/час до 15 см/час. Это привело к увеличению выхода по активности AT III до 70 - 80 % и помогло минимизировать потери во фракции промыва сорбента 2 М NaCl после элюции целевого белка.

Таким образом, сорбционная емкость аффинного носителя Toyopearl AFHeparin в динамических условиях падает со значения 75 МЕ/г сорбента до МЕ/г сорбента. Это связано с затруднениями, которые испытывают большие белковые молекулы при движении по колонке.

Материальный баланс рассчитывали как соотношение суммарной специфической активности AT III во всех хроматографических фракциях по отношению к исходному содержанию AT III в ППУ.

Для определения молекулярно-массового состава хроматографических фракций использовался SDS-электрофорез в восстановленных условиях. На рисунке 3 представлена электрофореграмма молекулярно-массовых составов фракций от исходного ППУ (трек № II) до полученного концентрата AT III (трек № VI).

Рис. 3. Распределение молекулярно-массового состава фракций Трек I – низкомолекулярный маркер; Трек II - исходная ППУ; Трек III – фракция не связанная с колонкой; Трек IV – промыв стартовым буфером;

Трек V – промыв промежуточным буфером; Трек VI – элюат AT III;

По данным денситограммы чистота AT III составляет 77 % с молекулярной массой 58,5 кДа. Дополнительные полосы свидетельствуют о наличии примесных белков в концентрате AT III. Их содержание составляет около 23 %, а идентификация примесей не проводилась потому, что после процесса вирусной инактивации необходимо будет провести еще одну стадию хроматографической очистки.

Таким образом, концентрат AT III, полученный после первой стадии аффинной хроматографии, обладает следующими характеристиками:

молекулярная масса 58,5 кДа;

специфическая активность 18 ± 3 МЕ/мл;

удельная активность 7,4 ± 1,6 МЕ/мг белка;

фактор очистки 528 ± 132.

В аналогичных хроматографических условиях мы провели выделение AT III из ППУ на сорбенте Heparin-Sepharose FF. Это было сделано для того, чтобы установить, сохраняется ли закономерность между сорбционными свойствами аффинных носителей Toyopearl AF-Heparin и Heparin-Sepharose FF в условиях колоночной хроматографии.

Значения специфической активности AT III в концентратах, полученных при хроматографическом выделении на обоих аффинных сорбентах, оказались близкими по своему числовому значению и составили 18 ± 3 МЕ AT III/мл для Toyopearl AF-Heparin и 17 ± 2 МЕ AT III/мл для Heparin-Sepharose FF. Но выход целевого белка при использовании Toyopearl AF-Heparin на 20 % выше, чем на Heparin-Sepharose FF. Это хорошо согласуется с результатами, полученными batch-методом.

Измерение специфической активности AT III Измерение специфической активности AT III в хроматографических фракциях проводилось амидолитическим методом с помощью хромогенного субстрата с использованием набора Berichrom Antithrombin III (A) (фирма DADE Behring, Германия).

Метод основан на взаимодействии AT III с избытком тромбина, что приводит к образованию эквимолярного устойчивого комплекса [ATIIIТромбин]. Остаточный тромбин, не вступивший в реакцию с AT III, взаимодействует с хромогенным субстратом. В результате отщепляется оптически активный пептид, количество которого определяется при 405 нм.

Измерения проводились в пластиковых кюветах шириной 10 мм при 370 С.

За величину международной единицы активности АT III (ME AT III) принимали активность, соответствующую активности 1 мл нормальной плазмы донорской крови.

Проведение сравнительных количественных определений специфической активности АТ III потребовало подтверждения допустимости применения амидолитического метода с помощью хромогенного субстрата, используемого для тестирования СЗП, в случае измерения активности АТ III в таком её полупродукте, как ППУ в соответствии с рекомендациями [Guidance for Industry Bioanalytical Method Validation/ U.S.Department of Health and Human Services Food and Drug Administration// 2001].

человеческую плазму (Standart Human Plasma, DADE Behring). Калибровочная кривая строилась в диапазоне концентраций специфической активности AT III от 0,26 МЕ/мл до 0,91 МЕ/мл.

Первостепенную роль при смене матрицы играет специфичность методики по отношению к AT III. Допустимость применения методики хромогенных субстратов для количественного определения АТ III в образцах зависимость оптической плотности экспериментальных образцов при 405 нм от последовательным разведением исходных образцов ППУ, относительно калибровочной кривой свидетельствует о высокой специфичности методики зависимости D = f(A AT III), для калибровочной кривой (1) и ППУ (2 и 3) представлены ниже:

y = -0.0112x + 2.0183 (1) В полученных уравнениях коэффициенты при «х», характеризующие тангенс угла наклона прямой, имеют одинаковую величину, равную -0.0112.

Это позволяет утверждать, что прямые зависимости оптической плотности экспериментальных образцов при 405 нм от содержания в них АТ III параллельны. Свободные члены уравнения равны между собой и характеризуют расстояние, на которое смещены прямые относительно «0» при пересечении с осью ординат.

Таким образом, эти факторы свидетельствуют о допустимости применения данного метода количественного измерения специфической активности АТ III в СЗП к ее полупродукту ППУ.

В процессе хроматографического выделения получаемые концентраты AT III представляют собой растворы высокоочищенного белка с высокой активностью AT III. Биологическая матрица в этих растворах кардинально отличается от природы СЗП или ППУ.

В качестве контрольного образца концентрата AT III с известной специфической активностью мы использовали стандарт NIBSC Antithrombin Concentrate, Human (концентрат AT III человеческий), аттестованный в независимых лабораториях, с содержанием 4,4 МЕ/мл.

Основной компонент свежезамороженной плазмы это альбумин, его содержание составляет 40-50 г/л СЗП. Поэтому разведения контрольного образца AT III решено было проводить не с помощью рабочего буфера, а раствором рабочего буфера, содержащего 5 % альбумин для инфузий.

Использование таких разведений позволяет сопоставить биологические матрицы СЗП и концентрата, и измерение специфической активности AT III в контрольном образце можно проводить по той же калибровочной кривой, которая используется для исходного сырья.

Для подтверждения вышеизложенного сделали пять разведений контрольного образца AT III до активности 0,44 МЕ/мл и измеряли каждое разведение три раза. Результаты представлены в таблице 1.

Таблица 1. Результаты измерения специфической активности NIBSC Antithrombin Concentrate.

№ разведения А АТIII расчетная, МЕ/мл А АТIII ±, МЕ/мл Из полученных результатов можно сделать вывод, что данная методика измерения специфической активности AT III в очищенных концентратах может использоваться для опытных концентратов AT III.

Вирусная инактивация распространение приобрел метод пастеризации готового концентрата белка AT III в присутствии органических солей цитрата или аспарагината натрия с добавлением сахарозы, которые используются в качестве стабилизаторов.

Концентрат AT III элюируется буферным раствором с высокой концентрацией солей хлорида натрия. Поэтому представлялось целесообразным установить влияние высокого содержания хлорида натрия на процесс термической инактивации. Концентрат AT III разделили на две части: в первой части концентрат AT III разводили в шесть раз дистиллированной водой и подвергали термической инактивации, а вторую часть концентрата пастеризовали без изменений в течение 10 часов при 60 0С. В таблице представлены результаты, полученные в ходе эксперимента.

Таблица 2. Выбор стабилизаторов для вирусной инактивации.

AT III c 0,6 M Na3Cit и 20 % сахарозы 12,84 ± 3,46 12,35 ± 3, Концентрат AT III в физиологических условиях В результате можно сделать следующие выводы. Высокое содержание солей в концентрате AT III не влияет на термическую стабильность белка.

Таким образом, стадию предварительного диализа перед проведением вирусной инактивации можно не проводить.

Следующий шаг заключался в выборе оптимальной концентрации цитрата натрия. Концентрат AT III разделили на три группы: к первой группе добавляли цитрат натрия до концентрации 0,2 М, ко второй – 0,4 М, а к третьей – 0,6 М. В соответствии с данными литературы, дальнейшее увеличение содержания цитрата натрия может привести к стабилизации не только целевого белка, но и вирусов.

В результате мы получили, что 0,2 М цитрата натрия позволяет сохранить активность белка на 71 %, 0,4 М цитрат натрия на 85 % и 0,6 М на 91 %. Таким образом, наилучшими стабилизирующими свойствами обладает цитрат натрия в концентрации 0,6 М.

После завершения процесса термической инактивации пастеризованные концентраты AT III повторно наносили на колонку с сорбентом Toyopearl AFHeparin в аналогичных условиях для очистки от частично инактивированного белка. На электрофореграмме, рис. 4, показано, как изменяется молекулярномассовый состав концентрата AT III в процессе противовирусной обработки.

Для определения молекулярно-массового состава хроматографических фракций использовался SDS-электрофорез в восстановленных условиях. Разделение и окрашивание проводили с помощью электрофоретической установки PhastSystem, фирма GE Healthcare с использованием готовых гелей PhastGel Gradient 8-25. Гели окрашивали раствором Кумасси R-250.

Рис. 4. Изменение молекулярно-массового состава концентрата AT III в процессе вирусной инактивации Трек I – низкомолекулярный маркер;

Трек II – элюат AT III после первой аффинной хроматографии;

Трек III – элюат AT III после пастеризации;

Трек IV – концентрат AT III после повторной очистки на Toyopearl AFHeparin.

Трек № II показывает состав концентрата AT III после первой стадии аффинной хроматографии на сорбенте Toyopearl AF-Heparin. Наличие дополнительных полос после пастеризации (трек № III) свидетельствует о частичном разрушении белка в процессе термической инактивации. Трек № IV концентрат AT III после повторной очистки на сорбенте Toyopearl AF-Heparin.

В результате AT III сохранил свою активность на 83 ± 7 %, чистота концентрата AT III по данным денситограммы составила 97 % от содержания AT III в концентрате до вирусной инактивации. Вторая стадия аффинной хроматографии на Toyopearl AF-Heparin позволила очистить концентрат AT III не только от латентных и прелатентных форм белка, но избавиться и от примесных белков, оставшихся в концентрате после первой стадии аффинной хроматографии.

Лиофилизация концентрата AT III препаратов плазмы. Это связано с тем, что растворы плазменных белков, обладающих лечебными свойствами, сохраняют свою активность в течение небольшого количества времени, в то время как лиофилизированные препараты могут быть пригодны к использованию в течение длительного срока.

Весьма эффективный подход к решению проблемы стабилизации белковых препаратов состоит в использовании разного рода стабилизаторов, препятствующих межбелковому контакту, обеспечивающих молекулярное окружение, в той или иной мере имитирующее нативное, и блокирующих протекание нежелательных химических реакций.

В качестве стабилизаторов белка в процессе лиофильной сушки мы выбрали растворы, содержащие 0,5 % NaCl, 0,2 % Na3Cit, рН 7,4 с добавлением 1 % альбумина, 1 % глицина, 2 % сорбитола и смеси 1 % глицина + 2 % многочисленными данными, представленными в современной литературе.

В результате мы получили, что для белка AT III наилучшими стабилизирующими свойствами обладают составы с добавлением 1 % глицина, и 1 % альбумина, которые позволяют сохранить активность AT III на 71,9 % и 69 % соответственно. Использование глицина в качестве стабилизатора предпочтительнее, так как добавление альбумина вносит дополнительный риск передачи инфекций.

Изоэлектрофокусирование Последней необходимой характеристикой субстанции AT III является набор изоформ конечного концентрата. Соотношение - и -изоформ в концентрате AT III будет влиять на его лечебную эффективность. Плазменный AT III существует, по крайней мере, в двух изоформах и. В -изоформе все четыре N-гликозилированных локуса заняты гликанами идентичной структуры.

Для -изоформы обнаружены только три таких гликана, в то время как боковая цепь при Asp 135 полностью отсутствует. В связи с этим электрофоретическая подвижность изоформ AT III различна, что позволяет разделять их в градиенте рН в соответствии с изоэлектрическими точками, которые равны для изоформы 5,1, для -изоформы 4,9, соответственно. Количественное содержание изоформ AT III в плазме колеблется в пределах для -изоформы для -изоформы 5-10 %. Несмотря на преобладающее количество изоформы, именно -изоформа играет основную роль в ингибировании протеаз.

Для проведения ИЭФ использовалась электрофоретическая установка 3000 Xi, фирма-производитель Bio-Rad, США. Разделение проводилось в полиакриламидном геле с использованием амфолитов 3-7. Гели окрашивали раствором Кумасси R-250.

На электрофореграмме, рис. 5, приведено распределение составов концентрата AT III после первой аффинной хроматографии (трек № 2) и после лиофилизации (трек № 3) на основании изоэлектрических точек белков.

I II III IV

Трек I, IV –маркер;Трек II – элюат AT III после первой аффинной хроматографии;Трек III – концентрат AT III после лиофилизации.

Как видно из рис. 5, составы промежуточного и лиофилизированного концентратов значительно отличаются друг от друга. В промежуточном концентрате AT III (трек № II) после первой аффинной хроматографии помимо целевого белка присутствуют дополнительные примеси. Наличие большого набора полос с различными pI говорит о многокомпонентном составе данной фракции, тогда как белок AT III характеризуется двумя изоформами с pI 4,9 и 5,1 соответственно. Этот результат хорошо согласуется с данными, полученными с использованием SDS-электрофореза.

Конечная лиофилизированная субстанция AT III содержит 91 % изоформы с pI 4,8, и 9 % -изоформы с pI 5,3 соответственно (трек № III).

Отсутствие дополнительных полос в данном образце свидетельствует о высокой чистоте готового концентрата, который практически не содержит каких-либо других белков.

В заключение можно утверждать, что конечная субстанция AT III обладает следующими характеристиками:

-молекулярная масса 58,5 кДа;

- специфическая активность 50 МЕ/мл;

- удельнаая активность 6,8 МЕ/мг белка;

- чистота концентрата 97 %;

- соотношение изоформ : – 91:9.

1. Разработан метод получения AT III из плазмы после удаления факторов свертывания FVIII и FIX в соответствии с возможностью реализации его на базе ГНЦ.

2. Показано преимущество использования сорбента Toyopearl AF-Heparin по сравнению с Heparin-Sepharose FF в качестве сорбента для очистки AT III из плазмы донорской крови.

3. Были подобраны оптимальные условия колоночной хроматографии на сорбенте Toyopearl AF-Heparin.

4. Разработанные условия вирусной инактивации концентрата AT III, которые позволяют сохранять активность белка на 83 %.

5. Разработанные условия лиофилизации готовой субстанции AT III, которые позволяют сохранить активность AT III на 71,9 %.

Список работ, опубликованных по теме диссертации 1. Кряжевских И.С. Оптимизация процесса вирусной инактивации концентрата антитромбина III / Кряжевских И.С., Коржавин Д.В., Швец В.И., Берковский А.Л. // Биофармацевтический журнал. – 2. Ажигирова М.А. Сравнительное изучение сорбционных свойств аффинных носителей по отношению к белку антитромбину III / Ажигирова М.А., Дереза Т.Л., Кряжевских И.С., Швец В.И. // Вестник МИТХТ. – 2010. - № 2. – С. 64-68.

3. Кряжевских И.С. Оптимизация метода выделения антитромбина III из плазмы донорской крови / Кряжевских И.С., Швец В.И. // Тезисы и стендовый доклад Московской международной научнопрактической конференции «Биотехнология: экология крупных городов». – Москва, Россия, 2010. – С. 485-486.

4. Кряжевских И.С. Особенности измерения специфической активности антитромбина III в процессе хроматографического фракционирования / Кряжевских И.С., Ажигирова М.А., Дереза Т.Л. // Тезисы докладов XII международной научно-технической конференции «Наукоемкие химические технологии – 2008». – Волгоград, Россия, 2008. – С. 130-131.